6. Предстерилизационная обработка инструментов.

Цель: тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, игл и так далее.

Предстерилизационная обработка инструментов:

1 этап – дезинфекция — замачивание в 3% растворе хлорамина 45 мин при t=60

2 этап – предстерилизационная очистка (замачивание в моющем растворе 45 мин. С перекисью водорода 3%, затем щеткой обрабатывают инструменты в том же растворе, затем в течение 5 мин ополаскивают теплой водой и 1 мин в дистиллированное воде)

Если инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией – после всех процедур еще кипятят 90 мин. Через сутки – стерилизация.

Предстерилизационная подготовка хирургических инструментов, бывших в употреблении, осуществляется следующим образом:

1. Бывшие в употреблении, но не инфицированные инструменты моют проточной водой щетками в течение 5 минут, затем замачивают в растворе А (пергидроль — 20,0, ПАВ «Астра» — 5,0; вода — 975 мл.) при 50 0С – на 15-20 минут.

2. Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, помещают в 5% раствор лизола на 30 минут.

3. Инструменты и шприцы после операции у больного с анаэробной инфекцией замачивают в 6 % растворе перекиси водорода + 0,5 % раствор ПАВ «Астра» на 1 час, затем кипятят 90 минут.

В настоящее время с целью профилактики ВИЧ-инфекции все инструменты после использования перед прохождением обычной предстерилизационной подготовки должны быть замочены в 3% р-ре хлорамина в течение 60 минут или в 6% р-ре перекиси водорода в течение 90 минут

Стерилизация нережущих металлических инструментов

осуществляется с помощью: 1. Стерилизации в сухожаровом шкафу при t — 180-200 0 C в течение 60 минут.

2. Автоклавирования при давлении в 2 Атм (132,9 град. С.) в течение 20 минут.

3. Кипячения в дистиллированной воде с добавлением натрия гидрокарбоната (20 гр. на 1 литр воды) – 45 минут.

Инструменты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту или ВИЧ-инфекции кипятить нельзя.

Режущие и колющие инструменты кипятят в течение 3-х минут без добавления гидрокарбоната натрия, затем погружают в 96 % этанол на 2 — 3 часа.

Кипячение шприцов осуществляется в разобранном виде в бидистиллированной воде в течение 45 минут. Стеклянная часть шприца при этом обертывается марлей.

Инструментарий, используемый во время операции, рекомендуется стерилизовать в сухожаровых шкафах при температуре 180 0С в течение 1 часа.

В таких же условиях должны стерилизоваться и режущие инструменты, что приводит к некоторому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность. Эти изменения в организации стерилизации связаны с частой высеваемостью патогенной флоры после вышеописанных традиционных способов стерилизации.

Одноразовые инструменты (пинцеты, зажимы, зонды, скальпели) стерилизуются с помощью ионизирующего излучения в заводских условиях.

7. Сухожаровый шкаф

Принцип работы устройства основан на циркуляции горячего воздуха внутри камеры из нержавеющей стали или другого термостойкого материала. Стерилизующим агентом в данном случае является сухое тепло, обладающее превосходными проникающими свойствами практически для любых материалов. Сухожаровой шкаф представляет собой электрический шкаф круглой или прямоугольной формы. Стерилизационная камера имеет сетки или лотки для размещения подвергаемых стерилизации предметов, термометр и специальное устройство для смешивания сухого и нагретого воздуха во время стерилизации. Нужную температуру устанавливают и поддерживают с помощью термоэлектрического реле.

Сначала укладывают на полки предметы, при открытой дверце доводят tдо 80-85 ,чтобы убрать всю влагу из шкафа и с инструментов. Затем дверцу закрывают,tдоводят до 180, стерилизуют в течение 60 мин, затем отключают, когдаtснизится до 75-50, открывают и стерильным инструментом закрывают крышку металлической коробки с инструментами, через 15-20 мин разгружают шкаф.

Плюс: исключается коррозия металлов, дешевле автоклавов

Недостатки: более высокие t, поэтому нельзя стреилизовать резину текстиль и другое.

Стерилизация в автоклаве и сухожаровом шкафу в настоящее время стала главным, наиболее надёжным способом стерилизации хи- рургических инструментов.

В современных стационарах обычно выделяют специальные центральные стерилизационные отделения, где с помощью этих двух методов стерилизуют наиболее простые и часто используемые предметы и инструменты всех отделений больницы (шприцы, иглы, простые хирургические наборы, зонды, катетеры и пр.)

Предстерилизационная обработка инструментария — КиберПедия

Предстерилизационная обработка — комплекс мероприятий, направленный на удаление белковых, жировых и лекарственных загрязнений, обеспечивающий эффективность последующей стерилизации и снижающий риск пирогенных реакций.

1. Замочить в моюще-дезинфицирующем растворе, соблюдая время экспозиции данного раствора (если этот этап поделён на 2-а этапа: 1-ый — дезинфекция инструментария, согласно экспозиции; 2-ой — замачивание инструментария в моющем растворе на 15 минут).

2. Тщательно помыть инструменты в подготовленном растворе ватно-марлевыми тампонами или ершами, особенно в местах соединений, замков, в просветах каналов (тампоны после применения выбрасывают, ерши промывают проточной водой и хранят в сухом месте).

3. Прополоскать инструментарий под проточной водой до вымывания следов моюще-дезинфицирующего раствора и до исчезновения его запаха.

4. Затем каждое изделие прополоскать дистиллированной водой (30 секунд).

5. Просушить изделие до исчезновения влаги:
— в сухожаровом шкафу при t 85°C;
— на открытом воздухе.

6. Провести контроль качества предстерилизационной обработки — постановка контрольных проб.

Контроль качества предстерилизационной обработки

АЗОПИРАМОВАЯ ПРОБА

 

Ежедневно проводится в ЦСО, самоконтроль на отделении — 1 раз в неделю.

Приготовить:

— 1% изделий каждого наименования, не менее 3-5 штук;

— исходный раствор азопирама, приготовленный аптекой;

— 3% раствор перекиси водорода;

— марлевые салфетки;

— стёкла с мазками крови;

— журнал контроля качества проведения предстерилизационной обработки

Действия:

1. Приготовить рабочий раствор азопирама:
   смешать равные объёмы (в пропорции 1:1) исходного раствора азопирама и 3% перекиси водорода (полученный раствор годен в течение 1-2 часов).
2. Проверить активность рабочего раствора, капнув несколько капель на стекло с мазком крови.
3. Холодные изделия (не выше 25°С) протереть салфеткой с раствором или нанести 3-4 капли рабочего раствора пипеткой, особенно в местах соединения.
4. Экспозиция 0,5- 1 минута.
5. Чтение пробы:

— розово-сиреневое окрашивание говорит об остатках крови;

— бурое окрашивание говорит о наличии окислителей, моющего средства, ржавчины.

1. Независимо от результатов пробы изделия промыть водой или спиртом.
2. При положительной пробе вся партия изделий подлежит повторной обработке.
3. Запись результатов в журнал.

 

АМИДОПИРИНОВАЯ ПРОБА

Проводится для оценки качества отмывания с поверхности инструмента крови.

Состав:

— 5% спиртовой раствор амидопирина;

— 30% раствор уксусной кислоты;

— 3% раствор перекиси водорода.

Действия:

1. Смешать в отдельной ёмкости все перечисленные ингредиенты.

2. Нанести смесь на инструменты в местах, соприкасающихся с раневой поверхностью, местах соединения подвижных частей инструментов.

3. Немедленно или не позднее чем через минуту оценить результат. Появление фиолетового (сине-зеленого) окрашивания говорит о положительной реакции.

— При положительной реакции

всю партию изделий медицинского назначения снова помещают в моющий раствор для повторного проведения предстерилизационной обработки

— При отрицательной пробе всю партию изделий медицинского назначения стерилизуют.

4. Инструмент, на котором проводилась проба, промывают под проточной водой и помещают в ёмкость с моющим раствором для повторной обработки.

ФЕНОЛФТАЛЕИНОВАЯ ПРОБА

Проводится для оценки качества отмывания с поверхности инструмента моющего средства.

Приготовить:
1%-ый спиртовой раствор фенолфталеина.

Действия:

 

1. Нанести 2-3 капли раствора на инструмент в местах его соприкосновения с раневой поверхностью и на соединение подвижных частей инструмента.

2. Оценить окрашивание. Появление розового окрашивания говорит о наличии неотмытых поверхностно-активных веществ. В этом случае всю партию изделий повторно промывают проточной, а затем дистиллированной водой. Инструмент, на котором проводилась проба, промывают под проточной водой и помещают в ёмкость с моющим раствором для проведения повторной предстерилизационной обработки.

 

Качество очистки катетеров или других полых изделий проверяют путём введения реактива внутрь изделий с помощью шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 0,5-1 мин., после его сливают на марлевую салфетку.

 

Предстерилизационной обработке должны подвергают все изделия медицинского назначения с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных

Предстерилизационной обработке должны подвергают все изделия медицинского назначения с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. Проверку качества предстерилизационной обработки медицинского инструментария проводят с помощью постановки проб на наличие остатков крови и полноту отмывания изделий от щелочных компонентов. Контролю подлежит 1% каждого вида изделий, обработанных за сутки. Для предотвращения коррозии (ингибиция) при использовании моющего раствора, содержащего 0,5% перекиси водорода и 0,5% синтетического моющего средства «Лотос» применяют ингибитор коррозии — 0,14% олеат натрия. К 1 л моющего раствора добавляют 1,4%-ный олеат натрия. Для предохранения инструментария от коррозии использованные в ходе операции или манипуляции инструменты, загрязненные кровью, можно погружать в 1%-ный раствор бензоата натрия и ингибитор коррозии при комнатной температуре на время не менее 60 минут.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводится постановкой следующих проб:

• фенолфталеиновой — на качество отмывки от синтетических средств «Лотос», «Астра», «Айна». На «Биолот», «Прогресс», «Новость» фенолфталеин не действует;

• азопирамовой или амидопириновой — на качество отмывки от крови и лекарственных препаратов.

