Подготовка инструментов к стерилизации: Подготовка инструментария к стерилизации

Подготовка инструментов к стерилизации: Подготовка инструментария к стерилизации

04.03.2021

Содержание

Стерилизация хирургического инструмента — Студопедия

Этап 1 — предстерилизационная подготовка. Ее цель — тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.
Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты тщательно моют про точной водой щетками в отдельной раковине в течение 5 мин (инструменты, загрязненные кровью, моют сразу, не допуская высыхания крови) и затем на 15-20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов, подогретом до 50вС. Шприцы обрабатывают в разобранном виде.
Состав моющих растворов: раствор А — пергидроля 20 г, стирального порошка (типа «Новость», «Прогресс», «Астра» и др.) 5 г, воды 975 мл; раствор Б — 2,5% раствора перекиси водорода 200 мл, стирального порошка «Новость» 5 г, воды 795 мл.
После замачивания инструменты моют в том же растворе ершами, щетками (особенно тщательно обрабатывают замки, зубчики, насечки), затем в течение 5 мин ополаскивают теплой водой и в течение 1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты и шприцы помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 85 °С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.

Инструменты и шприцы, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предварительно помешают в эмалированные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, ополаскивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по описанной выше методике.
Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией, замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего средства (стиральный порошок), затем моют щеткой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные инструменты. Через 1 сут (время для прорастания спор) их подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стерилизация).
Пункционные, инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца теплой водой, а затем 1 % раствором натрия гидрокарбоната, канал иглы прочищают мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой.


После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а через 8-12 ч — повторно в дистиллированной в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом с помощью шприца либо резиновой груши. Иглы, загрязненные гноем, тщательно моют, просвет их промывают проточной водой; затем помешают на 1 ч в 5% раствор лизола, дополнительно промывая лизолом канал с помощью шприца или резиновой груши, и подвергают такой же дальнейшей обработке, как не загрязненные гноем иглы.
Системы для трансфузии лекарственных веществ или крови требуют тщательной обработки для предупреждения посттрансфузионных реакций и осложнений. В современных условиях используют разовые системы для трансфузии, стерилизованные в заводских условиях. Систему многоразового использования сразу после переливания крови или лекарственного препарата разбирают — разъединяют стеклянные части, капельницу и резиновые трубки, тщательно промывают проточной водой, разминая пальцами резиновую трубку (для лучшего удаления остатков крови). Части системы опускают на 2 ч в подогретый до 60 °С специальный раствор, содержащий 1 % раствор натрия гидрокарбоната и 1% раствор нашатырного спирта. Затем части системы промывают проточной водой и кипятят в дистиллированной воде 30 мин, вновь промывают водой, разминая резиновые трубки, и повторно кипятят 20 мин в дистиллированной воде. После этого систему монтируют и упаковывают для стерилизации.

Этап 2 — укладка и подготовка к стерилизации.
Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помешают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специальной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. В последнее время в основном применяются шприцы разового пользования, стерилизованные в заводских условиях.
Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных типичных операций набор инструментов подготавливают заранее (например, для операций на легком, сердце, костях, сосудах), укладывают на специальную сетку и заворачивают в простыню в виде пакета.
Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и заворачивают в кусок хлопчатобумажной ткани в виде пакета, который помещают в стерилизационную коробку (бикс). При массовой стерилизации шприцев в автоклавах (централизованная стерилизация) используют специальную укладку, сшитую из хлопчатобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, радом — иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев. Укладки заворачивают в хлопчатобумажную пеленку в виде пакета и помещают в стерилизатор.
Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладывают марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в от дельный бикс.
Собранные системы для переливания крови проверяют на прочность резиновых трубок, плотность соединения их со стеклянными деталями и соответствие канюль павильонам иглы. Систему сворачивают в виде 2—3 колец, не допуская перегиба резиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем — в вафельное полотенце и укладывают в биксы.
Этап III — стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев (с отметкой на шприце 200 вС), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах-стерилизаторах (рис. 4). Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в металлических коробках (при снятых крышках) и включают подогрев. При открытой дверце доводят температуру до 80—85 °С и в течение 30 мин просушивают — удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 °С), поддерживая ее автоматичес ки, и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и сниже ния температуры до 70—50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15—20 мин (после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.
При работе с сухожаровым стерилизатором необходимо соблюдать меры безопасности: аппарат должен быть заземлен, по окончании стерилизации следует открывать дверцу шкафа только при снижении температуры до 70-50 °С. Запрещается пользоваться неисправным аппаратом.
Стерилизацию инструментов, шприцев, систем для переливания крови можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве). Упакованные предметы укладывают в стерилизационную камеру. Если упаковки уложены в биксы, то их решетки должны быть открыты. Биксы или другие упаковки укладывают свободно, что бы пар распределялся равномерно.
Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм[1], что соответствует температуре 132,9 °С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (температура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.


Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением применяется в небольших лечебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют стационарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стерилизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.
В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды (2% раствор). На дно кипятильника укладывают тонкий простеганный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нем, а не на инструментах.
Инструменты в разобранном виде укладывают на специальные сетки и опускают крючками на дно кипятильника, оставляя ручки крючков снаружи, и закрывают кипятильник крышкой. Время стерилизации — 40 мин с момента закипания воды. По окончании стерилизации сетку с инструментами подхватывают крючками, дают стечь воде и переносят на специальный столик, покрытый стерильной простыней, сложен ной в 4 слоя. Операционная сестра раскладывает инструменты на большом операционном столе.
Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (кипячением в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для спинномозговой пункции и внутривенных вливаний кипятят в дважды дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия.
Инструменты, шприцы и иглы, загрязненные гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.
Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, под лежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением. Их кипятят в течение 1 ч, извлекают из кипятильника и оставляют при комнатной температуре на 12—24 ч (для прорастания спор), а затем повторно стерилизуют кипячением в течение 1 ч (дробная стерилизация).

В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов
ни одним из указанных способов, используют метод обжигания В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надежен, пожаро- и взрывоопасен (наличие кислорода, паров наркотических веществ в воздухе помещений), поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожар ной безопасности.
Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными методами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. После предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов. Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия обертывают марлей и кипятят в дистиллированной воде без добавления гидрокарбоната натрия в течение 10 мин, затем помешают в 96% этиловый спирт на 30 мин.

Этап IV — хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч. Бели материалы были помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы (например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут храниться в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Подготовку инструментов к стерилизации . Предстерилизационной подготовка

Порядок предстерилизационной подготовки инструментария:

· дезинфекция;

· промывание под проточной водой в течение 30 с;

· замачивание в смеси из водорода пероксида и моющего средства 50°С на 15 мин;

· мытье в моечно-пероксидной смеси с помощью ватно-марлевого тампона в течение 30 с;

· полоскание дистиллированной водой;

· просушка;

· пробы на качество предстерилизацийнои подготовки (на наличие моющих средств — фенолфталеиновой на наличие остатков крови и жира — бензидиновая проба).

Укладка и подготовка инструментария к стерилизации. После предварительного просушивания на воздухе инструментарий вкладывают в сухожаровой шкаф, который нагревают до 80°С при открытой дверце. После этого дверь закрывают и начинается стерилизация.

Стерилизация. Металлический инструментарий и стеклянную посуду стерилизуют в сухожаровых шкафах-стерилизаторах. После закрытия дверей температуру в шкафу доводят до 180°С и поддерживают ее автоматически в течение 60 мин, затем выключают.