Фенолфталеиновая проба — на ватный тампон наносят несколько капель 1%-ного спиртового раствора фенолфталеина и этим тампоном протирают испытуемый инструмент. Появление розового окрашивания указывает на некачественную отмывку от моющих средств.

Азопирамовая проба — содержит 10% амидопирина: 0,10—0,15% солянокислого анилина, 95% этилового спирта. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темном месте в холодильнике два месяца, при комнатной температуре 18—23 °С не более месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Приготовление рабочего раствора: непосредственно перед проверкой качества очистки готовят рабочий раствор, смешивая равные объемы «азопирама» и 3%-ного раствора перекиси водорода. Приготовленный раствор «азопирама» наносят на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 минуту появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, то реактивом пользоваться нельзя.

Методика постановки реакции. Рабочим раствором обрабатывают исследуемые изделия, протирают тампонами, смоченными реактивом, различные поверхности аппаратуры и оборудования, наносят несколько капель на исследуемый предмет. Иглы, катетеры, шприцы проверяют следующим способом. В шприц наливают рабочий раствор (3—4 капли) и несколько раз продвигают поршнем, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно место соединения шприца с металлом. Реактив в шприце, катетере оставляют на 0,5—1 минуты. После этого реактив вытесняется на вату или белую бумагу. В присутствии следов крови менее чем через 1 минуту после контакта реактива с загрязненным участком появляется вначале фиолетовое окрашивание, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое. Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины, фиолетовое — при наличии хлорсодержащих окислителей.

Особенности реакции:

1. Окрашивание, наступившее позже чем через 1 минуту после обработки исследуемых предметов, не учитывается.

2. Исследуемые предметы должны иметь комнатную температуру. Нельзя подвергать проверке горячие предметы.

3. Держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре запрещается.

4. Рабочий раствор «азопира» должен быть использован в течение 1—2 часов.

5. После проверки, независимо от результатов, следует удалить остатки азопирама с исследуемых предметов, обмыв их водой или протерев тампоном, смоченным водой или спиртом, а затем повторить предстерилизационную очистку этих предметов.

1. После проведения дезинфекции инструменты промывают под сильной струей проточной воды в течение 3—5 минут.

2. Затем полностью погружают в моющий раствор при температуре 50 °С на 15 минут. Температуру моющего раствора в процессе мойки не поддерживают. Неизмененный раствор можно нагревать до 6 раз в течение суток, за исключением моющего средства «Биолот». Его применяют однократно, так как при повторном использовании фермент, входящий в состав моющего средства, разрушается в процессе очистки.

3. Мытье каждого изделия в мыльном растворе ершом или ватно-марлевым тампоном в течение 30 с.

4. Ополаскивание под проточной водой в течение 10 минут при применении моющего средства «Биолот» — в течение 3 минут, моющего средства «Прогресс» — в течение 5 минут.

Амидопириновую пробу проводят смешиванием равных количеств 5% спиртового раствора амидопирина и 5%-ной перекиси водорода, добавляют несколько капель 30% уксусной кислоты. При наличии крови происходит сине-фиолетовое окрашивание. Самоконтроль проводя! ежедневно, главная медсестра — 1 раз в неделю, СЭС — 1 раз в квартал.

Предстерилизационную очистку проводят ручным или механизированным способом (с помощью специального оборудования). Струйный метод:

5. Ополаскивание дистиллированной водой в бачке в течение 30 с.

6. Сушка горячим воздухом при температуре 85 °С до полного исчезновения влаги в сушильном шкафу.

7. Затем ставят пробы. При положительной пробе предстерилизационную очистку проводят заново. Если инструмент, загрязненный кровью, может быть промыт под проточной водой тотчас после его использования при проведении той или иной манипуляции, то его не погружают в раствор ингибитора коррозии — бензоат натрия. Если такой возможности нет, то перед предстерилизационной очисткой инструменты, загрязненные кровью, погружают в 1%-ный раствор бензоата натрия сразу же после их использования на 60 минут, температура раствора 22—27 °С. В случае необходимости инструменты можно оставить погруженными в раствор бензоата натрия до 7 ч.

Приготовление моющего раствора.

Моющее средство 5 г, пергидроль 27,5% — 17 г, 33% — 16 г. Можно использовать перекись водорода 6% 85 г, 3% — 170 г, вода до 1 л (978 г).

Обновлено: 2019-07-09 23:49:23

Этапы предстерилизационной очистки. Дезинфекция изделий медицинского назначения

В медицинских учреждениях с целью недопущения распространения инфекции, а также в соответствии с санитарно-гигиеническими нормами проводится стерилизация всех инструментов. Перед этим сотрудниками младшего медицинского персонала выполняется предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения. Рассмотрим, в чем она заключается, как выполняется.

Для чего нужна предстерилизационная очистка

Целью этой процедуры является устранение различных загрязнений и белковых частиц, которые остаются на инструментах в процессе выполнения различных медицинских вмешательств. Это необходимо для того, чтобы не допустить загрязнение и выход из строя оборудования.Также эта процедура нужна, чтобы обеспечить высокое качество стерилизации инструментов в автоклавах. Чтобы убрать все загрязнения, нужно совершить целый ряд действий.

Существуют строго прописанные в санитарных нормах этапы предстерилизационной очистки, последовательное выполнение которых за короткое время позволяет максимально удалить все белковые загрязнения.

Из каких этапов состоит процесс

Первым этапом обработки медицинских инструментов является их дезинфекция с последующей промывкой, чтобы убрать все следы обеззараживающего вещества. Стерилизация инструментов оказывается эффективной только в том случае, если их подготовка перед погружением в автоклав выполнена с соблюдением всех необходимых норм. Поэтому сотрудники (младший медперсонал) должны относиться к данной работе очень ответственно. В настоящее время выделяют следующие этапы предстерилизационной очистки:

• Промывание после дезинфекции.
• Замачивание.
• Мытье в моющем растворе.
• Споласкивание при помощи обычной проточной воды.
• Споласкивание дистиллированной водой.
• Сушка горячим воздухом.
• Контроль качества.

Определить, насколько хорошо была выполнена обработка медицинских инструментов, помогают лабораторные пробы: азопирамивая и фенолфталеиновая. При этом первая позволяет выявить остатки крови на медицинской посуде, а вторая дает возможность выяснить, насколько качественно были смыты чистящие вещества.

Промывание и замачивание

После дезинфекции, выполняемой как химическими, так и физическими методами, приступают к промыванию медицинских изделий. На данном этапе предстерилизационной очистки добиваются полного устранения остатков и запаха дезинфицирующих веществ. Для этого медицинское оборудование помещают под проточную воду и промывают примерно 30 секунд.

Предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения выполняется при помощи специальных моющих растворов, в которые все оборудование полностью погружается и выдерживается в интервале от 15 до 60 минут. Для этого часто используется смесь 6 % перекиси водорода, воды и синтетического моющего вещества.

Чтобы замачивание было максимально эффективным и приводило к нужному результату за короткое время, моющий раствор дополнительно нагревают до температуры от 40 до 50 градусов Цельчия. При замачивании медицинских инструментов особенно важно, чтобы все полости и каналы были полностью заполненными раствором. Для этого на очистку оборудование поступает только в разобранном виде.

Мытье

Все медицинские инструменты моются в тех растворах, в которых происходило их предварительное замачивание. Для этого применяются специальные щетки, ершики или заранее изготавливаемые ватные тампоны. На этом этапе предстерилизационной очистки обработке каждого инструмента или его составной детали уделяется по 30 секунд. При ручном способе не допускается использование ершиков для мытья устройств и приспособлений, в конструкции которых имеются хрупкие элементы из резины и других материалов.

Предстерилизационная обработка медицинских изделий в специальных моечных машинах является более предпочтительной по сравнению с ручным способом. Автоматические режимы стерилизации исключают возможность инфицирования персонала медучреждения, а также обеспечивают быструю и качественную очистку. Кроме того, при таком способе сокращается общее время нахождения инструментов в дезинфицирующих растворах. Весь процесс обработки становится гораздо менее трудоемким для персонала.

Споласкивание

Не менее важным является этап споласкивания инструментария. Необходимость в этом обусловлена применением большого количества обеззараживающих веществ в процессе мытья оборудования. На данном этапе предстерилизационной очистки важно максимально полно устранить остатки всех применяемых растворов с поверхностей медицинских инструментов.

Максимально эффективно и быстро справиться с этой задачей позволяет ополаскивание оборудования под проточной водой. В зависимости от того, какое именно дезинфицирующее средство применялось в процессе мытья, время, отводимое на споласкивание, может варьироваться от 30 секунд до 10 минут. После обработки инструментов под водой проточной их обязательно дополнительно ополаскивают и дистиллированной. Выполняют такую процедуру в течение непродолжительного времени. Это необходимо для того, чтобы в процессе сушки и стерилизации на поверхностях оборудования не оседали соли, которые всегда есть в обычной воде.

Просушивание

Современные автоклавы имеют такие режимы стерилизации, при которых достигается полное обеззараживание медицинских инструментов. Однако помещать их в агрегат с остатками воды нельзя. Поэтому дезинфекция изделий медицинского назначения обязательно также включает в себя просушивание.

Чтобы эта процедура не занимала много времени, проводят ее не на воздухе, а в специальных сушильных шкафах. В них размещают предварительно промытые медицинские инструменты и выдерживают при температуре 85 ºС до полного исчезновения влаги. Обработка горячим воздухом в сушильных шкафах существенно упрощает процесс медицинской предстерилизационной очистки, поскольку выполняется в автоматическом режиме. Это исключает необходимость в каких-либо действиях медицинского персонала.

Контроль качества

Чтобы определить, насколько качественно были выполнены все этапы предстерилизационной очистки, проводят азопирамовую и фенолфталеиновую пробы.

Азопирамивая проба предназначена для выявления неполного удаления загрязнений в виде крови с поверхностей медицинских инструментов. Для этого используется свежеприготовленный раствор изопирама. При его нанесении на поверхности, имеющие кровяные загрязнения, дает фиолетовое окрашивание.

Фенолфталеиновая проба выполняется для определения того, остались ли на поверхностях медицинских инструментов моющие и обеззараживающие средства. Если в результате этих двух исследований хоть одна проба даст положительный результат, всю процедуру очистки проводят повторно. Действия на каждом этапе нужно выполнять максимально качественно, ведь от этого зависит здоровье пациентов, а порой и их жизнь.