Стерилизацию инструментария с пластмассовыми деталями можно проводить в паровом стерилизаторе (автоклаве), положив его в бокс. Стерилизация длится 20 мин при 2 атм. при температуре 132,9°С. началом стерилизации считают с момента достижения соответствующего давления. Резиновые перчатки, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм. при температуре 120°С в течение 45 мин.

Режущие инструменты обертывают двумя слоями специальной бумаги и стерилизуют сухожаровым методом. Но режущие инструменты при стерилизации высокой температурой постепенно теряют свои свойства, так как металл становится более «мягким» и инструменты быстро затупляются. Поэтому их после достерилизацийного обработки целесообразнее стерилизовать «холодными» методами, чаще всего замачивают в растворах антисептиков: 96°-70° спирта — на 2 часа, 6% раствор перекиси водорода при температуре 18° С – на 6 часов, раствора дезоксон-1 – на 45 мин, раствора препарата «Сайдекс» в течение 60 мин. По истечении времени стерилизации инструменты хранятся в этих растворах к практическому использованию.



Инструменты и предметы, которые не подлежат термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапароскопы, аппараты или блоки аппаратов для искусственного кровообращения, гемосорбции), стерилизуют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы вкладывают в герметичную стерилизационную камеру, которую наполняют оксидом этилена. Срок экспозиции – 16 часов при температуре 18°С. Стерилизацию можно проводить смесью оксида этилена и бромистого метилена при температуре 55°С в течение 6 часов.

Стерилизацию инструментария и аппаратов химическими средствами следует проводить в металлических или пластиковых коробках с плотными крышками предотвращает испарение препаратов.

Хранения стерильных материалов . Стерильные материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материалов в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 часов, а при дополнительной упаковки в хлопчатобумажный мешок — 72 часа.

Лучшим в плане асептики следует считать применение инструментов одноразового использования (шприцы, скальпели, системы для в/венных вливаний, некоторые сшивающие аппараты и др.), которые стерилизуются на предприятиях медицинской промышленности различными методами, в том числе γ-облучением и ультразвуком.

Приготовление моющих и дезинфицирующих растворов. Современные дезинфицирующие средства используют для дезинфекции и уборки; сочетание дезинфекции и предстерилизационной обработки инструментария, гибких и жестких фиброскопов; дезинфекции лабораторной посуды.

· Корзолекс плюс (только для инструментария): 30 мл на 1 л (3% раствор).

· Корзолекс Базик (только для инструментария): 20 мл на 1 л (2% раствор).

· Дезактин:2 г на 1 л — для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л — для генеральной уборки (1% раствор).

· Хлорантоин: 2 г на 1 л — для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л — для генеральной уборки (1% раствор).

· Дезэффект: 23 мл на 1 л — для текущей уборки (2,3% раствор), 38 мл на 1 л — для генеральной уборки (3,8% раствор).

· Максисан: 1,7 мл на 1 л — для текущей уборки (0,17% раствор), 2,5 мл на 1 л — для генеральной уборки (0,25% раствор).

· Септодор-форте: 0,25 мл на 1 л — для текущей уборки (0,025% раствор), 2 мл на 1 л — для генеральной уборки (0,2% раствор).

· Корзолекс экстра: 15 мл на 1 л — для текущей уборки (1,5% раствор), 2 мл на 1 л — для генеральной уборки (2% раствор).

· Бацилоцид расант: 2,5 мл на 1 л — для текущей уборки (0,25% раствор), 5 мл на 1 л — для генеральной уборки (0,5% раствор).

· Бланидас: 2 г на 1 л — для текущей уборки (0,2% раствор), 10 г на 1 л — для генеральной уборки (1% раствор).

Гемотрансфузиология.

1. Пробы на совместимость при переливании крови. Техника и способы переливания крови.

ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПО ГРУППАМ КРОВИ СИСТЕМЫ «АВО»

Проба на совместимость по группам крови «АВО» производится на плоскости, при комнатной температуре. На пластинку накапать 2-3 капли сыворотки больного и туда же добавить маленькую каплю эритромассы донора так, чтобы соотношение крови и сыворотки было приблизительно 1:10. Кровь размешать с сывороткой сухой стеклянной палочкой, пластинку слегка покачать, затем на 1-2 минуты оставить в покое и снова периодически покачивать, одновременно наблюдая за ходом реакции в течение 5 минут. Если в смеси сыворотки больного и крови донора наступила агглютинация эритроцитов – агглютинаты видны сначала в виде мелких, затем крупных комочков на фоне полностью или почти полностью обесцвеченной сыворотки – это значит, что кровь донора несовместима с кровью больного и не должна быть ему перелита. Если смесь крови донора и сыворотки больного по истечении 5 минут остается гомогенно окрашенной, без признаков агглютинации, то это означает, что кровь донора совместима с кровью больного в отношении групп крови системы «АВО».

ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПО СИСТЕМЕ РЕЗУС С ПРИМЕНЕНИЕМ 33% РАСТВОРА ПОЛИГЛЮКИНА

Проба проводится в пробирке без подогрева. Для пробы применяется 33% раствор полиглюкина. Для исследования использовать центрифужную пробирку емкостью не менее 10 мл. На дно пробирки пипеткой внести 2 капли сыворотки больного, одну каплю донорской крови, одну каплю 33% раствора полиглюкина и перемешать содержимое путем однократного встряхивания. Пробирку медленно вращать в течение 5 минут, не выпуская ее из рук и не оставляя без движения. Через 5 минут в пробирку долить изотонический раствор NаСl в таком количестве (от 3 мл). Перемешать содержимое путем 2-3-х кратного перевертывания пробирки. Если в пробирке наблюдается агглютинация эритроцитов в виде взвеси мелких или крупных комочков, иногда хлопьевидной формы на фоне просветленной или полностью обесцвеченной жидкости, это значит, что эритроциты донора несовместимы с сывороткой больного и не должны быть ему перелиты. Если содержимое пробирки остается равномерно окрашенным и в нем не наблюдается признаков агглютинации эритроцитов, это значит, что эритроциты донора совместимы с сывороткой больного в отношении системы Резус.

ПРОБА НА БИОЛОГИЧЕСКУЮ СОВМЕСТИМОСТЬ

Перед переливанием контейнер с эритроцитарной массой, плазмой выдерживают после взятия из холодильника при комнатной температуре в течение 30-40 минут, а в экстренных случаях подогревают до температуры +370С в водяной бане (под контролем термометра!). Биологическую пробу производят независимо от скорости и пути введения — струйно или капельно — следующим образом. Струйно переливают 10-15 мл эритроцитарной массы, её взвеси, плазмы, а затем в течение 3 минут наблюдают за состоянием больного. При отсутствии клинических проявлений реакций или осложнений (учащения пульса, дыхания, появления одышки, затрудненного дыхания, гиперемии лица, болей за грудиной и в пояснице и т. д.) вновь струйно вводят 10 – 15 мл эритроцитарной массы, её взвеси, плазмы и в течение 3 минут снова наблюдают за больным. После чего такую процедуру производят и в третий раз. Отсутствие реакций у больного после 3-х кратной проверки является основанием для продолжения трансфузии.

Проба Бакстера

Для оценки результатов биологической пробы, установления причины кровоточивости тканей у больных находящихся под наркозом, без сознания, а также, если пациент глухонемой или психически неполноценен, проводится проба Бакстера (проба на гемолиз). Для этого после струйного переливания 30-45 мл эритромассы из вены больного берут 5-10 мл крови и центрифугируют. Естественная окраска сыворотки (соломенного или слегка желтого цвета) крови в пробирке указывает на отсутствие внутрисосудистого гемолиза эритроцитов. Розовый цвет сыворотки указывает на гемолиз эритроцитов.