Мы рассказали, как проводится предстерилизационная очистка медицинского инструментария.

Контроль качества предстерилизационной обработки

Лекция №5. Предстерилизационная обработка изделий медицинского назначения.

Для инструментария, который соприкасается со слизистыми оболочками и ранами, в том числе операционными, одной дезинфекции недостаточно. Требуется стерилизация. Но перед этим проводят предстерилизационную обработку.

Цель предстерилизационной обработки — удаление белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов.

Предстерилизационная (биологическая) обработка проводится после очистки, дезинфекции и отмывания остатков дезинфицирующих средств проточной питьевой водой.

Общие положения:

1. Предстерилизационной обработке должны подвергаться все изделия медицинского назначения перед их стерилизацией.

2. Для предстерилизационной обработки используют различные моющие комплексы.

3. Предстерилизационную обработку проводят ручным или механизированным способом. При ручном способе используют емкости из пластмасс, стекла или покрытые эмалью.

4. Предстерилизационная обработка изделий может быть совмещена с их дезинфекцией.

5. Разъемные изделия подвергают предстерилизационной обработке в разобранном виде. При замачивании в моющем растворе изделия полностью погружают в него, заполняя им каналы и полости изделия.

6. Мойку осуществляют с помощью ерша, ватно-марлевых тампонов, тканевых салфеток; каналы промывают с помощью
шприца. Использование ерша при очистке резиновых изделий не допускается.

 

 

Этапы обработки инструментария

Очистка — загрязненные инструменты перед дезинфекцией моют в водопроводной воде в специальной закрытой емкости (промывные воды). После чего воду и раствор перед сливанием в канализацию обеззараживают дезинфицирующим раствором, так как они инфицированы.

I. Дезинфекция

 

Промывание под проточной водой.

II.а) Замачивание в моющем растворе не менее 15 минут.
Приготовление моющего раствора:

1. 5 граммов порошка «Биолот» + 995,0 воды = 1 литр моющего раствора;

2. 5 граммов порошка «Астра», «Айна», «Лотос», «Прогресс» + 20,0 33% перекиси водорода + 975,0 воды;

3. 5 граммов СМС + 200,0 3% перекиси водорода + 795,0 воды;

4. 5 граммов СМС + 100,0 6% перекиси водорода + 895,0 воды.

Температура раствора зависит от его состава.

Если использованы моющие средства с белковыми добавками (в названии имеют обозначение «БИО» — «Биолот», «Био-Хенк»), то температура 40С, поскольку при более высокой температуре наступает разрушение белков. В то же время нельзя пользоваться остывшим раствором, так как при температуре 30С активность ферментов резко снижается. Эти растворы повторно не используются.

Для синтетических моющих средств (СМС) исходная температура должна быть 5ОС («Лотос», «Айна», «Астра» и их аналоги). Моющие растворы можно подогревать и повторно использовать в течение суток (но не более 6 раз), если нет розового окрашивания и видимого загрязнения.

 

б) Мойка в моющем растворе. Одинаково тщательно отмывается внутренняя и наружная поверхность. Для этого используют марлевые тампоны, щетки, «ерши», мандрены, резиновые груши. Время, затрачиваемое на мытье каждого изделия, не должно быть меньше 30 секунд.

 

в) Ополаскивание в проточной воде. Используется струйная подача воды. Если моющее средство «Биолот»- не менее трех минут, и не менее пяти минут после использования СМС «Прогресс». Если моющий раствор готовили с СМС «Астра», «Лотос»,
«Айна» и т.п., ополаскивание продолжается не менее 10 минут. Температура воды для ополаскивания не ниже 18С.

г) Ополаскивание в дистиллированной воде.

Этот этап проводится с целью удаления остатков моющего средства с изделий. Инструменты, изделия погружают в бак с дистиллированной водой после стекания с них водопроводной проточной воды и ополаскивают в течение полминуты или 1 минуты.

После ополаскивания изделия подвергаются контролю на качество предстерилизационной обработки, т.е. проверке на наличие остатков крови и моющих средств.

Если выявлены остатки крови на изделиях, то вся партия подвергается повторной предстерилизационной обработке по всем ее этапам.

Если выявлены остатки моющих средств, то возвращают всю партию для ополаскивания.

Если положительны пробы и на кровь и на моющее средство, то партия изделий обрабатывается повторно полностью по всем этапам.

 

 

Контроль качества предстерилизационной обработки

Качество предстерилизационной обработки контролируют путем проб:

на наличие крови — с помощью азопирамовой и амидопириновой;

масляных лекарственных загрязненийна шприцах и других изделиях — пробы Суданом 3;

щелочных компонентов моющего средства — фенолфталеиновой пробой.

Азопирамовая проба. Готовят 1-1, 5% раствор солянокислого анилина в 95% этиловом спирте. Он может, храниться в плотно закрытом флаконе при + 4°С (в холодильнике) 2 месяца, а в темноте при комнатной температуре (18-20°С) не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выделения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед пробой готовят раствор: смешивают в равных количествах азопирам и 3% раствор перекиси водорода.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1 -2 часов, иначе может появиться спонтанное розовое окрашивание.

При температуре +25°С раствор розовеет быстрее, поэтому его используют в течении 30минут. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать раствор при ярком свете, повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов).

Амидопириновая проба. Готовят спиртовой 5% раствор амидопирина в 95% этиловом спирте, которой может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца. 30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода готовят на дистиллированной воде.

Перед применением смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода.

Проба с азопирамом по чувствительности не уступает отмененной бензидиновой пробе и в 10 раз превосходит амидопириновую. При азопирамовой пробе фиолетовое окрашивание в течение нескольких секунд переходит в розово — сиреневое или буроватое.

Проба Суданом 3. В 70 мл нагретого до 60 °С (на водяной бане) 95% этилового спирта растворяют по 0,2г измельченной краски Судана 3 и метиленового синего. Затем добавляют 10мл раствора аммиака 20-25% и 20мл дистиллированной воды. Данный раствор хранят в плотно закрытом флаконе (в холодильнике) 6 месяцев.

Фенолфталеиновая проба. Готовят спиртовой раствор 1% фенолфталеина, который хранится во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

При положительной пробе на кровь, жировое загрязнение или на моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной очистке (до получения отрицательной пробы). Контролю подвергают 1% каждого наименования изделий, обработанных за сутки, а в ЦСО — за смену.

 

Цветные реакции на кровь
Азопирамовая проба Амидопириновая проба

Приготовление раствора (реактива) непосредственно перед пробой

1/2ч азопирама +

1/2 ч перекиси водорода3%

1/3 ч спиртового раствора амидопирина + 1/3 ч уксусной кислоты 30% + 1/3 ч перекиси водорода 3%

Смочить ватный тампон с реактивом -протереть инструмент или 2-3 капли нанести на изделие

Ввести пипеткой 3-4 капли внутрь шприца подвигать поршнем; через 0,5-1 минуту вытеснить реактив на ватку

Чистым шприцом наби­рают реактив, выдавливают 3-4 капли через иглу на марлевую салфетку

В катетеры

и другие

полые

изделия

набирают

чистым

шприцем

реактив и

сливают на

салфетку

через 1 минуту

Тампон или капля реактива, нанесенная на марлевую салфетку, дают фиолетовое окрашивание немедленно или в течение 1 минуты. Окрашивание, наступившее позже, не учитывается.

Контроль качества предстерилизационной очистки
Фенолфталеиновая проба Проба с Суданом 3

Цветная реакция на полноту отмывки от моющих средств

При использовании щелочных моющих средств

Цветная реакция на полноту отмывки от жировых загрязнений

При парентеральном введении масляных растворов

Протирание (введение внутрь) инструментов, шприца, иглы и т. д. ватным тампоном, смоченным фенолфталеином
Смачивание поверхностей инструментов 3-5 мл реактива или введение внутрь шприца, смачивающего им всю поверхность.

Через 10 минут смыть водой.

При наличие моющего средства – Желтые пятна и подтеки —

розовое окрашивание инструмент загрязнен

 

 

 

 

 

 

Этапы предстерилизационной обработки	Состав моющего комплекса (на 1 литр)	Температура моющего комплекса	Время выдержки
1 . Ополаскивание под проточной водой после дезинфекции			0,5 мин.
2. Замачивание в моющем комплексе	а) «Биолот» — 5гр вода — 995 мл	40 -45С	15 мин.
б) СМС — 5гр, 3% перекись водорода -200мл вода — 795 мл	50-55С	15 мин.
в) СМС — 5гр, 33% перекись водорода -20мл вода — 975 мл	50-55С	1 5 мин.
г) СМС 5гр, 6% перекись водорода — 100мл вода — 895 мл	50-55С	15 мин.
3. Мойка в моющем комплексе при помощи ерша.		Температура во время мойки не поддерживается	0,5 мин.
4. Промывание изделий под проточной водой	а) после использования «Биолота»	3 мин.
б) после использования «Прогресса», «Марички»	5 мин.
в) после использования «Айны» «Астры», «Лотоса»	1 0 мин.
5. Обессоливание: промывание дистиллированной водой или кипячение в дистиллированной воде.		0,5 мин. 15 мин.
6. Просушка	Выкладывание на чистое полотенце сразу после кипячения
8. Упаковка для стерилизации	В двухслойную бязь или в крафт-пакет.

 

Читайте также:

Рекомендуемые страницы:

Поиск по сайту

Предстерилизационная очистка

⇐ ПредыдущаяСтр 3 из 6Следующая ⇒

 

Предстерилизационная очистка проводится после дезинфекции изделий медицинского назначения с предварительным промыванием остатков дезинфицирующих средств в проточной воде. Она предусматривает удаление с изделий белковых, жировых, механических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов и материалов.

Предстерилизационную очистку осуществляют ручным или механизированным способом.

Механизированную очистку проводят с использованием ультразвука в специальных установках. Методика проведения предстерилизационной очистки механизированным способом должна соответствовать инструкции по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию.

Инструменты, предназначенные для ультразвуковой очистки помещают в установку и заливают моющим раствором. Обработка инструментария с помощью звука ультравысокой частоты проводится в моющем растворе в течение 15 мин. Последующие этапы регламентируются ОСТом.

Предстерилизационную очистку инструментария ручным способом проводят методом погружения в моющий раствор (см. таб. №3) при соблюдении следующих условий:

— наличие емкостей достаточных размеров;

— наличие мерной посуды для пергидроля, моющего средства и воды;

— наличие термометра спиртового для измерения температуры моющего комплекса;

— разъемные изделия подвергают предстерилизационной очистке в разобранном виде;

— при замачивании изделия полностью погружают в моющий раствор, заполняя им каналы и полости изделий.

Необходимо предусмотреть погружение медицинского инструментария одномоментно только в подогретый до необходимой температуры моющий комплекс

Ручной способ очистки состоит из шести этапов:

1). Для удаления остатков дезинфицирующих средств изделия тщательно промывают проточной водой.

2). Замачивают на 15 мин вмоющем растворе, предварительно подогретом до 50-55° С.

3). Мойка каждого инструмента в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона в течении 0,5 мин.

4). Ополаскивание проточной водой в течении 10 мин.

5). Ополаскивание дистиллированной водой — 0,5 мин, на каждый инструмент.

6). Сушка на открытом воздухе или горячим воздухом до полного исчезновения вла­ги в сушильном шкафу при 85° С.

Растворы перекиси водорода с моющими средствами в рекомендуемых концентрациях — прозрачные жидкости с желтоватым оттенком, не имеют неприятного запаха, не портят обрабатываемые предметы, слабо коррозируют металлы, обладают одновременно бактерицидным, спороцидным, дезинфицирующим и моющим свойствами, нетоксичны для персонала.

Моющий раствор перекиси водорода с синтетическими моющими средствами можно использовать с момента приготовления в течение суток до 6 раз.

 

 

Таблица №3: Состав моющего раствора для предстерилизационной очистки медицинских изделий

№	Наименование компонентов	Количество компонентов для приготовления 1л моющего р-ра
1.	Пергидроль: Н2О2 — 33% Моющее средство (СМС) Вода дистиллированная	15 мл 5,0 до 1 литра раствора (от 978 мл до 980 мл)
2.	Перекись водорода 3% Моющее средство (СМС) Вода дистиллированная	200 мл 5,0 795 мл

 

Стерилизация

 

Стерилизация направлена на уничтожение всех микроорганизмов, в том числе и споровых форм, предупреждение распространения ряда инфекционных заболеваний, возбудители, которых передаются через кровь, биологические жидкости (вирусные гепатиты, ВИЧ-инфекции и др.).

Стерилизации подвергаются все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Стерилизацию проводят с помощью физических (паровой, воздушный и в среде нагретых шариков) и химических (растворы химических средств и газов) методов.

Выбор того или иного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемого изделия.

В амбулаторно-поликлинической практике наиболее распространены паровой, с использованием автоклавов, и воздушный, с использованием сухожаровых шкафов, методы стерилизации.

Паровым методом стерилизуют стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких металлов, стекла, хирургическое белье, перевязочный и шовный материалы, изделия из резин (трубки, перчатки, катетеры, зонды и т.д.), латекса и отдельных видов пла­стмасс (полиэтилен высокой плотности, ПВХ — пластикаты).

Для этих целей используют паровой стерилизатор (автоклав), куда помещают изделия в стерилизационных коробках без фильтров или с фильтрами или в двойной мягкой упаковке из бязи, бумаги мешочной непропитанной, влагопрочной, высокопрочной или крепированной.

Автоклавирование при обычном режиме проводится при давлении 2 атм., при температуре 132°, в течении 20 минут.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в стерилизационной коробке без фильтра, в двойной мягкой упаковке — 3-е суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром — 20 суток.

Воздушный метод — проводится в сухожаровом шкафу путем циркуляции сухого горячего воздуха. Обычный режим предусматривает стерилизацию при температуре 180° — 60 мин. Стерилизацию можно проводить без упаковки (в открытых емкостях, лотках, стерилизационных коробках и т.д.) и в высокопрочной упаковочной бумаге.

Рекомендуется стерилизовать данным методом изделия из металлов, стекла и резин на основе силиконового каучука.

В сухожаровом шкафу инструменты должны располагаться свободно на подносах, решетках, чтобы обеспечить прохождение горячего воздуха.

Срок использования простерилизованных изделий без упаковки — сразу после стерилизации, в высокопрочной упаковочной бумаге — 3 суток без вскрытия упаковки.

Изделия, простерилизованные без упаковки, помещают на «стерильный стол» и используют в течение одной рабочей смены.

В гласперленовых боксах стерилизация стоматологического инструментария реализуется за счет среды нагретых стеклянных шариков. Изделия стерилизуют в неупакованном виде по режимам, указанным в инструкции по эксплуатации конкретного стерилизатора.

Химический метод стерилизации предусматривает обработку инструментария растворами химических средств (см. таб. №4).

Химический метод стерилизации следует применять для стерилизации изделий из термолабильных материалов, то есть в тех случаях, когда не позволительно использовать другие официально рекомендуемые методы.

Наиболее часто стерилизационные растворы используют для изделий из полимерных материалов, резины, специального стекла, коррозийно-нестойких металлов.

Данный метод является вспомогательным и требует по окончании спроцедуры промывания инструментов стерильной жидкости (питьевая вода, 0,9%-ный раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может привести к вторичному обсеменению.

Таблица № 4: Химические методы стерилизации

Стерилизующее химическое соединение	Температура стерилизации	Время экспозиции
6% перекись водорода 6% перекись водорода 2,5% р-р глутарового алъдегида	18° — 20° 50° 20°	6 час 3 час 6 час (360мин)

 

При стерилизации растворами химических средств используют стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдержи­вающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью. Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. Каналы и полости заполняют раствором.

После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики. Изделия извлекают из раствора с помощью стерильных пинцетов (корнцангов), удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерилизационной жидкости, налитой в стерильные емкости, согласно рекомендациям методического документа по применению конкретного средства.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Стерилизация газовым методом осуществляется в стационарных газовых стерилизаторах, для чего используют смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте, а также озон.

Изделия после подсушивания упаковывают в разобранном виде в пакеты из рекомендованных упаковочных материалов, затем помещают их в аппарат.

Стерилизацию смесью ОБ и окисью этилена проводят при комнатной температуре (не менее 18°С) – 960 мин, при температуре 35°С и 55°С – 240 мин, парами раствора формальдегида в этиловом спирте при температуре 80°С – 180 мин. Изделия, простерилизованные смесью ОБ, окисью этилена или парами формальдегида в этиловом спирте применяют после их выдержки в вентилируемом помещении.

Озоном стерилизуют инструменты простой конфигурации из коррозионно-стойких сталей и сплавов, применяемых в хирургии и стоматологии (скальпели, пинцеты, зеркала цельнометаллические, гладилки, зонды, шпатели, боры стоматологические твердосплавные), в неупакованном виде. После стерилизации инструменты используют по назначению сразу (без дополнительного проветривания).

 



Предстерилизационная обработка, а также методы, средства и режимы стерилизации изделий

Предстерилизационная обработка изделий медицинского назначения

Предстерилизационная обработка изделий медицинского назначения включает дезинфекцию и предстерилизационную очистку. Во избежание инфицирования объектов внешней среды и контаминации медицинского персонала изделия медицинского назначения подвергаются дезинфекции без их предварительной очистки.

Инструменты в процессе эксплуатации, дезинфекции, предстерилизационной очистки, стерилизации могут подвергаться коррозии. Инструменты с видимыми пятнами коррозии, а также с наличием оксидной пленки подвергаются химической очистке не более 1–2 раз в квартал.

Методы, средства и режимы стерилизации

Стерилизации должны подвергаться все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами и отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Стерилизация изделий медицинского назначения проводится паровым, воздушным и химическим методами.

Перчатки стерилизуют в автоклаве при температуре 120°С, экспозиция 45 мин. Перед стерилизацией их тщательно промывают, высушивают, пересыпают внутри и снаружи тальком, раскладывают попарно и заворачивают в марлевые салфетки. Между пальцами прокладывается марля в 1–2 слоя. Перчатки дольше сохраняют прочность при химической стерилизации в 6% растворе перекиси водорода в течение 6 часов, в 4,8% растворе первомура в течение 20 мин.

При длительной непрерывной работе перчатки необходимо периодически отмывать, не снимая с рук, 0,5% раствором нашатырного спирта, раствором фурациллина 1:1 000, стерильным изотоническим раствором натрия хлорида с последующим протиранием спиртом. Использованные перчатки, подвергаются предварительной дезинфекции в 3% растворе хлорамина (экспозиция 60 мин), 4% растворе перекиси водорода (экспозиция 90 мин).

Катетеры, синтетические изделия, не выдерживающие термической обработки, стерилизуют химическими методами: погружением на 6 часов в 6% раствор перекиси водорода; в раствор первомура на 20 мин. После выдержки в первомуре промывают дважды по 5 минут стерильным 0,9% раствором натрия хлорида и заворачивают в стерильное белье.

Перевязочный материал и белье стерилизуют в автоклавах стерилизационно-дистилляционных установок. При соответствующей упаковке и хранении эти материалы годны к употреблению от 3 до 20 суток.

Основное правило при подготовке перевязочного материала к стерилизации — обязательное подворачивание краев куска марли внутрь, что предотвращает попадание мелких нитей в рану.

К операционному белью относятся медицинские халаты, застегивающиеся сзади, простыни, полотенца, полотняные салфетки, шапочки и маски. Для стерилизации перевязочный материал и белье должны помещаться в специальные контейнеры (биксы) или упаковки. Отверстия биксов должны быть открытыми. Продолжительность стерилизации перевязочного материала и белья определяется давлением пара в стерилизаторе при давлении 1,1 атм. — 45 мин, при давлении 2 атм. — 20 мин.