Техника переливания компонентов крови.

Оценка пригодности гемотрансфузионной среды для переливания

1. Врач должен убедиться в пригодности для переливания трансфузионной среды. Для этого удостовериться в правильности обозначения группы крови и резус-принадлежности, а так же идентичности группы крови донора и реципиента.

Провести визуальный контроль контейнера с компонентом крови. Проверить герметичность упаковки, правильность паспортизации, наличия номера, даты заготовки, обозначения группы крови, резус принадлежности, наименование консерванта, Ф.И.О. донора, наименование учреждения-заготовителя, наличие подписи врача. Макроскопически компоненты крови не должны содержать сгустков и признаков гемолиза, а так же признаков бактериального загрязнения.

Критерием годности крови и её компонентов для переливания являются: прозрачность плазмы, отсутствие в ней мути, хлопьев, нитей фибрина, гемолиза, наличие чёткой границы между глобулярной массой и плазмой. Категорически недопустимо переливание компонентов из одного контейнера нескольким больным. После переливания контейнер с остатками трансфузионной среды (10 – 15 мл) хранится герметично и стерильно укупоренным в течение 5 суток в холодильнике при +4 – +60С. На этикетке контейнера должна быть фамилия и инициалы реципиента, дата переливания. Вместе с остатками трансфузионной среды хранится пробирка с кровью реципиента, с которой проводились контрольные исследования перед гемотрансфузией.

 

Способы переливания крови.

В настоящее время применяются следующие основные способы гемотрансфузий:

1) Непрямое переливание эритроцитарной массы (взвеси). 

2) Прямое (непосредственное) переливание донорской крови. Это резервный метод гемотрансфузионной терапии. Он может быть применен при исключительных случаях в экстренной ситуации, когда нет под рукой ни консервированных гемотрансфузионных сред, ни консервантов.

3) Аутогемотрансфузия — это переливание собственной крови больного, заблаговременно взятой у него, например, перед операцией.

4) Реинфузия крови, излившейся при травмах и заболеваниях в закрытые внутренние полости (например, в брюшную полость при нарушенной трубной беременности), или реинфузия крови, излившейся в операционную рану при хирургических вмешательствах. Проведение реинфузии крови требует соблюдения ряда правил и условий (отсутствие бактериального загрязнения и выраженного гемолиза излившейся крови, длительность ее пребывания в полости не более 12 часов, атравматичный сбор крови, ее стабилизация гемоконсервантами и небольшими дозами гепарина, разведение при переливании изотоническими растворами минимум 1:1, переливание через системы с микрофильтром, обеспечение интенсивного диуреза и пр.).

5) Обменное переливание крови. Этот метод гемотрансфузии имеет в настоящее время очень ограниченное применение (например, при тяжелых отравлениях метгемоглобинобразующими ядами).

6) Переливание трупной (фибринолизной) крови. Метод организационно очень сложен, дорогостоящ и имеет чисто историческое значение. Заготовляют трупную кровь от внезапно умерших здоровых лиц не позднее 6 часов после смерти. Трупная кровь используется и для фракционирования на компоненты (эритроциты, плазму, альбумин и пр.).

7) Переливание модифицированной крови (гипероксигенированной, облученной ультрафиолетом, рентгеном, лазером). Наиболее часто, по специальным показаниям, (чаще в отделениях хирургической инфекции) применяется аутокровь, фотомодифицированная ультрафиолетовыми лучами.

2. Осложнения при переливании компонентов крови. Профилактика СПИДа и вирусного гепатита при переливании компонентов крови.

Основные этапы стерилизации инструментов, перевязочного материла, хирургического инструментария.


1. Предстерилизационная подготовка материала. Её цель – тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.

2. Укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специальной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом. Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах(автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку.

3. Стерилизация. Стерилизация инструментов, шприцев( с отметкой на шприце 200 °C), игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах – стерилизаторах. Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в металлических коробках(при снятых крышках) и включает подогрев. При открытой дверце доводят до t 80-85°C и в течение 30 мин просушивают –удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят t до заданной(180 °C), поддерживая её автоматически, и стерилизуют в течении 60 мин. После отключения системы подогрева и снижения t до 70-50 °C открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15-20 мин(после полного охлаждения стерилизатора) камеру разгружают.

4. Хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в специальном помещении. Не допускается хранение в одном помещении нестерильных и стерильных материалов. Стерильность материала в биксах помещены в полотняные упаковки (полотенца, простыни, пеленки) и для стерилизации уложены в биксы(например, системы для переливания крови, резиновые дренажи, шприцы), они могут храниться в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.

Стерилизация оптических инструментов. Способы контроля стерилизации.

Стерилизация оптических инструментов

Основным методом стерилизации оптических инструментов, требующих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной.

 

При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс — двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида).

 

Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции является использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

 

Способы контроля стерильности.
Все методы контроля стерильности делят на прямые и непрямые.

Прямой метод контроля стерильности — бактериологическое исследование: производят посев смывов с предметов на различные питательные среды и таким образом определяют бактериальную загрязненность. Бактериологическое исследование проводится в плановом порядке 1 раз в 7–10 дней.

Непрямые методы контроля используются в основном при термических способах стерилизации и позволяют определить величину температуры, при которой проводилась обработка, не давая точный ответ на присутствие или отсутствие микрофлоры. Преимущество этого метода в быстроте получения результата.

Обработка рук хирурга, обработка операционного поля.

Обработка рук хирурга

Этапы:

-механическая и химическая обработка;

-воздействие антисептических средств и дубление.

К классическим способам обработки рук относятся способы Фюрбрингера ,Альфельда, Спасокукоцкого-Кочергина. Способы Фюрбрингера, Альфельда имеют лишь историческое значение. Способы Спасокукоцкого-Кочергина может быть использован как вынужденный, когда не представляется возможным применить современные методы. Способ предусматривает механическую очистку рук 0,5% р-ом нашатырного спирта. Руки моют в 2 тазах по 3 мин салфеткой; выполняют последовательно движения, как при мытье щеткой, начиная с пальцев левой руки. В 1-м тазу руки моют до локтей, во 2-м – до границы верхней и средней трети предплечья. По окончании мытья руки ополаскивают р-ом нашатырного спирта и кисти поднимают кверху так, чтобы капли воды стекли к локтям. С этого времени кисти рук постоянно находятся выше предплечий. Кожу рук осушают стерильными салфетками: вначале обе кисти(эту салфетку бросают), затем последовательно нижнюю и среднюю треть предплечий. Обеззараживают кожу салфетками, смоченными 96% спиртом, обрабатывая дважды по 2,5 мин кисти и нижнюю треть предплечий, затем – концы пальцев и ногтевые валики; ногтевые ложа и складки кожи пальцев 5% спиртовым р-м йода.

Современные способы обработки рук предусматривают их очистку путем мытья проточной водой с мылом или с помощью жидких средств и последующую обработку химическими антисептиками.

Обработка операционного поля
На операционном столе операционное поле обрабатывается химическими антисептиками (хлоргексидином, спиртом 70%, АХД, клиндезином и т.д.) с соблюдением определенных правил:

а) широкая обработка;

б) последовательность «от центра к периферии»;

в) многократность обработки кожи в ходе операции — обработка кожи перед отграничением стерильным бельем, непосредственно перед разрезом, периодически в ходе операции, перед наложением кожных швов, после наложения кожных швов;

г) загрязненный участки обрабатываются в последнюю очередь.