Момент, когда давление в стерилизаторе поднялось до нужного, принимают за начало стерилизации. Давление в стерилизаторе регулируется предохранительным клапаном и интенсивностью нагревания. По окончании стерилизации пар выпускают через выпускной кран, приоткрывают крышку стерилизатора и в таком положении проводят сушку материалов за счет тепла стенок стерилизатора. Надежность стерилизации перевязочного материала и белья должна обязательно контролироваться при каждой стерилизации.

Используют наиболее доступные методы контроля стерильности:

• применение веществ с известной (более 100°С) температурой плавления. В пробирки или ампулы насыпают одно из порошкообразных веществ: серу, антипирин. Сера плавится при температуре 110–120°С, антипирин — 113°С;
• I режим (давление 1,1 атм., t — 110°С) — препараты для контроля: антипирин, резорцин, сера, бензойная кислота, манноза;
• II режим (давление 2 атм., t — 132°С) — препараты для контроля: мочевина, никотинамид;
• сухожаровые шкафы (t — 180°С — 60 мин, t — 160°С — 150 мин) — препараты для контроля: левомицетин (160°С), кислота винная, гидрохинон, тиомочевина(180°С).

Качество стерилизации перевязочного материала и белья периодически контролируют бактериологическим методом.

Перевязочный материал из марли (бинты, салфетки и др.), не загрязненные гноем и не использовавшиеся у больных с анаэробной инфекцией, можно использовать повторно после стирки и стерилизации паровым методом. Перед стерилизацией бывшие в употреблении бинты, салфетки замачивают на 2–3 часа в 0,5% растворе нашатырного спирта, а затем еще в течение 30 мин в 0,5% растворе натрия гидрокарбоната. После этого стирают, высушивают и проглаживают горячим утюгом.

Стерилизация шовного материала (при отсутствии готового стерильного шовного материала в ампулах) осуществляется следующим образом. Мотки шелка моют в теплом мыльном растворе, прополаскивают в чистой воде, высушивают и рыхло наматывают на стеклянные катушки или предметные стекла. Существуют несколько способов стерилизации шовного материала:

1. Автоклавирование при давлении 1,1 атм., t-110°С — 45 мин;

2. Метод Кохера. Катушку с намотанным на нее шелком заливают этиловый эфиром на 12 часов, а затем после высушивания погружают на 12 часов в 70% этиловый спирт. Заканчивают стерилизацию кипячением в растворе сулемы 1:1000 в течение 10 мин и переносят для хранения до употребления в стерильную, герметичную банку с 96% спиртом. Через 2 суток берут кусочки шелка на бактериологическое исследование; 

3. Метод А. Н. Бакулева. Мотки шелка стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта с мылом, высушивают. Погружают в этиловый эфир на 24 часа. На следующий день шелк стерилизуют при давлении 2 атм. в течение 30 мин. После стерилизации укладывают, заливают 96% спиртом и хранят в течение 5 суток, после чего производят посев на стерильность. Нити капроновые, лавсановые, льняные и хлопчатобумажные стерилизуют по такой же методике. Кетгут наматывают на стеклянные катушки или предметные стекла и погружают на 3–4 дня в раствор Люголя № 1 (йода 1,0, калия йодида 2,0, дистиллированной воды 100,0), затем перекладывают на такой же срок в раствор Люголя № 2 (йода 1,0, калия йодида 2,0,96% спирта 100,0). После этого катушки с намотанным на них кетгутом переносят в сухую стерильную банку, заливают 96% спиртом и хранят в таком виде до употребления.

Стерилизация кетгута может осуществляться также 4,8% первомуром. На мотках кетгута нити, удерживающие кольцо, перевязывают более свободно. Без какой-либо предварительной обработки мотки помещают на 10 мин в 0,9% раствор натрия хлорида или дистиллированную воду для размачивания, после чего мотки кетгута переносят в чистую широкогорлую стеклянную банку и заливают рабочим раствором первомура на 20 мин. Затем антисептический раствор сливают и мотки кетгута в той же банке отмывают дистиллированной или стерильной водопроводной водой или 0,9% раствором натрия хлорида по 5 мин дважды. После отмывания с целью некоторого уплотнения мотки помещают в 96% этиловый спирт на 20 мин или просушивают в стерильных салфетках. Простерилизованный таким образом кетгут готов к немедленному употреблению или хранению в растворе Люголя.

Шовный материал перед первым употреблением подвергают бактериологическому контролю.

Указания по военно-полевой хирургии

Опубликовал Константин Моканов

Что такое стерильная обработка — определение стерилизации

Отделение стерильной обработки

Стерильный Отделение обработки (SPD), также известное как Центральный отдел стерильных услуг (CSSD), это зона в больнице, где происходит чистка и стерилизация устройств, используемых при медицинских процедурах. В Процессы, через которые проходит инструмент в CSSD, зависят от его использования, конструкции из материала и других факторов. Как правило, прибор, поступающий из операционной, поступает в зону дезактивации и составляет

.

очищается вручную, затем помещается в ультразвуковой очиститель или sonic ирригатор перед помещением в моечно-дезинфицирующую машину .Затем инструмент будет доставлен в Prep & Pack. участок необходимо подготовить к стерилизации. Затем он будет стерилизован одним из многих типов процессы стерилизации. После стерилизации инструмент будет отправлен обратно в процедурную комнату для использования. снова или в стерильное хранилище до тех пор, пока он снова не понадобится для процедуры. Техники отделения стерильной обработки должны носить средства индивидуальной защиты (СИЗ) в качестве меры предосторожности для предотвращения воздействия потенциально инфекционные бактерии. ¹

Процесс дезактивации

Загрязненные инструменты из операционной сначала доставляются в зону дезактивации для очистки от крупных загрязнений и проверки. за ущерб. Процесс дезактивации является важным этапом при переработке устройства, поскольку инструмент или устройство нельзя стерилизовать до полной очистки. В процессе дезактивации загрязненные инструменты сортируются, проверяются и при необходимости разобрал. Инструменты сначала очищаются вручную. В зависимости от устройства они могут с помощью автоматизированного процесса мойки после ручной очистки.

Причины, по которым персонал CSSD может выбрать ручную очистку устройства / инструмента, включают:

• Производитель рекомендует очищать устройство вручную
• Политика больницы гласит, что устройство необходимо очищать вручную, а затем обрабатывать в автоматическом режиме. моечная машина / дезинфектор
• Хрупкие инструменты или электрическое оборудование могут не подходить для обработки в автоматической моечной / дезинфекционной машине.
• В больнице может не быть моечно-дезинфицирующей машины

Для ручной очистки требуется мойка с двумя или тремя отсеками.В методе с тремя раковинами каждый отсек играет роль в процесс очистки. ¹

• Раковина 1: инструменты погружают в ферментный раствор, чтобы начать разрушение почвы
• Раковина 2: инструменты погружают в раствор моющего средства и чистят щеткой вручную
• Раковина 3: инструменты тщательно промыть чистой очищенной водой

Если используется мойка с двумя отсеками, процесс объединяет ферментный раствор и раствор моющего средства в одном отсеке.В второй отсек содержит чистую очищенную воду, как и в трехъярусной мойке. При очистке инструмента или устройства с просветом для разрыхления почвы можно использовать щетку или промывку водой под давлением. Смазку можно наносить после ручного уборка.

Ознакомьтесь с нашими Раковины дезактивации

Причины, по которым персонал CSSD может выбрать механическую очистку устройства с помощью ультразвуковой или ирригатор и моечная машина / дезинфектор включают:

• Моющие / дезинфекционные машины обеспечивают повышенную производительность по сравнению с ручной очисткой персонала
• Моющие / дезинфекционные машины обеспечивают постоянный, повторяемый процесс очистки, поэтому персонал может быть уверен, что устройства тщательно очищается каждый раз

Одной из форм механической очистки является ультразвуковая очистка.Ультразвуковые очистители очищают инструменты через акустические кавитация, при которой образуются пузырьки воздуха, которые взрываются на поверхности инструмента. Эти пузырьки воздуха могут достигать маленьких щели и труднодоступные места на устройстве. Ультразвуковые очистители обычно используются для очистки устройств, которые могут быть чувствительны к повреждениям и слишком хрупки для традиционных моющих / дезинфицирующих машин. Ультразвуковые очистители имеют два камеры, и могут быть разных размеров и типов в зависимости от потребностей отделения: отдельно стоящие, настольные, большая емкость и др.

Изучите нашу ультразвуковую Очистители

Процесс механической очистки также может выполняться с помощью автоматических моечных / дезинфекционных машин, которые доступны как однокамерные или многокамерные. Стиральная / дезинфекционная машина сочетает в себе удар, температуру воды и моющее средство для чистые устройства.

Ознакомьтесь с нашими Стиральная машина / дезинфектор

В процессах ультразвуковой очистки и мойки / дезинфекции индикаторы очистки часто используются для контроля и оцените производительность цикла стирки.

Процесс стерилизации

После ручной очистки, механической очистки или того и другого, инструмент будет отправлен на подготовку и участок упаковки СПД. После того, как пакет инструментов подготовлен к стерилизации, он готов к стерилизации. с помощью одного из многих методов стерилизации.

К основным методам стерилизации медицинских инструментов относятся: ¹

Стерилизация паром — Стерилизация паром является преобладающей формой стерилизации в УЗИП.А паровой стерилизатор, также известный как автоклав, подходит для стерилизации жаропрочных и влагостойких предметов. Пар Типы цикла стерилизации включают гравитационный, предварительный вакуум и SFPP (импульс давления паровой промывки). Время цикла варьируется в зависимости от типа цикла, веса и плотности загрузки, а также других переменных, таких как выдержка и время сушки. В конце цикла стерилизации, технический специалист SPD просматривает распечатку стерилизатора, чтобы убедиться, что все параметры соблюдены. Биологические и химические индикаторы используются для контроля процесса стерилизации и укажите, подвергалась ли загрузка подходящим условиям для достижения стерильности.

Познакомьтесь с нашим Steam Стерилизаторы

Низкая температура Стерилизация — Другие формы стерилизации могут включать низкотемпературную стерилизацию. такие методы, как окись этилена (EtO), испаренная перекись водорода, жидкие химические вещества и озон.

• Стерилизация оксидом этилена состоит из пяти этапов — предварительное кондиционирование и увлажнение, газ введение, выдержка, эвакуация и продувка воздухом — примерно 1-4,5 часа. Аэрация time увеличивает продолжительность цикла — дополнительно на 12 — 36 часов.
• Стерилизация испарением перекиси водорода, также известная как стерилизация газом перекисью водорода, является низкой Процесс температурной стерилизации, обычно используемый для стерилизации термочувствительных устройств. Перекись водорода процесс стерилизации включает пар H ₂ O ₂ , заполняющий стерилизационную камеру, контактировать и стерилизовать открытые поверхности устройства. По завершении цикла стерилизации пар удаляется из камеры и превращается в воду и кислород.
• Жидкостная химическая стерилизация обеспечивает безопасную и эффективную переработку чувствительных к теплу, критических и полукритические устройства, такие как дуоденоскопы и другие сложные эндоскопы.
• Стерилизация озоном — один из новейших методов стерилизации. С дополнительным атомом кислорода прикрепленный к молекуле, озон способен уничтожать микробы для стерилизации устройств. Озон не оставляет химических веществ остаток и нет токсичных выбросов.

Обеспечение стерильности

Обеспечение стерильности и безопасности инструмента жизненно важно для цикла обработки. Обеспечение стерильности мониторинг может осуществляться с помощью различных форм тестовых пакетов, выбираемых в зависимости от типа стерилизации используемый процесс или измеряемые параметры. Прохождение теста на биологические и химические индикаторы подтверждает, что соблюдены параметры цикла стерилизации. Некоторые виды продуктов по обеспечению стерильности включают: ¹

• Биологические индикаторы — Биологические индикаторы (BI) предназначены для того, чтобы летальность процесса стерилизации для уничтожения спор бактерий.Биологические индикаторы используются в процессе контрольные устройства или контрольные пакеты для повседневного мониторинга, мониторинга нагрузки и аттестации системы стерилизации. Периодичность использования биологических индикаторов определяется стандартами, инструкции производителя по применению, а также политику и процедуры предприятия. Проходящий результат BI указывает, что груз можно безопасно переместить в стерильное хранилище или операционную.
• Химические индикаторы — Химические индикаторы (ХИ) могут применяться внешне или внутри пакет-контейнер.Внешние химические индикаторы, также называемые индикаторами процесса, показывают, что набор был полностью подвергаются процессу стерилизации. Внутренние химические индикаторы, которые бывают разных форм, помещаются в наиболее опасную зону набора и проверяются персоналом операционной, чтобы подтвердить, что стерилизатор проник в нагрузка.
• Тест Боуи Дика — Тесты Боуи Дика требуются для паровых стерилизаторов с предварительным вакуумом цикл для проверки эффективности удаления воздуха и проникновения пара в камеру.Этот тест необходимо запустить ежедневно перед запуском любых циклов предварительного вакуумирования.

Изучите нашу стерильность Гарантия и мониторинг продуктов

^{1 https://university.steris.com/course/journey-of-a-surgical-instrument/}

.

биологических индикаторов для стерилизации | Центр знаний

Что такое биологические индикаторы?

Биологические индикаторы (BI), согласно определению ANSI / AAMI и ISO, представляют собой тест-системы, содержащие жизнеспособные микроорганизмы, обеспечивающие определенную устойчивость к определенному процессу стерилизации. Биологический индикатор предоставляет информацию о том, были ли соблюдены необходимые условия для уничтожения определенного числа микроорганизмов для данного процесса стерилизации, обеспечивая уровень уверенности в этом процессе.Эндоспоры или бактериальные споры — это микроорганизмы, которые в основном используются в БИ. Они считаются одними из самых сложных для убийства. Кроме того, споры бактерий выбираются для определенного процесса стерилизации на основе их известной устойчивости к этому процессу. Например, споры Geobacillus stearothermophilus демонстрируют высокую стойкость к пару и испарению перекиси водорода и поэтому используются в БИ, которые контролируют эти процессы стерилизации.

Изучите наши биологические индикаторы

Преимущества биологических индикаторов в процессе стерилизации

Биологические индикаторы, в зависимости от конкретного типа, могут использоваться для различных процессов стерилизации с использованием пара, газообразного пероксида водорода, оксида этилена и др.

Несколько факторов, например опыт оператора, подготовка загрузки и состояние стерилизатора, могут повлиять на цикл стерилизации. БИ обеспечивают прямую оценку летальности процесса, и поэтому использование БИ для регулярного мониторинга стерилизаторов обеспечивает уверенность в эффективности процесса стерилизации.

BI обычно используются в устройствах проверки процесса (PCD), которые предназначены для представления наиболее сложных продуктов, которые обычно обрабатываются. Промежуточный результат для BI в рамках этой определенной задачи демонстрирует, что стерилизатор эффективен в уничтожении большого количества высокорезистентных бактериальных спор, обеспечивая пользователям уровень уверенности в процессе стерилизации.

Процедура тестирования биологических индикаторов

Биологический индикатор состоит из материала-носителя, на который нанесены споры бактерий с определенной устойчивостью к процессу стерилизации. Материал-носитель заключен в пергамин или флакон. BI подвергается процессу стерилизации, а затем инкубируется в определенных условиях роста, чтобы определить, выжили ли какие-либо споры в процессе. Если споры не выживают, они не растут, и тест считается пройденным.Если обнаружен рост, тест считается неудачным. ¹

Независимо от типа процесса или применения, персонал стерильной обработки должен всегда следовать инструкциям производителя по применению (IFU) при использовании биологического индикатора для мониторинга процессов стерилизации.

Биологические индикаторы для стерилизации паром (автоклавы)

Биологические индикаторы (внутри УКП) часто используются для текущего контроля, аттестации и контроля загрузки парового стерилизатора.Биологические индикаторы предназначены для демонстрации того, были ли условия во время цикла пара (автоклав) адекватными для достижения определенного уровня микробной инактивации. Для паровой стерилизации BI обычно используются в PCD, и AAMI ST79: 2017 рекомендует использовать PCD еженедельно, предпочтительно ежедневно, для контроля стерилизаторов и в каждой загрузке, содержащей имплантаты.

PCD, содержащий BI и / или химический индикатор , следует размещать в наиболее трудном месте камеры.В паровом стерилизаторе он обычно находится на нижней полке возле слива. По завершении цикла PCD извлекают, а BI инкубируют. После инкубации считывается результат BI. Инкубаторы или считыватели предоставят окончательный результат прохождения теста в течение определенного периода времени.

Согласно AAMI ST79: 2017 ² , PCD, содержащие биологические индикаторы, следует использовать для регулярного мониторинга циклов паровой стерилизации не реже одного раза в неделю, предпочтительно ежедневно и в каждой загрузке, содержащей имплантаты.Персонал отделения стерильной обработки должен следовать инструкциям производителя по правильному размещению PCD, содержащего BI, в стерилизаторе.

Помимо текущего контроля стерилизатора, PCD, содержащие BI, также используются для других приложений, перечисленных ниже:

• Регулярный мониторинг неимплантационных нагрузок
• Регулярный контроль нагрузки на имплант. AAMI ST79: 2017 рекомендует использовать PCD, содержащий интегрирующий индикатор BI и 5-го типа. Персонал стерильной обработки также может использовать PCD, содержащий химический индикатор типа 6 и BI.В любом случае партии, содержащие имплантаты, должны быть помещены в карантин до тех пор, пока не станут известны результаты BI, за исключением экстренных ситуаций.
• Аттестация стерилизаторов после установки, перемещения, капитального ремонта, неисправности и сбоев в процессе стерилизации
• Периодические проверки качества продукции

Биологические индикаторы для стерилизации паром перекисью водорода

Биологические индикаторы также используются для мониторинга процессов стерилизации испарением перекиси водорода (VHP).Стерилизаторы с испарением перекиси водорода часто включают несколько циклов, предназначенных для эффективной стерилизации широкого диапазона хирургических инструментов и устройств, и биологический индикатор стерилизации VHP должен быть валидирован для использования в каждом цикле. Биологические индикаторы для мониторинга стерилизации перекисью водорода включают автономные биологические индикаторы, тестовые пакеты или контрольные пакеты. AAMI ST58: 2013 рекомендует использовать PCD с BI ежедневно, предпочтительно каждый цикл, для контроля стерилизаторов и при каждой загрузке, содержащей имплантаты.

Типы биологических индикаторов процессов стерилизации

Существуют различные типы биологических индикаторов в зависимости от необходимости и процесса стерилизации. Самый распространенный тип — это автономные биологические индикаторы (SCBI). Эти индикаторы объединяют материал-носитель со спорами и питательной средой в одном флаконе, устраняя необходимость в асептическом переносе. ¹ После стерилизации флакон активируют, позволяя спорам смешаться со средой для выращивания, и инкубируют, чтобы споры могли расти.В некоторых конструкциях SCBI используется система обнаружения на основе ферментов, которая может быстрее обнаруживать активность ферментов с более коротким временем инкубации.

Независимо от конструкции, биологические индикаторы используются во время процесса стерилизации паром, процесса стерилизации перекисью водорода или процесса этиленоксида, чтобы гарантировать эффективность и летальность процесса.

Где купить биологические индикаторы?

Медицинским учреждениям следует приобретать BI из надежных и доступных источников, чтобы их можно было легко повторно заказать.Биологические индикаторы можно приобрести в компаниях, предлагающих средства для стерилизации и профилактики инфекций . Факторы, которые могут быть учтены при принятии решения о том, какие биологические индикаторы покупать, включают время инкубации, торговую марку, стоимость, ассортимент и разнообразие продуктов, проверенные приложения и простоту использования. См. ISO 11138-7: 2019 для получения дополнительной информации о выборе поставщика.

^{1 https://university.steris.com/course/indicators-disinfection-and-sterilization/
2 ANSI / AAMI ST79: 2017 Всеобъемлющее руководство по стерилизации паром и обеспечению стерильности в медицинских учреждениях.Ассоциация по развитию медицинского оборудования; 2017}

.

Основы обработки и стерилизации — Отделение стерилизации и обработки материалов

Введение

Отделение стерильной обработки (центральное снабжение или стерильное снабжение, как его еще называют) включает в себя эту службу в больнице, в которой медицинские / хирургические принадлежности и оборудование, как стерильные, так и очищаются, подготавливаются, обрабатываются, хранятся и выдаются для уход за пациентом.