 




Стерилизация хирургических инструментов.

Обработка всех инструментов включает последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и собственно стерилизации. Способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.

Предстерилизационная подготовка.

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергают все виды инструментов. Вид и объём предстерилизационной обработки в недавнем прошлом зависел от степени инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и относимых к группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения ВИЧ-инфекции, правила предстерилизационной подготовке ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающих безусловную гарантию уничтожения ВИЧ. Следует отметить, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение последних 5 лет гепатит, а также при риске ВИЧ-инфекции обрабатывают отдельно от других. Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняют в перчатках!

Обеззараживание (дезинфекция).

Непосредственно после использования инструменты погружают в ёмкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40–60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 мин). После обеззараживания инструменты промывают проточной водой.

Мытьё.

Инструменты погружают в специальный моющий (щелочной) раствор, в его состав входят моющее средство (стиральный порошок), пероксид водорода и вода. Температура раствора 50 – 60 “C, экспозиция 20 мин. После замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем – в проточной воде.

Высушивание можно осуществить естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80 C в течение 30 мин. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Собственно стерилизация.

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

Все хирургические инструменты можно условно разделить на три группы:

Металлические (режущие: скальпель, ножницы, хирургические иглы и пр.) (нережущие: шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки и пр.)

резиновые и пластмассовые (катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.)

оптические (лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.).

основной метод стерилизации нережущих металлических инструментов – стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или автоклаве при стандартных режимах. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы и др.), предназначенные для одноразового использования, можно стерилизовать лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов.

Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых свойств. Основной метод стерилизации режущих инструментов – холодный химический способ с применением растворов антисептиков. Самыми лучшими способами стерилизации считают газовую стерилизацию (в озоново-воздушной камере) и лучевую стерилизацию в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

9. Предстерилизационная подготовка и методы стерилизации инструментов.

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергают все виды инструментов.

Вид и объём предстерилизационной обработки в недавнем прошлом зависел от степени инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенёсших гепатит и относимых к группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения ВИЧ-инфекции, правила предстерилизационной подготовки ужес- точены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающим безусловную гарантию уничтожения ВИЧ. Следует отметить, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенёсших в течение последних 5 лет гепатит, а также при риске ВИЧ-инфекции обрабатывают отдельно от других.

Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняют в перчатках!

Обеззараживание

Непосредственно после использования инструменты погружают в ёмкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40- 60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 мин). После обеззараживания инструменты промывают проточной водой.

Мытьё

Инструменты погружают в специальный моющий (щелочной) раствор, в его состав входят моющее средство (стиральный порошок), пероксид водорода и вода. Температура раствора 50-60 ?С, экспозиция 20 мин. После замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем — в проточной воде.

Высушивание можно осуществлять естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80 ?С в течение 30 мин. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

10. Особенности стерилизации инструментов с оптической системой.

Основной метод стерилизации оптических инструментов, требующих щадящей обработки с исключением нагревания, — газовая стерилизация. Этим способом обрабатывают все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано со сложным их устройством.

При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (хлоргексидина).

Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики контактной инфекции признано использование одноразового инструментария, подвергшегося лучевой заводской стерилизации!

11. Восьмиобразная повязка на голеностопный сустав

Показание: фиксация голеностопного сустава при травмах.

 Оснащение: бинт 5х10 см, ножницы.

Последовательность действий(рис. 17):

1. Усадить пациента, успокоить, объяснить ход пред­стоящей манипуляции. Положить на рану стерильную салфетку.

2. Уложить ногу на специальную подставку (или стул), стопа должна свисать.

3. Взять начало бинта в левую руку, головку бинта — в правую, бинтовать слева направо.

4. Сделать два закрепляющих тура бинта вокруг нижней трети голени.

5. Вести бинт по тыльной поверх­ности голеностопного сустава, вокруг стопы, вернуться на тыльную поверхность стопы.

6. Сделать перекрест и далее на голень для закрепляющего тура (при бинтовании носок стопы должен быть натянут к голени).

Примечание.Если пациент не может сам натянуть но­сок стопы к себе, ему помогает медицинский работник при наложении бинтовой повязки.

7. Повторить, чередуя ходы бинта до полной фикса­ции сустава.

8. Закрепить повязку двумя закрепляющими турами вокруг голени.

Восьмиобразная повязка кисти.

Повязка начинается круговым ходом на запястье (1). По тылу кисти бинт идет косо (2) и переходит на ладонь, закрепляется круговым ходом (3) и косо но тылу кисти возвращается на запястье (4), пересекая второй ход. В дальнейшем второй и четвертый ходы повторяются (5 и 6). Закрепляют повязку на запястье (7).

Стерилизация инструментов — Студопедия

Обязательной стерилизации подлежат все инструменты, приборы и материалы, контактирующие с раной больного. Тщательной дезинфекции также подвергается кожа пациента и руки медицинских работников, работающих в хирургических отделениях.

При выполнении хирургических операций и иных инвазивных манипуляций могут использоваться специальные стерильные хирургические покрытия, которыми могут изолироваться операционные поля. На операционное поле может предварительно наносится разрезаемый стерильный обкладочный материал, который будет поддерживать стерильный барьер между руками хирурга, операционной раной и кожей пациента, откуда микробы могут попасть в рану.

Стерилизация– комплекс мероприятий направленных на уничтожение всего живого (бактерий, спор, вирусов) на предметах медицинского назначения.

Предметы медицинского назначения – это предметы, непосредственно контактирующие с тканями входных ворот, то есть, с раной. К ним относятся: операционное белье, перевязочный материал, хирургический инструментарий, шовный материал, зонды, катетеры, шприцы, иглы, детали диагностического и лечебного оборудования (интубационные трубки, энодоскопы и др.).

Выбор способа стерилизации зависит от вида материала из которого изготовлен предмет медицинского назначения.

Виды стерилизации.

1 Воздушная

2 Паровая

3 Химическая

4 Кипячение

6 Прокаливание

7 Газовая

8 Лучевая

1 Воздушная– уничтожение микроорганизмов на предметах медицинского назначения происходит с помощью сухого, горячего воздуха. Реализуется этот метод путём помещения предметов медицинского назначения в сухожаровой шкаф.


Стерилизации подлежат изделия из металла (хирургический инструментарий) и стекла (шприцы с пометкой 200 градусов).

Режимы стерилизации:

— 180 гр – 60 мин

— 160 гр – 150 мин

Контроль качества стерилизации

180 гр – тиомочевина

160 гр — левомицетин

2 Паровая – уничтожение микроорганизмов на предметах медицинского назначения с помощью горячего пара под давлением. Стерилизация происходит в паровом стерилизаторе (автоклаве).

Стерилизации подлежат предметы из большинства используемых для их изготовления материалов.

— операционное бельё и перевязочный материал

— стекло (шприцы, пробирки, чашки Петри)

— металл (инструменты)

— резина (перчатки)

Режимы стерилизации: при 132° С — 2.0 кгс/см — 20 мин,


при 120° С — 1.1 кгс/см — 45 мин.

Контроль качества

132° С – бензойная кислота

120° С – мочевина

3 Химическая – уничтожениемикроорганизмов путем помещения предметов мед назначения в раствор антисептика.Рекомендуется для изде­лий из полимерных материалов, резины, стекла и дру­гих материалов, которые не выдерживают тепловой об­работки.