До 1940-х годов медицинские / хирургические принадлежности по большей части обрабатывались и обслуживались в отделениях и помещениях для ухода за пациентами, в которых они должны были использоваться.При этой системе происходило значительное дублирование усилий и оборудования, и было трудно поддерживать неизменно высокие стандарты техники стерилизации и качества продукции во всем медицинском учреждении.

По мере роста количества и разнообразия хирургических процедур и увеличения количества типов медицинских устройств, оборудования и расходных материалов стало очевидно, что централизованная обработка данных необходима для повышения эффективности, экономии и безопасности пациентов. Работа ученых W.B. Андервуд и Дж.Дж. Перкинс (3) сыграл важную роль в поощрении медицинских учреждений к созданию отдельного и обособленного отделения, Отделения стерильной обработки, со специализированным опытом и прямой ответственностью за предоставление чистых и стерильных медицинских / хирургических принадлежностей и оборудования в зоны обслуживания пациентов.

Функции

Отделения стерильной обработки

обычно делятся на четыре основные зоны для выполнения функций обеззараживания, сборки и стерильной обработки, стерильного хранения и распределения.

В зоне дезактивации многоразовое оборудование, инструменты и расходные материалы очищаются и обеззараживаются с помощью процессов ручной или механической очистки и химической дезинфекции.

Чистые предметы поступают в зону сборки и упаковки , , , из зоны дезактивации, а затем собирают и подготавливают для выдачи, хранения или дальнейшей обработки (например, стерилизации).

После сборки или стерилизации предметы перемещаются в зону стерильного хранения до момента их выдачи.

В распределительной зоне выполняются несколько основных функций : подготовка и доставка тележек для ящиков; обменять тележку инвентарь, пополнение и доставка; заполнение телефонной заявки и заявки-заявки; и, иногда, доставка оборудования для ухода за пациентами.

Процесс дезактивации

Введение

Обеззараживание — это физический или химический процесс, при котором неодушевленный объект, который может быть заражен вредными микробами, становится безопасным для дальнейшего обращения.Целью обеззараживания является защита работников, занимающихся подготовкой и упаковкой, которые контактируют с медицинскими изделиями после процесса обеззараживания, от заражения болезнями, вызванными микроорганизмами на этих устройствах.

Этапы процесса обеззараживания

1. Транспортировка — Использованные расходные материалы и оборудование необходимо собрать и доставить в зону дезактивации в отделении стерильной обработки таким образом, чтобы избежать заражения персонала или любой зоны больницы.Оборудование должно быть накрыто, а предметы снабжения следует перемещать в закрытых тележках, закрытых бочках или контейнерах или закрытых пластиковых пакетах.
2. Одежда — Персонал, работающий в зоне дезактивации, должен носить защитную одежду, которая включает в себя рабочую форму, покрытую влагостойким барьером, бахилы, резиновые или пластиковые перчатки и покрытие для волос. Во время ручной очистки, когда может произойти разбрызгивание, необходимо надевать защитные очки и лицевую маску.
3. Сортировка — сортировка начинается с момента использования.Работа с зараженными предметами должна быть сведена к минимуму, если пользователь устройства уже не носит полную личную защитную одежду, например, после ухода в операционной. В районах, где рабочие не носят защитную одежду или не имеют ее, сортировка должна заключаться только в удалении одноразовых острых предметов и утилизации других одноразовых предметов.
4. Замачивание — это необходимо только в том случае, если у вас есть просветы или другие сложные конструкции, заполненные мусором, или если устройства сильно окровавлены и их нельзя промыть или протереть во время использования.

5. Мойка

   • Моющее средство — должно быть совместимо с материалами в устройстве и подходить к типу почвы. Проконсультируйтесь с рекомендациями производителя устройства.
   • Оборудование — доступно множество видов уборочного оборудования, наиболее часто используемые:
     • Стиральная машина / дезактивация — моечная машина / дезактивирующая установка используется для мытья теплостойких предметов. Цикл состоит из нескольких стирок и полосканий, за которыми следует цикл стерилизации паром, соответствующий типам предметов, содержащихся в загрузке.Несмотря на то, что они подвергаются циклу, предназначенному для стерилизации чистых предметов, предметы, обработанные в моечной / дезинфицирующей машине, не должны считаться стерильными в конце процесса. Причина этого в том, что предметы попадают в моечную / дезинфицирующую машину с неизвестным, но, вероятно, очень высоким уровнем микробного загрязнения, которое цикл стерилизации не может полностью уничтожить.
     • Ультразвуковой — ультразвуковая моечная машина предназначена для удаления мелких загрязнений с хирургических инструментов после ручной очистки и перед стерилизацией.Оборудование работает путем преобразования высокочастотных звуковых волн в механические колебания, которые очищают поверхность инструментов от почвы. Высокочастотная энергия вызывает образование микроскопических пузырьков на поверхности инструментов, и когда пузырьки лопаются, образуются крошечные области вакуума, вытягивая мельчайшие частицы мусора из щелей инструментов. Этот процесс называется кавитацией.
     • Мойки туннельные — напоминают мини-автомойку. Основным преимуществом этих устройств является то, что большинство из них позволяют полностью автоматизировать обработку.Инструменты в перфорированных лотках или лотках с сетчатым дном могут поступать непосредственно из операционной или другого отделения и помещаться в туннельную моечную машину без каких-либо дополнительных манипуляций или укладок. Внутри инструменты проходят циклы предварительного ополаскивания, мойки, ультразвуковой обработки, ополаскивания и сушки.
     • Мойки тележек — тележки и другие транспортные средства и контейнеры необходимо регулярно очищать от пыли и разливов. есть циклы стирки, полоскания, пара и сушки. Тележки помещаются в стиральную машину в наклонном положении, чтобы вода могла стекать и предотвращать ограничение движения любых движущихся частей внутри стиральной машины.Предметы, снятые с этого типа стиральной машины, очень горячие, и перед обработкой их необходимо дать остыть. Перед контактом с чистыми или стерильными предметами тележки необходимо тщательно высушить.
   • Проверка — после очистки все инструменты должны пройти проверку перед упаковкой для повторного использования или хранения. Замки коробок, зазубрины и щели должны быть тщательно проверены на чистоту.

     Инструменты с режущими кромками, такие как ножницы, кусачки, стамески, кюретки и т. Д., следует проверить на резкость. На нем не должно быть тусклых пятен, сколов или вмятин.

     Шарнирные инструменты, такие как зажимы и щипцы, следует проверять на жесткость и соосность челюстей и зубов. Наконечники должны быть правильно выровнены, челюсти должны точно совпадать, а суставы должны легко двигаться. Трещотки должны легко закрываться и крепко держаться. Любые инструменты со шпильками или винтами следует проверить, чтобы убедиться, что они целы. Инструменты с покрытием следует проверять, чтобы убедиться в отсутствии сколов, потертостей или острых краев.Изношенные места могут заржаветь во время автоклавирования. Сколы на обшивке могут скапливать грязь и повредить ткани и резиновые перчатки. Если в процессе проверки будут обнаружены какие-либо проблемы, эти инструменты следует либо очистить снова, либо отправить в ремонт в зависимости от обнаруженной проблемы.

Процесс стерилизации

Введение

Споры бактерий являются наиболее устойчивыми из всех живых организмов из-за их способности противостоять внешним разрушающим агентам.Хотя физический или химический процесс, с помощью которого уничтожаются все патогенные организмы и микроорганизмы, включая споры, не является абсолютным, расходные материалы и оборудование считаются стерильными, если в процессе стерилизации были соблюдены необходимые условия.

Методы

Надежная стерилизация зависит от контакта стерилизующего агента со всеми поверхностями стерилизуемого предмета. Выбор средства для достижения стерильности зависит в первую очередь от природы стерилизуемого предмета.Время, необходимое для уничтожения спор в оборудовании, доступном для процесса, становится критическим.

Пар

Тепло уничтожает микроорганизмы, но этот процесс ускоряется добавлением влаги. Пар сам по себе не подходит для стерилизации. Давление, превышающее атмосферное, необходимо для повышения температуры пара для термического разрушения микробной жизни. Смерть от влажного тепла в виде пара под давлением вызывается денатурацией и коагуляцией белка или ферментно-белковой системы внутри клеток.Эти реакции катализируются присутствием воды. Пар — водяной пар; он насыщен, когда в нем содержится максимальное количество водяного пара.

Прямой контакт с насыщенным паром — основа парового процесса. Пар в течение определенного времени при требуемой температуре должен проникать в каждое волокно и достигать каждой поверхности предметов, подлежащих стерилизации. Когда пар под давлением попадает в камеру стерилизатора, он конденсируется при контакте с холодными предметами. Эта конденсация высвобождает тепло, одновременно нагревая и смачивая все предметы в загрузке, тем самым обеспечивая два необходимых условия: влагу и тепло.

Ни одно живое существо не может выжить при прямом воздействии насыщенного пара при температуре 250 F (120 C) дольше 15 минут. При повышении температуры время может уменьшаться. Для обеспечения эффективной стерилизации необходимо поддерживать минимальное соотношение температуры и времени для всех порций загрузки. Время воздействия зависит от размера и содержимого загрузки, а также от температуры в стерилизаторе. В конце цикла повторное испарение водяного конденсата должно эффективно высушивать содержимое загрузки для сохранения стерильности.

Оксид этилена

Оксид этилена используется для стерилизации предметов, чувствительных к нагреванию или влаге. Оксид этилена (ЭО) — это химический агент, который убивает микроорганизмы, включая споры, вмешиваясь в нормальный метаболизм белков и репродуктивные процессы (алкилирование), что приводит к гибели клеток. При использовании в газообразном состоянии газообразный эфир ЭО должен иметь прямой контакт с микроорганизмами на предметах, подлежащих стерилизации, или в них. Поскольку ЭО является легковоспламеняющимся и взрывоопасным в воздухе, его необходимо использовать во взрывозащищенной стерилизационной камере в контролируемой среде.При правильном обращении ЭО является надежным и безопасным средством для стерилизации, но токсичные выбросы и остатки ЭО представляют опасность для персонала и пациентов. Кроме того, это занимает больше времени, чем стерилизация паром, обычно 16-18 часов. для полного цикла.