6%-ный раствор перекиси водорода При комнатной температуре — 360 мин, при подогреве до 50° С время стерилизации —180 мин
   
«Дезоксин-1» При комнатной температуре — 45 мин
   
4,8%-ный раствор перво-мура При комнатной температуре время стерилизации — 20 мин
   
2%-ный раствор хлоргексидина биглюконата При комнатной температуре время стерилизации — 20 мин
   
70%-ный спирт При комнатной температуре время стерилизации — 30 мин

Изделия, предназначенные для химической стери­лизации свободно раскладывают в стерильной емкости со стерилизующим раствором, полностью погружая их в раствор и заполняя им внутренние каналы. Изделия большей длины укладывают по спирали (трубки, кате­теры).

4 Газовая стерилизация основана на свой­ствах некоторых газов оказывать бактерицидное влияние путем физической и химической адсорбции на стерилизуемых объектах. Наиболее важен этот ме­тод для стерилизации изделий из полимерных мате­риалов (эндоскопы, изделия из пластмасс).

Самым распространенным газом, употребляемым с целью стерилизации, является окись этилена.

5 Лучевая стерилизация. Стерилизация ионизирующим излучением, ультрафиолетовым облучением.

Воздействие у-лучами применяется для стерилиза­ции шовного материала, эндопротезов, медицинских изделий одноразового пользования (шприцы, катетеры, лекарственные растворы и др.). Стерилизация надежна, а так как предметы стерилизуют в герметичной упа­ковке, стерильность их сохраняется многие месяцы.

2 Изоляция —недопущение контакта организма пациента и объектов, содержащих микроорганизмы (воздух, поверхность помещений и интерьера).

Реализация этой группы мероприятий возможно двумя способами:

1 В пространстве:

— строительство лечебных учреждений в парковых зонах

— зонирование помещений внутри лечебного учреждения (ограничение доступа в отделения, оперблок, разные окошки для приёма и выдачи стерильных и нестерильных биксов и др.)

— средства индивидуальной защиты (перчатки, маски, асептические повязки)

2 Во времени (если невозможно по техническим причинам в пространстве)

— в одной операционной первыми оперируют «чистых» больных, а после гнойных

— в одной перевязочной с утра перевязывают «чистых» больных, а после обеда гнойных.

3 Дезинфекция –мероприятия направленные на уничтожение или удаление микроорганизмов с поверхностей пола, стен, потолков, дверей, окон, а так же элементов внутреннего интерьера ( столы, стулья, тумбочки и т.д.) в лечебных учреждениях. Дезинфекции подлежат также предметы , использованные в процессе лечения и ухода: использованные инструменты, перчатки, перевязочный материал. При дезинфекции погибают только вегетативные формы микроорганизмов.

Так же дезинфекции могут подлежать использованные предметы мед назначения одноразового применения.

Дезинфекция бывает

1 Профилактическая

2 Очаговая – в очаге инфекции

Дезинфекция операционной, перевязоч­ной, палат хирургического отделения. Для предуп­реждения распространения внутрибольничной инфек­ции необходимо проводить уборку 2 раза в день с применением дезинфицирующих средств, один раз в 7-10 дней проводят генеральную уборку с применением дезинфицирующих средств. После проведения перевязки в палате (смены дре­нажей) проводят дополнительную текущую уборку, ис­пользуя 1%-ный раствор хлорамина с добавлением 10%-ного нашатырного спирта (10:100). Протирают предметы и вымывают пол, затем проводят кварцева­ние палаты. На это время больного необходимо укрыть, повернуть голову на бок, лицо прикрыть салфеткой.

Виды уборки операционной

1 Предварительная – перед началом операции

2 Текущая – во время операции

3 Промежуточная – между операциями

4 Заключительная – по окончании операционного дня

5 Генеральная — раз в 7 дней в день свободный от операций.

Контроль дезинфекции

Внешний контроль за дезинфекционными меропри­ятиями осуществляют отделы дезинфекции центров ги­гиены и эпидемиологии, СЭС, внутренней лаборатории ЛПУ.

Контроль проводится визуальным, бактериологи­ческим, биологическим и химическими методами.

Бактериологический контроль качества дезинфек­ции в очагах кишечных инфекций проводят путем вы­явления кишечной палочки, в очагах капельных инфекций — стафилококка, в очагах туберкулеза — стафилококка и кишечной палочки, ЛПУ — условно-патогенных бактерий.

Предсерилизационная обработка — обяза­тельный этап обработки инструментария многократ­ного применения. Проводится для удаления белковых, жировых и лекарственных загрязнений, обеспечивает эффективность последующей стерилизации и снижает риск пирогенных реакций.

Укладка хирургических инструментов в стерилизатор

стерилизации инструментов в сухожаровом шкафу,

хранения и использования изделий медицинского назначения.

Показания: подготовка к стерилизации инструментов.

индикаторы ИС-180 используются для контроля основного режима стерилизации (180° — 60 мин) для металлических, эмалированных, керамических изделий и изделий из жаропрочного стекла,

индикаторы ИС-160 используются для контроля щадящего режима стерилизации (160° -150 мин) для изделий из не жаропрочного стекла,

Действия

Обоснование

1. Перед укладкой инструментов необходимо

надеть шапочку и провести обработку рук на

социальном уровне.

Предупреждение попадания волос в

стерилизатор.

2. Положить на дно стерилизатора

термовременной индикатор стерилизации в

зависимости от температурного режима,

применяемого для данного вида изделия.

Контроль стерилизации. Термовременной индикатор изменяет свои цвет при достижении определенной температуры и времени экспозиции.

3. Первый слой укладки. На сетку стерилизатора

сначала выложить плоские одиночные или

имеющиеся в небольшом количестве

инструменты. Например: шпатели, скальпели,

зонды, иглодержатели, ножницы, троакары.

Обеспечение укладки большего количества

инструментов, облегчение разгрузки

стерилизатора.

4. Хирургические иглы поместить в специальные

маленькие стерилизаторы или пеналы и уложить

на сетку в открытом виде.

Для предупреждения случайной потери игл при

разгрузке стерилизатора.

5. Второй слой укладки. Пинцеты неплотно

вложить друг в друга. Если их много, то уложить

их по типам (хирургические, анатомические).

Облегчение разгрузки стерилизатора.

6. Третий слой укладки. Крючки уложить

попарно, зубами вверх.

То же.

7. Четвертый слой укладки.

Кровоостанавливающие зажимы надеть кольцами на один из зажимов, который укладывают поперек стерилизатора.

Точно так же укладывают цапки и ножницы, если их больше, чем 2-3 штуки.

То же.

8. Пятый слой укладки. Затем уложить

массивные одиночные инструменты, например:

зеркала, ранорасширители, так, чтобы они не

препятствовали закрыванию крышки

стерилизатора.

При переноске и хранении стерилизатора его

крышка должна быть плотно закрыта для

предупреждения нарушения стерильности.

9. Сверху уложить корнцанги или длинные

пинцеты, которые могут использоваться для

работы с другими инструментами.

Чтобы легко можно было взять необходимый инструмент.

10. Поместить индикаторы стерилизации в

центр стерилизатора и на самый верх инструментария.

При использовании индикаторов на

клеевой основе один индикатор приклеивается к крышке.

Контроль режима стерилизации.

11. Многоразовые шприцы с иглами

стерилизовать отдельно от других инструментов.

Шприцы укладывать в разобранном виде.

При стерилизации шприцев и других изделий из стекла вместе с металлическими инструментами их можно разбить. При стерилизации шприцев в собранном виде стеклянный цилиндр может треснуть или разрушиться за счет разного коэффициента расширения стекла и металла при нагревании.

12. Стерилизатор должен быть обязательно

промаркирован.

На крышке или боковой стенке указать

отделение, подразделение, содержимое.

Например: 1 х.о., чистая перевязочная, шприцы.

Чтобы можно было узнать содержимое

стерилизатора, не открывая его.

13. При помещении стерилизатора в сухожаровой шкаф крышки открываются полностью и укладываются рядом.

Для обеспечения доступа горячего воздуха.

14. После окончания стерилизации на бирке,

прилагаемой к упаковке, указывают наименование

стерилизуемого материала, дату и час стерилизации, ставится подпись проводившего стерилизацию.

Для контроля стерилизации и для оценки срока годности изделий — 6 часов с момента

стерилизации. Информация на маркировке позволяет в ЦСО выбрать правильный режим стерилизации (основной или щадящий). Для контроля стерилизации

15. При разгрузке стерилизатора медсестра прежде всего должна провести контроль за режимом стерилизации, т. е. убедиться, что полоска термовременного индикатора изменила свой цвет в соответствии с эталоном.

Срок годности инструментария, выложенного на стерильный стол, 6 часов.

16. При накрывании стерильного стола медсестра,

в стерильном халате и перчатках, может

выкладывать инструментарий руками.

Крышку стерилизатора открывает санитарка.

17. Можно

хранить инструменты в стерилизаторе в течение 6 часов и доставать изделия с помощью стерильных инструментов.

Подготовка и стерилизация инструментов — Исследования в Пенсильванском университете

Инструменты, используемые для хирургии грызунов, являются хрупкими и обычно предназначены для выполнения определенных функций. Неправильное использование этих инструментов приведет к их повреждению и затруднит, а то и сделает невозможным их правильное использование. Например, кровоостанавливающие щипцы предназначены для захвата и удержания таких тканей, как кровеносные сосуды или кожа. Хотя их можно использовать для удержания иглы для наложения швов в экстренных случаях, обычное использование гемостатических щипцов вместо хирургических иглодержателей не рекомендуется.Эти щипцы не предназначены для надежного захвата иглы, и использование их для наложения швов приведет к повреждению наконечников, что сделает их непригодными для использования по назначению. Инструменты также должны быть подходящего размера для хирургии на грызунах. Использование слишком больших инструментов приведет к усилению движений рук и уменьшению хирургической точности, что приведет к плохой технике и увеличению травм тканей.

Сообщалось, что повторное использование стерилизаторов для стеклянных шариков со временем сделает инструменты хрупкими и тусклыми.Любой инструмент, который часто используется, грубо обращается или очищается абразивными материалами, может быть поврежден или затупился. Инструменты следует регулярно проверять и при необходимости заменять. Ножницы и другие острые инструменты иногда можно затачивать, чтобы продлить жизнь. Инструменты необходимо аккуратно очищать после каждого использования, чтобы гарантировать удаление всей крови и тканей. Ультразвуковой очиститель может помочь в этом процессе. Правильный уход продлит срок службы ваших инструментов и поможет сохранить ваши вложения.

Ссылка:
Как выбрать и приобрести хирургический инструмент для хирургических исследований на грызунах. 2012. С. Баран, Э. Джонсон и М. Перрет-Жентиль. https://www.alnmag.com/article/2012/09/how-select-and-procure-surgical-instrumentation-rodent-surgical-research

Перед операцией инструменты и другие принадлежности помещаются в «хирургический пакет». Хирургический пакет должен не только удерживать инструменты и расходные материалы во время процесса стерилизации, но также сохранять стерильность содержимого до использования в хирургии.Существуют различные методы упаковки, в том числе:

  • Инструменты, с лотком для инструментов или без него, упаковываются в сложенную ткань или бумажную обертку и заклеиваются лентой, предназначенной для обозначения того, когда была достигнута стерилизация. Внутри упаковки могут быть размещены индикаторы стерилизации других типов.
  • Пилинговые пакеты — самоуплотняющиеся «конверты», используемые для стерилизации паром или газом. Индикатор стерилизации находится на конверте.

Обеспечение стерильности инструментов во время операции
Используйте дополнительный кусок стерильной салфетки или внутреннюю часть хирургической повязки или конверта в качестве стерильного пространства для размещения инструментов во время операции. Одна из наиболее частых ошибок неопытного хирурга — это установка инструментов на нестерильную поверхность.

Процедуры стерилизации

Хирургические инструменты и другие материалы или оборудование, которые будут контактировать с операционным полем, должны быть стерильными перед использованием.Процесс стерилизации убивает все формы жизни, включая бактериальные споры и вирусы. Химическая дезинфекция — это не то же самое, что стерилизация, и не допускается в качестве основного метода подготовки инструментов для хирургии . Методы стерилизации инструментов включают паровую (автоклав) и газовую (оксид этилена) стерилизацию. Стерилизация сухим жаром с использованием стерилизатора со стеклянными шариками неприемлема для первоначальной стерилизации инструментов перед операцией, но может использоваться во время «периодических» операций.

Паровая стерилизация

  • Паровая стерилизация или стерилизация в автоклаве — наиболее распространенный метод стерилизации инструментов.
  • Инструменты помещаются в хирургический пакет и подвергаются воздействию пара под давлением.
  • Индикатор стерилизации (обязательно), такой как автоклавная лента или индикаторная полоска, используется для идентификации инструментов, которые были стерилизованы.

Оксид этилена

  • Газообразный оксид этилена используется для стерилизации предметов, которые не выдерживают высоких температур и пара в автоклаве.
  • Оксид этилена очень токсичен. Предметы, стерилизованные оксидом этилена, перед использованием необходимо аэрировать, чтобы газ мог рассеяться.

Стерилизаторы для стеклянных шариков:

  • Стерилизаторы со стеклянными шариками можно использовать для повторной стерилизации инструментов во время хирургической процедуры, но они неприемлемы в качестве начального метода стерилизации.
  • Стерилизатор для стеклянных шариков
  • имеет центральный отсек, заполненный стеклянными шариками, нагретыми до высокой температуры (приблизительно 5000F).
  • После удаления крови и тканей кончики хирургических инструментов помещают в горячие стеклянные шарики примерно на 10-15 секунд.
  • В этом процессе повторно стерилизуются только кончики инструментов. .
  • Наконечники инструментов сильно нагреваются, и перед использованием их необходимо охладить.
  • Стерилизаторы со стеклянными шариками можно использовать между животными, когда один набор первоначально автоклавированных инструментов используется для группы до 5 животных.

Инструменты повторного использования

Когда хирургические процедуры должны быть выполнены на нескольких грызунах, один и тот же набор инструментов можно использовать более чем на одном животном под следующие условия.

  • Инструменты должны быть первоначально стерилизованы в автоклаве или газом. Стерилизация .
  • Кровь и частицы тканей на концах инструментов необходимо удалить спиртом перед помещением в стерилизатор для стеклянных шариков.
  • Кончики инструментов необходимо поместить в стерилизатор горячими шариками между животными .
  • Новый набор стерильных инструментов необходимо использовать через каждые 4-5 животные.
  • Если кончики инструментов стали загрязнены в результате контакта с нестерильной поверхностью или нестерильными частями тела (например, содержимым желудочно-кишечного тракта), для последующих животных необходимо использовать новый стерильный набор инструментов.