Стерилизация газом

ЭО зависит от четырех параметров: концентрации газа ЭО, температуры, влажности и времени воздействия. Каждый параметр можно варьировать. Следовательно, стерилизация ЭО — сложный многопараметрический процесс. Каждый параметр влияет на другие зависимые параметры.

прочие

• Сухое тепло : Сухое тепло в виде горячего воздуха используется в основном для стерилизации безводных масел, нефтепродуктов и сыпучих порошков, через которые пар и газообразный оксид этилена не могут проникнуть. Смерть микробной жизни от сухого тепла — это физическое окисление или медленный процесс горения при коагуляции белка в клетках. В отсутствие влаги требуются более высокие температуры, чем при наличии влаги, поскольку микроорганизмы уничтожаются в результате очень медленного процесса поглощения тепла за счет теплопроводности.
• Микроволны : Неионизирующее излучение микроволн создает гипертермические условия, которые нарушают жизненные процессы. Это нагревательное действие влияет на молекулы воды и нарушает работу клеточных мембран. При микроволновой стерилизации используется пар низкого давления с неионизирующим излучением для получения локализованного тепла, убивающего микроорганизмы. Температура ниже, чем у обычного пара, а цикл быстрее, всего 30 секунд. Металлические инструменты можно стерилизовать, если поместить их в стеклянный контейнер под частичным вакуумом.Небольшие настольные устройства могут быть полезны для мгновенной стерилизации одного или небольшого количества инструментов, когда технология разрабатывается для широкого использования.
• Газообразный формальдегид : Формальдегид убивает микроорганизмы путем коагуляции белка в клетках. Стерилизация формальдегидом, используемая в качестве фумиганта в газообразной форме, является сложной и менее эффективной, чем другие методы стерилизации. Его следует использовать только в том случае, если пар под давлением может повредить стерилизуемый предмет, а окись этилена и глутаральдегид недоступны.Его использование для стерилизации почти полностью прекращено в США, Канаде и Австралии. Этот метод появился в 1820 году и до сих пор используется в Европе и Азии.
• Плазма перекиси водорода : перекись водорода активируется для создания реактивной плазмы или пара. Плазма — это состояние вещества, отличного от твердого, жидкого или газообразного. Его можно получить под действием сильного электрического или магнитного поля, что-то вроде неонового света. Созданное облако плазмы состоит из ионов, электронов и нейтральных атомных частиц, которые производят видимое свечение.Свободные радикалы перекиси водорода в облаке взаимодействуют с клеточными мембранами, ферментами или нуклеиновыми кислотами, нарушая жизненные функции микроорганизмов. Плазменная и паровая фазы перекиси водорода обладают сильным спороцидным действием даже при низких концентрациях и температуре.
• Озон газ : Озон, форма кислорода, стерилизуется путем окисления, процесса, который разрушает органические и неорганические вещества. Он проникает через мембрану клеток, вызывая их взрыв. Озон — нестабильный газ, но его легко можно получить из кислорода.Генератор преобразует кислород из источника в больнице в озон. Через камеру непрерывно проходит озон с концентрацией от 6 до 12 процентов. Проникновение озона можно контролировать с помощью вакуума в камере или увеличивать за счет добавления влажности. По окончании времени воздействия кислород проходит через камеру для удаления озона. Время цикла может составлять до 60 минут в зависимости от размера камеры или загрузки.
• Химические растворы : Жидкие химические вещества, зарегистрированные Агентством по охране окружающей среды в качестве стерилизаторов, представляют собой альтернативный метод стерилизации термочувствительных предметов, если газовый или плазменный стерилизатор недоступен или период аэрации делает стерилизацию оксидом этилена непрактичной.Чтобы стерилизовать предметы, их необходимо погрузить в раствор на время, указанное производителем как спорицидное. Все химические растворы имеют преимущества и недостатки; у каждого стерилизующего средства есть свои преимущества и ограничения. Эти химические вещества: перуксусная кислота, глутаральдегид и формальдегид.
• Ионизирующее излучение : Некоторые имеющиеся в продаже продукты стерилизуются путем облучения. Это наиболее эффективный метод стерилизации, но он ограничен только для коммерческого использования.Ионизирующее излучение производит ионы, выбивая электроны из атомов. Эти электроны выбиваются с такой силой, что ударяются о соседний атом и либо присоединяются к нему, либо вытесняют электрон из второго атома. Полученная ионная энергия преобразуется в тепловую и химическую энергию. Эта энергия вызывает гибель микроорганизмов за счет разрушения молекулы ДНК, тем самым предотвращая деление клеток и распространение биологической жизни.

  Основными источниками ионизирующего излучения являются бета-частицы и гамма-лучи.Бета-частицы, свободные электроны, передаются высоковольтным электронным пучком от линейного ускорителя. Эти свободные электроны с высокой энергией проникают в вещество, прежде чем их остановят столкновения с другими атомами. Таким образом, их полезность при стерилизации объекта ограничена плотностью и толщиной объекта, а также энергией электронов. Они производят свой эффект, ионизируя атомы, на которые они попадают, производя вторичные электроны, которые, в свою очередь, оказывают смертельное воздействие на микроорганизмы.

  Кобальт 60 — это радиоактивный изотоп, способный распадаться с образованием гамма-лучей. Гамма-лучи — это электромагнитные волны. Они обладают способностью проникать на гораздо большее расстояние, чем бета-лучи, прежде чем теряют свою энергию при столкновении. Поскольку они движутся со скоростью света, они должны пройти через толщину в несколько футов, прежде чем совершить достаточное количество столкновений, чтобы потерять всю свою энергию. Кобальт 60 — наиболее часто используемый источник для стерилизации облучением.Изделие подвергается воздействию радиации от 10 до 20 часов, в зависимости от силы источника.

Обеспечение качества

Для обеспечения стерильности инструментов и принадлежностей при использовании необходим мониторинг процесса стерилизации.

Административный мониторинг

Рабочие практики должны контролироваться. Письменные правила и процедуры должны строго соблюдаться всем персоналом, ответственным за стерилизацию и дезинфекцию предметов, а также за обращение со стерильными принадлежностями.Если стерильность не может быть достигнута или сохранена, система вышла из строя. Политика и процедуры относятся к:

1. Обеззараживание, окончательная стерилизация и очистка всех предметов многократного использования; утилизация одноразовых предметов.
2. Упаковка и маркировка товаров.
3. Загрузка и разгрузка стерилизатора.
4. Управление стерилизатором.
5. Мониторинг и ведение записей каждого цикла.
6. Соблюдение правил техники безопасности и протокола профилактического обслуживания.
7. Хранение стерильных предметов.
8. Работа со стерильными предметами, готовыми к использованию.
9. Выполнение стерильного переноса в стерильное поле.

Механические индикаторы

Стерилизаторы

имеют датчики, термометры, таймеры, записывающие устройства и / или другие устройства, контролирующие их функции. Большинство стерилизаторов имеют автоматическое управление и запорные устройства. У некоторых есть системы сигнализации, которые активируются, если стерилизатор не работает должным образом. Записи ведутся и проверяются для каждого цикла.Тестовые пакеты (тест Боуи-Дика) запускаются не реже одного раза в день для контроля функций каждого стерилизатора в зависимости от ситуации. Они могут выявить технологические ошибки при упаковке или загрузке.

Химические индикаторы

Химический индикатор на упаковке свидетельствует о воздействии процесса стерилизации. Индикатор должен быть четко виден на внешней стороне каждой стерилизованной упаковки. Это помогает отличить стерилизованные предметы от нестерилизованных. Что еще более важно, это помогает контролировать физические условия внутри стерилизатора, чтобы предупредить персонал, если процесс был неадекватным.Индикатор может быть помещен внутрь упаковки в таком месте, где стерилизующему средству будет трудно проникнуть внутрь. Химический индикатор может обнаружить неисправность стерилизатора или ошибку человека при упаковке или загрузке стерилизатора. Если химическая реакция на индикаторе не дает ожидаемых результатов, использовать изделие нельзя. Доступны несколько типов химических индикаторов:

1. Лента, этикетки и бумажные полоски, напечатанные чернилами, меняющими цвет при воздействии одного или нескольких параметров процесса.
2. Стеклянная трубка с гранулами, плавящаяся при достижении определенной температуры в стерилизаторе.
3. Интегрирование или впитывание бумаги с чернилами или химической таблеткой на одном конце, которые плавятся и растекаются вдоль бумаги с течением времени при желаемых параметрах процесса. Цветовая полоса достигает области «принять», если параметры соблюдены.

Биологические индикаторы

Положительная уверенность в том, что условия стерилизации были достигнуты, может быть получена только с помощью биологического контрольного теста.Биологический индикатор определяет нестерилизующие условия в стерилизаторе. Биологический индикатор — это препарат из живых спор, устойчивых к стерилизующему агенту. Они могут поставляться в автономной системе, в сухих полосках со спорами или дисках в конвертах, или в запечатанных флаконах или ампулах со спорами, подлежащими стерилизации, и контролем, который не стерилизуется. Некоторые также включают химический индикатор. Стерилизованные единицы и контроль инкубируют в течение 24 часов для Bacillus stearothermophilis при температуре от 131 до 141 ° F (от 55 до 66 ° C) для тестирования пара под давлением в течение 48 часов для Bacillus subtilis при температуре от 95 до 98.6 ° F (35–37 ° C) для проверки окиси этилена.

Биологический индикатор должен соответствовать стандартам тестирования USP. Контрольный тест должен проводиться не реже одного раза в неделю в каждом стерилизаторе. Многие больницы проводят мониторинг ежедневно; другие проверяют каждый цикл. Необходимо контролировать очень большое количество имплантируемых устройств, и имплант не следует использовать, пока не станут известны отрицательные результаты теста. Биологические индикаторы также используются в качестве контрольного теста перед вводом новых продуктов или упаковочных материалов, после капитального ремонта стерилизатора или после сбоя стерилизации.Все результаты испытаний заносятся в постоянную запись для каждого стерилизатора.

.