Техника применения наконечника инструмента для особых хирургических процедур на грызунах

Несмотря на свою сложность, техника наконечника инструмента может быть полезна в некоторых хирургических ситуациях на грызунах. Как правило, это ограничивается операциями, при которых разрезы затрагивают только кожу (без воздействия на внутренние органы или манипуляций с ними). При использовании техники «только подсказки» помните о следующих моментах:

  • Для использования метода наконечника инструмента на грызунах-исследователях требуется предварительное одобрение IACUC.
  • Животное должно находиться в хирургической анестезиологической плоскости на протяжении всей процедуры.
  • Начните операцию со стерильными инструментами и обращайтесь с ними асептически на протяжении всей процедуры.
  • Один и тот же набор предварительно стерилизованных инструментов может использоваться до пяти аналогичных операций при условии соблюдения асептической техники во всех процедурах.

Стерильные хирургические перчатки можно не носить, если строго соблюдаются следующие критерии:

  • Перчатки меняют после завершения хирургической чистки, так что новые чистые перчатки надеваются в начале хирургической процедуры.
  • Руки в перчатках никогда не касаются рабочего (кончика) конца инструментов, нити, шовной иглы или любой части подготовленного операционного поля.
  • Для обработки тканей животного используются только стерильные кончики инструментов.

Описание процедур в хирургии «только подсказки»

  • Хирург должен носить маску и чистить лабораторный халат или халат . Рекомендуется головной убор (кепка или капот).
  • Поместите под наркозом и хирургически подготовленное животное на обогреватель, накрытый чистым бумажным полотенцем.
  • Откройте стерильный хирургический пакет и любое другое необходимое стерильное оборудование (например, шовный материал), не прикасаясь к стерильному содержимому и не касаясь его.
  • Продезинфицируйте руки дезинфицирующим средством для рук или вымойте руки водой с мылом. После того, как руки высохнут, наденьте чистые смотровые перчатки.
  • Накройте место операции большой стерильной салфеткой . Хирург должен брать простыню только за края, чтобы она не загрязнялась.(Простыня должна содержать «предварительно вырезанное» отверстие , которое обеспечивает доступ к операционному полю, так как хирургу будет сложно вырезать отверстие, не загрязнив простынь.) Для каждого животного необходимо использовать новую стерильную простыню.
  • После того, как хирург взял в руки хирургический инструмент, только кончик инструмента считается стерильным . Если хирург кладет инструмент, стерильный наконечник необходимо положить на стерильную марлевую губку или салфетку.Ручка инструмента не должна касаться стерильной поверхности, чтобы избежать загрязнения этой поверхности.
  • Если кончик хирургического инструмента загрязнен, кончики могут быть повторно стерилизованы, промыв кровь или ткань спиртом или стерильной водой и поместив кончики в стерилизатор с горячими шариками.
  • Имейте в виду, что хирург не может прикасаться руками к кончикам инструментов, шовному материалу или зажимам для ран, шовной игле или любой части подготовленного операционного поля во время операции.
  • Перчатки следует ополаскивать 70% спиртом между операциями. Если вам необходимо использовать другую мышь для обезболивания и подготовки ее, вы должны сменить перчатки перед выполнением следующей операции.

Перейти к животному Подготовка или перейти на обучение Учебник домой

.

PPT — Стерилизация инструментов Презентация PowerPoint, бесплатная загрузка

  • Стерилизация инструментов НЕКЛАССИФ. о потенциальном риске заражения, связанном с их предполагаемым использованием.

  • Критические предметы • Критические предметы, используемые для проникновения в мягкие ткани или кости, имеют наибольший риск передачи инфекции и должны стерилизоваться при помощи тепла.• Хирургические инструменты, пародонтальные инструменты для удаления зубного камня, лезвия скальпеля, хирургические стоматологические боры

  • Критические предметы • Стоматологические инструменты для удаления зубного камня • Хирургические щипцы • Надкостничный элеватор

  • Полукритические предметы • Полукритические предметы соприкасаются с слизистыми оболочками или меньший риск передачи; Поскольку большинство полукритических предметов в стоматологии термостойкие, их также следует стерилизовать с помощью тепла.

  • Полукритические предметы • Если полукритические предметы чувствительны к нагреванию, их следует, как минимум, обработать с помощью дезинфекции высокого уровня.• Стоматологическое зеркало для ротовой полости, конденсатор амальгамы, многоразовые ложки для снятия слепков, стоматологические наконечники.

  • Полукритичные предметы • Хотя стоматологические наконечники считаются полукритическими предметами, они всегда должны подвергаться термической стерилизации между использованием и не подвергаться дезинфекции на высоком уровне.

  • Полукритические предметы • Стоматологическое зеркало • Конденсатор амальгамы • Многоразовые оттискные ложки

  • Некритические предметы • Некритические предметы контактируют с неповрежденной кожей и могут быть дезинфицированы.• Головка / конус радиографа, манжета для измерения артериального давления, пульсоксиметр

  • Некритичные элементы • Головка рентгенографа • Манжета для измерения артериального давления • Пульсоксиметр

  • Загрязненные при транспортировке предметы • Обращайтесь осторожно, чтобы не допустить контакта с острыми инструментами, которые могут вызвать чрескожную травму. • Поместите предметы в контейнер, устойчивый к проколам, на месте использования (на рабочем месте) и доставьте в зону стерилизации.

  • Транспортировка зараженных предметов • Контейнеры или стоматологические кассеты — идеальный способ транспортировки зараженных предметов.

  • Зона центральной обработки • Зона центральной обработки (или зона стерилизации) должна быть разделена на секции. 1) прием, очистка и обеззараживание 2) подготовка и упаковка 3) стерилизация 4) хранение

  • Центральная зона обработки • Загрязненные предметы никогда не должны смешиваться со стерилизованными предметами.

  • Прием, очистка, обеззараживание • Загрязненные предметы должны приниматься, сортироваться, очищаться и обеззараживаться на одном участке технологической зоны.• Очистка должна предшествовать всем процессам дезинфекции и стерилизации вручную или механически.

  • Инструменты для предварительной очистки • Во избежание травм острыми инструментами надевайте прочные, устойчивые к проколам перчатки для работы при обращении с загрязненными инструментами или их чистке вручную. • Также следует надевать маску, защитные очки и халат или куртку.

  • Инструменты для предварительной очистки • Средства индивидуальной защиты

  • Инструменты для предварительной очистки • Видимый мусор, оставшийся на инструментах, делает стерилизацию и дезинфекцию неэффективными.

  • Инструменты для предварительной очистки • Предварительно очищенные инструменты

  • Подготовка и упаковка • В другой части производственной зоны очищенные инструменты и другие стоматологические принадлежности должны быть проверены, собраны в наборы или лотки, завернуты, упакованы, или помещены в контейнерные системы для стерилизации.

  • Подготовка и упаковка • Инструменты на шарнирах следует обрабатывать открытыми и разблокированными.

  • Подготовка и упаковка • Индикаторы стерилизатора следует использовать в каждой упаковке, а также в качестве внешнего индикатора для каждой стерилизационной загрузки. (пример индикаторной ленты) • Типы индикаторов зависят от типа стерилизатора.

  • Подготовка и упаковка • Упаковочные материалы (например, обертки или системы контейнеров) допускают проникновение стерилизующего агента и сохраняют стерильность обрабатываемого предмета после стерилизации.• Важные и полукритические предметы, которые хранятся, должны быть упакованы.

  • Подготовка и упаковка • Самозакрывающиеся пакеты • Стерилизационная пленка для кассет • Индикаторная лента

  • Стерилизация • Стерилизационная секция в зоне обработки должна включать стерилизаторы и сопутствующие принадлежности, с достаточным пространством для загрузки , разгрузка и охлаждение без перекрестного загрязнения.

  • Стерилизация • Всегда следует соблюдать время стерилизации, температуру, загрузку и другие рабочие параметры, рекомендованные производителем, а также инструкции по правильному использованию контейнеров, оберток и химических или биологических индикаторов.

  • Стерилизация • При загрузке стерилизатора предметы, подлежащие стерилизации, должны быть расположены так, чтобы обеспечить свободную циркуляцию стерилизующего агента (например: пар, химический пар или сухое тепло). Всегда следует соблюдать инструкции производителя по загрузке стерилизатора.

  • Стерилизация • Все упакованные инструменты должны быть помещены в стойку для надлежащей стерилизации и сушки.

  • Стерилизация • Чистая сторона одного пакета обращена к бумажной стороне следующего пакета.• Если стойка недоступна, поместите пакеты бумажной стороной вверх, чтобы вода, образующаяся внутри пакета, стекала.

  • Стерилизация • Не складывайте пакеты друг на друга и не допускайте соприкосновения пакетов или оберток со стенками камеры.

  • Стерилизация • Для надлежащей стерилизации между упаковками необходимо пространство.

  • Стерилизация • Дайте стерилизованным упаковкам и пакетам высохнуть внутри стерилизатора.• Не прикасайтесь к пакетам, пока они не остынут и не высохнут, потому что горячие пакеты действуют как фитили, впитывая влагу и, следовательно, бактерии с рук.

  • Стерилизация • Стерилизаторы должны контролироваться механическими, химическими или биологическими индикаторами для обеспечения стерилизации. • Проконсультируйтесь с инструкциями производителя для правильного выбора и использования индикаторов.

  • Процессы стерилизации • Стерилизация паром • Надежная и экономичная • Ненасыщенная химическая паровая стерилизация • Меньше коррозии, чем паровая стерилизация • Требования к удалению опасных отходов

  • Процессы стерилизации • Процесс стерилизации сухим нагревом • Длительная стерилизация • Высокая продолжительность требуемые температуры не подходят для некоторых предметов и устройств по уходу за пациентами.• Стерилизация неупакованных инструментов • Стерилизация неупакованных предметов для немедленного использования • «Быстрая стерилизация»

  • Процессы стерилизации • Другие методы стерилизации • Термочувствительные критические и полукритические инструменты можно стерилизовать, погрузив их в жидкие химические бактерицидные препараты с некоторыми необходимыми веществами. этапы после стерилизации. • Может потребоваться 12 часов полного погружения.

  • Хранение стерилизованных предметов • Зона хранения должна содержать закрытые хранилища для стерильных предметов и предметов одноразового использования (одноразового использования).• Если упаковка нарушена, инструменты следует повторно очистить, упаковать в новую упаковку и снова стерилизовать.

  • Хранение стерилизованных предметов • Стоматологические принадлежности и инструменты нельзя хранить под раковинами или в других местах, где они могут намокнуть.

  • Оперативное пополнение • В конце каждого дня необходимо проводить инвентаризацию материалов в стоматологическом кабинете для выявления недостатков инвентаря и заменять их для подготовки к следующему дню.

  • سوالات؟ Вопросы? НЕКЛАССИФИЦИРОВАННАЯ // ОТНОСИТСЯ К НАТО / ISAF

  • .

    6: Инструменты и оборудование для препарирования зубов

    Фаски

    Большинство ручных режущих инструментов имеют на конце лезвия единственную фаску, которая образует основную режущую кромку. Две дополнительные кромки, называемые вторичными режущими кромками , отходят от основной кромки на всю длину лезвия (рис. 6-4). Инструменты с двумя скосами, такие как обычные топоры, имеют две скосы, образующие режущую кромку (рис. 6-5, A ).


    Рис. 6-4 Конструкция зубила с первичной и вторичной режущими кромками.
    Рис. 6-5 Примеры ручных инструментов, называемых экскаваторами (с соответствующими формулами инструментов). A, Обычный топорик с двумя фасками (3–2–28). B, Мотыга (). C, Уголок (12–85–5–8).

    Некоторые инструменты с одной скосом, такие как экскаваторы-ложки (рис. 6-6) и триммеры десневого края (рис. 6-7, B и C ), используются со скребковыми или боковыми режущими движениями. Другие, такие как эмалированные топорики (см. Рис. 6-7, A ), могут использоваться с строгальным или прямым режущим движением и боковым режущим движением.Для таких конструкций с одним скосом инструменты должны изготавливаться попарно, со скосами на противоположных сторонах лезвия. Такие инструменты обозначаются как скошенные справа или слева и обозначаются добавлением буквы R или L. к формуле инструмента. Чтобы определить, имеет ли инструмент правую или левую фаску, прижимают основную режущую кромку вниз и направляют в сторону, и если фаска появляется с правой стороны лезвия, это правый инструмент в паре. Этот инструмент, когда он используется в чистящем движении, перемещается справа налево.Обратное верно для левого инструмента пары. Один инструмент подходит для работы с одной стороной препарата, а другой — с противоположной стороной препарата.


    Рис. 6-6 Примеры ручных инструментов, называемых лопаточными экскаваторами (с соответствующими формулами инструментов). A, Угловая ложка для мусора (13–7–14). B, Ложка трехугольная (13–7–14). C, Ложка (15–7–14).
    Рис. 6-7 Примеры ручных инструментов, называемых долотами (с соответствующими формулами инструментов). A, Топор эмалевый (10–7–14). B, Триммер десневого края (). C, Триммер десневого края ().

    Большинство инструментов доступны с лезвиями и хвостовиками на обоих концах рукоятки. Такие инструменты обозначены как двусторонние . Во многих случаях правый инструмент пары находится на одном конце ручки, а левый — на другом. Иногда на двусторонние инструменты кладут одинаковые лезвия разной ширины. Односторонние инструменты могут быть более безопасными в использовании, но двусторонние инструменты более эффективны, поскольку они сокращают обмен инструментами.

    Инструменты с режущей кромкой, перпендикулярной оси рукоятки (Рис. 6-8), такие как угловые долота (см. Рис. 6-8, C ), инструменты с небольшой кривизной лезвия (долота Wedelstaedt) (см. рис. 6-8, B ) и мотыги (см. рис. 6-5, B ), имеют одинарный скос и не обозначены как правые или левые, а имеют мезиальный скос или дистальный скос. Если при наблюдении внутренней части кривизны лезвия (или внутренней стороны угла на стыке лезвия и хвостовика) первичный скос не виден, значит, инструмент имеет дистальный скос.И наоборот, если первичный скос виден (с той же точки зрения), инструмент имеет мезиальный или обратный скос (см. Рис. 6-8).


    Рис. 6-8 Примеры ручных инструментов, называемых долотами (с соответствующими формулами инструментов). A, Прямой (12–7–0). B, Wedelstaedt (). C, Уголок бункера (10–7–8).

    Как описано ранее, такие инструменты, как долота и топорики, имеют три режущих кромки, одну первичную и две вторичные. Это позволяет резать в трех направлениях, если это необходимо.Вторичные кромки в некоторых случаях обеспечивают более эффективную резку, чем первичная кромка. Они особенно эффективны при работе с лицевыми и язычными стенками проксимальной части проксимально-окклюзионного препарирования зубов. Оператор не должен забывать о полезности этих вторичных режущих кромок, поскольку они расширяют возможности использования инструмента.

    .
    Posted in Разное

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *