Стерилизация дезинфекция псо: Отделение последипломного образования КОГПОБУ «Кировский медицинский колледж»

Содержание

8.3. Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинской техники и медицинского назначения

8.3. Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинской техники и медицинского назначения.

8.3.1. Изделия медицинской техники и медицинского назначения после применения подлежат дезинфекции независимо от дальнейшего их использования (изделия однократного и многократного применения). Дезинфекцию можно проводить физическими и химическими методами. Выбор метода зависит от особенностей изделия и его назначения.

8.3.2. Для дезинфекции изделий медицинской техники и медицинского назначения применяют дезинфицирующие средства, обладающие широким спектром антимикробного (вирулицидное, бактерицидное, фунгицидное — с активностью в отношении грибов рода Кандида) действия. Выбор режимов дезинфекции проводят по наиболее устойчивым микроорганизмам — между вирусами или грибами рода Кандида (в туберкулезных медицинских организациях — по микобактериям туберкулеза).

8.3.3. При проведении дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации растворами химических средств изделия медицинского назначения погружают в рабочий раствор средства (далее — раствор) с заполнением каналов и полостей. Разъемные изделия погружают в разобранном виде, инструменты с замковыми частями замачивают раскрытыми, сделав этими инструментами в растворе несколько рабочих движений.

8.3.4. Объем емкости для проведения обработки и объем раствора средства в ней должны быть достаточными для обеспечения полного погружения изделий медицинского назначения в раствор; толщина слоя раствора над изделиями должна быть не менее одного сантиметра.

8.3.5. Дезинфекцию способом протирания допускается применять для тех изделий медицинской техники и медицинского назначения, которые не соприкасаются непосредственно с пациентом или конструкционные особенности которых не позволяют применять способ погружения (наконечники, переходники от турбинного шланга к наконечникам, микромотор к механическим наконечникам, наконечник к скеллеру для снятия зубных отложений, световоды светоотверждающих ламп). Для этих целей не рекомендуется использовать альдегидсодержащие средства. Обработку наконечников после каждого пациента допускается проводить следующим образом: канал наконечника промывают водой, прочищая с помощью специальных приспособлений (мандрены и т.п.), и продувают воздухом; наконечник снимают и тщательно протирают его поверхность (однократно или двукратно — до удаления видимых загрязнений) тканевыми салфетками, смоченными питьевой водой, после чего обрабатывают одним из разрешенных к применению для этой цели дезинфицирующих средств (с учетом рекомендаций фирмы — производителя наконечника), а затем в паровом стерилизаторе.

8.3.6. После дезинфекции изделия медицинского назначения многократного применения должны быть отмыты от остатков дезинфицирующего средства в соответствии с рекомендациями, изложенными в инструкции по применению конкретного средства.

8.3.7. Дезинфекцию стоматологических оттисков, заготовок зубных протезов проводят после применения у пациентов перед направлением в зуботехническую лабораторию и после их получения из зуботехнической лаборатории непосредственно перед применением. Выбор дезинфицирующего средства обусловлен видом оттискного материала. После дезинфекции изделия промывают питьевой водой для удаления остатков дезинфицирующего средства.

8.3.8. Обеззараживание стоматологических отсасывающих систем проводят после окончания работы, для чего через систему прокачивают раствор дезинфицирующего средства, рекомендованного для этих целей; заполненную раствором систему оставляют на время, указанное в инструкции по применению средства. После окончания дезинфекционной выдержки раствор из системы сливают и промывают ее проточной водой.

8.3.9. Полировочные насадки, карборундовые камни, предметные стекла подлежат дезинфекции, очистке и стерилизации.

8.3.10. В физиотерапевтическом отделении дезинфекции подвергают съемные десневые и точечные электроды, тубусы к аппарату КУФ (коротковолновый ультрафиолетовый облучатель), световоды лазерной установки, стеклянные электроды к аппарату дарсонвализации. Для аппликаций во рту используют стерильный материал.

8.3.11. При наличии в стоматологической медицинской организации более трех стоматологических кресел предстерилизационную очистку и стерилизацию проводят в специально выделенных помещениях — стерилизационных (автоклавных) с выделением «чистых» и «грязных» зон и соблюдением поточности.

В остальных случаях предстерилизационную очистку и стерилизацию изделий медицинского назначения допускается проводить в кабинетах, для чего в них должно быть установлено необходимое оборудование.

Предстерилизационную очистку изделий осуществляют после дезинфекции или при совмещении с дезинфекцией в одном процессе (в зависимости от применяемого средства): ручным или механизированным (в соответствии с инструкцией по эксплуатации, прилагаемой к конкретному оборудованию) способом.

8.3.12. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой или амидопириновой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств (только в случаях применения средств, рабочие растворы которых имеют pH более 8,5) в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретных средств.

8.3.13. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят ежедневно. Контролю подлежат: в стерилизационной — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену; при децентрализованной обработке — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее трех единиц. Результаты контроля регистрируют в журнале.

8.3.14. Стерилизации подвергают все инструменты и изделия, контактирующие с раневой поверхностью, кровью или инъекционными препаратами, а также отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения:

стоматологические инструменты: пинцеты, зонды, шпатели, экскаваторы, штопферы, гладилки, коронкосниматели, скеллеры, стоматологические зеркала, боры (в том числе с алмазным покрытием) для всех видов наконечников, эндодонтические инструменты, штифты, стоматологические диски, фрезы, разделительные металлические пластинки, матрицедержатели, ложки для снятия оттисков, инструменты для снятия зубных отложений, пародонтальные хирургические инструменты (кюретки, крючки разных модификаций и др. ), инструменты для пломбирования каналов зуба (плагеры, спредеры), карпульные шприцы, различные виды щипцов и кусачек для ортодонтического кабинета, пылесосы;

ультразвуковые наконечники и насадки к ним, наконечники, съемные гильзы микромотора к механическим наконечникам, канюли к аппарату для снятия зубного налета;

хирургические инструменты: стоматологические щипцы, кюретажные ложки, элеваторы, долота, наборы инструментов для имплантологии, скальпели, корнцанги, ножницы, зажимы, гладилки хирургические, шовные иглы;

лотки для стерильных изделий медицинского назначения, инструменты для работы со стерильным материалом, в том числе пинцеты и емкости для их хранения.

8.3.15. Стерилизацию изделий медицинского назначения, применяемых в стоматологии, осуществляют физическими (паровой, воздушный, инфракрасный, применение среды нагретых стеклянных шариков) или химическими (применение растворов химических средств, газовый, плазменный) методами согласно действующим документам, используя для этого соответствующие стерилизующие агенты и типы оборудования, разрешенные к применению в установленном порядке. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий. Стерилизацию осуществляют по режимам, указанным в инструкции по применению конкретного средства и руководстве по эксплуатации стерилизатора конкретной модели.

При стерилизации воздушным методом запрещается использование оборудования, относящегося к лабораторному (шкафы типа ШСС).

8.3.16. Наконечники, в том числе ультразвуковые, и насадки к ним, эндодонтические инструменты с пластмассовыми хвостовиками стерилизуют только паровым методом.

8.3.17. В гласперленовых стерилизаторах допускается стерилизовать боры различного вида и другие мелкие инструменты при полном погружении их в среду нагретых стеклянных шариков. Не рекомендуется использовать данный метод для стерилизации более крупных стоматологических инструментов с целью стерилизации их рабочих частей.

8.3.18. Инфракрасным методом стерилизуют изделия из металлов: стоматологические щипцы, стоматологические микрохирургические инструменты, боры твердосплавные, головки и диски алмазные, дрильборы, каналонаполнители и другие.

8.3.19. Химический метод стерилизации с применением растворов химических средств допускается применять для стерилизации только тех изделий, в конструкции которых использованы термолабильные материалы, не позволяющие использовать другие методы стерилизации.

Для химической стерилизации применяют растворы альдегид- или кислородсодержащих средств или некоторых хлорсодержащих компонентов, обладающие спороцидным действием.

Во избежание разбавления рабочих растворов, особенно используемых многократно, погружаемые в них изделия должны быть сухими.

При стерилизации растворами химических средств все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики; используют стерильные емкости для стерилизации и отмывания изделий стерильной питьевой водой от остатков средства. Изделия промывают согласно рекомендациям, изложенным в инструкции по применению конкретного средства.

8.3.20. При паровом, воздушном, газовом и плазменном методах изделия стерилизуют в упакованном виде, используя стерилизационные упаковочные одноразовые материалы или многоразовые контейнеры (стерилизационные коробки с фильтрами), разрешенные применительно к конкретному методу стерилизации в установленном порядке.

Хранение изделий, простерилизованных в упакованном виде, осуществляют в шкафах, рабочих столах. Сроки хранения указываются на упаковке и определяются видом упаковочного материала и инструкцией по его применению.

8.3.21. Стерилизация изделий в неупакованном виде допускается только при децентрализованной системе обработки в следующих случаях:

при использовании растворов химических средств для стерилизации изделий, в конструкции которых использованы термолабильные материалы;

при стерилизации стоматологических металлических инструментов термическими методами (гласперленовый, инфракрасный, воздушный, паровой) в портативных стерилизаторах.

Все изделия, простерилизованные в неупакованном виде, целесообразно сразу использовать по назначению. Запрещается перенос их из кабинета в кабинет. При необходимости инструменты, простерилизованные в неупакованном виде одним из термических методов, после окончания стерилизации допускается хранить в разрешенных к применению в установленном порядке бактерицидных (оснащенных ультрафиолетовыми лампами) камерах в течение срока, указанного в руководстве по эксплуатации оборудования, а в случае отсутствия таких камер — на стерильном столе не более 6 ч. Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках, допускается использовать в течение не более чем 6 ч после их вскрытия.

8.3.22. Бактерицидные камеры, оснащенные ультрафиолетовыми лампами, допускается применять только с целью хранения инструментов для снижения риска их вторичной контаминации микроорганизмами в соответствии с инструкцией по эксплуатации. Запрещается применять такое оборудование с целью дезинфекции или стерилизации инструментов.

8.3.23. При стерилизации изделий в неупакованном виде воздушным методом не допускается хранение простерилизованных изделий в воздушном стерилизаторе и их использование на следующий день после стерилизации.

8.3.24. При стерилизации химическим методом с применением растворов химических средств отмытые стерильной водой простерилизованные изделия используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную стерилизационную коробку с фильтром, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

8.3.25. Все манипуляции по накрытию стерильного стола проводят в стерильном халате, маске и перчатках с использованием стерильных простыней. Обязательно делают отметку о дате и времени накрытия стерильного стола. Стерильный стол накрывают на 6 ч. Не использованные в течение этого срока материалы и инструменты со стерильного стола направляют на повторную стерилизацию.

8.3.26. Не допускается использование простерилизованных изделий медицинского назначения с истекшим сроком хранения после стерилизации.

8.3.27. Учет стерилизации изделий медицинского назначения ведут в журнале.

8.3.28. Контроль стерилизации осуществляется в соответствии с требованиями глав I и II настоящих санитарных правил.

ДЕЗИНФЕКЦИЯ ПСО И СТЕРИЛИЗАЦИЯ МАНИКЮРНОГО ИНСТРУМЕНТА НА ПРАКТИКЕ

Здравствуйте, друзья! Сегодня поговорим о дезинфекции и стерилизации инструментов.

Приглашенный гость — Инна, ведущий специалист компании Чистовье.

Добрый день, уважаемые коллеги! Меня зовут Инна, я специалист компании Чистовье. Сегодня расскажу как производится обработка инструментов в маникюрных и педикюрных кабинетах.

Обработка проводится в 3 этапа.

1. Дезинфекция — по противовирусному режиму
2. Предстерилизационная очистка
3. Стерилизация

Одеваем перчатки. Разводим дезсредство. Лучше всего, если ваше средство обладает дезинфицирующими и моющими свойствами.

Чем меньше концентрация воды в растворе, тем выше шансы, что ваши инструменты могут начать ржаветь из-за длительного контакта с водой (не из-за дезсредства!).

Баночки для стерилизации должны быть специальными. На емкости необходимо заполнить всю информацию (см. фото). Затем ответственное лицо заполянет журнал.

При разведении рабочего раствора помните, что вода должна быть питьевой и комнатой температуры (не ниже 18*С).

Как проконтролировать правильность разведения рабочего раствора? Нам помогут индикаторные полоски и шкала. Полоску опускаем в раствор и ждем 15сек. Цвет получился темно-зеленый, что соответствует шкале. Правильно развели раствор.

Заливаем рабочий раствор в ванночку. Кладем инструмент. Ждем необходимое время.

Очищаем от остатков крови, кожи, косметических средств. Лучше это делать щеточкой. Выкладываем инструмент в чистую емкость и промываем проточной водой в течении трех минут. Просушиваем, положив на салфетку.

Проводим азопирамовую пробу, чтобы убедиться на сколько качественно мы провели предстерилизационную очистку. В этом нам поможет Азопирам-комплект, который актуален для предприятий индустрии красоты, потому что он не требует разведения спиртом, который запрещен предприятиям бытового значения. В нем находится инструкция и два пузырька.

Только Азопирама для проведения пробы не достаточно. Нам понадобится 3%-ая перекись водорода.

На салфетку, в одинаковых пропорциях капаем перекись водорода и раствор азопирама и протираем режущие поверхности.

Если у нас на салфетке, после проведения азопирамовой пробы, через 1 минуту появится пятно бурого цвета — значит предстерилизационную очистку провели не качественно.

Все результаты заносятся в журнал.

Складываем в лоток все инструменты и в стерилизатор. Только в течении часа они будут пригодны для работы.

Чтобы продлить «жизнь» простерилизованного инструмента удобно использовать крафт пакеты.

Благодаря индикаторам мы можем проверить качество проведенной процедуры. В зависимости от производителя они как вкладываются внутрь пакеты, так и приклеиваются снаружи. Бывают и универсальные.

Помните, что каждый клиент верит вам и надеется, что инструменты, которые вы используете, не навредят его здоровью.

Вам пригодится:

Компания Чистовье https://chistovie.ru/ инстаграм @chistovie

Посмотрите видео по Санитарной безопасности http://vip.grandnail.com/san-bezopasnost

Читайте также:

» УБОРКА КАБИНЕТА ПО САНПИН

» ОБОРУДОВАНИЕ КАБИНЕТА ПЕДИКЮРА

» КАК ЧИТАТЬ СОСТАВЫ КОСМЕТИКИ ДЛЯ МАНИКЮРА И ПЕДИКЮРА

» ОБРАБОТКА МАНИКЮРНОГО ИНСТРУМЕНТА ПО САНПИН

Оцените статью и спрашивайте, если остались вопросы

Дезинфекция и стерилизация маникюрных инструментов в ногтевом сервисе

Алгоритм поэтапного выполнения дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации рабочих инструментов для мастеров ногтевого сервиса.

Для дезинфекции профессиональных инструментов в ногтевом сервисе действует противовирусный режим, так как манипуляции во время процедуры могут быть связаны с нарушением кожного покрова.

Обработке подлежат щипцы, пушеры, кусачки, ножницы и фрезы.

ЭТАП ПЕРВЫЙ – ДЕЗИНФЕКЦИЯ ИНСТРУМЕНТА

Дезинфицировать инструменты следует в 2% рабочем растворе «Эстилодез». 1 литр готовится с учетом следующих пропорций: 20 мл концентрата «Эстилодез» на 980 мл воды комнатной температуры.

При контакте с дезинфицирующими растворами необходимо использовать резиновые перчатки.

Дезинфекцию осуществляем путем полного погружения инструментов в рабочий раствор на 5 минут.

ЭТАП ВТОРОЙ – ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА, ИЛИ ПСО

После дезинфекции в течение 30 секунд осуществляем ПСО каждого инструмента с помощью щетки в том же растворе, в котором осуществляли дезинфекцию. Это ручной способ очистки.
Если у вас есть УЗ ванночка, вы можете воспользоваться механизированным способом ПСО и совместить две операции: дезинфекцию и ПСО. Погрузите инструмент в рабочий раствор на 5 минут и включите УЗ ванночку.

Затем в течение 3 минут ополаскиваем инструмент под проточной водой.

После проведенной предстерилизационной очистки обязательно нужно провести пробу на наличие скрытой крови. В этом поможет азопирамовая проба. Она показывает, насколько хорошо был помыт и почищен инструмент.

Если проба положительная – необходимо еще раз провести дезинфекцию инструмента, затем ПСО и добиться того, чтобы проба была отрицательной.
После этого обязательно заполняем журнал контроля качества ПСО.

Сушим инструмент в открытом виде на чистой одноразовой салфетке.

ЭТАП ТРЕТИЙ – СТЕРИЛИЗАЦИЯ

Упаковываем инструмент в специальные пакеты для стерилизации. На них указываем содержимое, дату, время стерилизации и срок годности простерилизованного инструмента.

Далее следует стерилизация инструмента.

Мы должны заложить стерилизационную упаковку в автоклав по режиму 134 градусов на 5 минут (или другую программу в случае щадящей стерилизации) или в сухожаровый шкаф по режиму 180 градусов на 60 минут.
Для контроля работы стерилизаторов пользуют специальные внешние индикаторы, их размещают внутри камеры на лотке в пяти ключевых точках – по углам и в центре.

По завершению стерилизации стерилизационную упаковку со стерильными инструментами нужно убрать в ящик рабочего стола или в УФ шкаф. УФ шкаф позволяет сохранить стерильность инструмента.

Далее заполняем журнал контроля качества работы стерилизатора.

Помните, что согласно СанПиН, вы обязаны иметь три комплекта инструментов для того, чтобы успевать дезинфицировать инструменты.

ПРАВИЛА УТИЛИЗИЗАЦИИ ЛЕЗВИЙ

В современной практике ведущие специалисты ногтевого сервиса не рекомендуют использование одноразовых лезвий при педикюре, однако многие мастера еще работают в этой технике.

Одноразовые бритвенные лезвия погружают для дезинфекции и дальнейшей утилизации в специальный контейнер, который наполнен 1% рабочим раствором «Эстилодез». Замену контейнеров производим ежедневно, по окончанию рабочей смены.

Посмотрите видео, где мы подробно рассказываем и показываем все этапы обработки инструментов в кабинете ногтевого сервиса.

<center><div class="advv"><ins class="adsbygoogle" style="display:inline-block;width:336px;height:280px" data-ad-client="ca-pub-1812626643144578" data-ad-slot="9935184599"></ins> <script>(adsbygoogle=window.adsbygoogle||[]).push({});</script></div></center>

Предыдущие выпуски рубрики ДЕЗрежим:

Выпуск 1. Как подготовить раствор из «Эстилодеза» для текущей уборки

Выпуск 2. Как подготовить раствор из «Эстилодеза» для генеральной уборки

Выпуск 3. Дезинфекция парикмахерского зала

Дезинфекция и стерилизация инструментов косметолога

Продолжаем рассказывать о дезинфекции, ПСО и стерилизации инструментов в индустрии красоты. На этот раз речь пойдет о косметологии.

Для дезинфекции профессиональных инструментов в косметологии действует ПРОТИВОВИРУСНЫЙ РЕЖИМ, так как манипуляции во время процедуры могут быть связаны с нарушением кожного покрова.

МЕТАЛЛИЧЕСКИЕ ИНСТРУМЕНТЫ

Этап первый – дезинфекция инструмента

Дезинфицировать инструменты следует в 2% рабочем растворе концентрата «Эстилодез», 1 литр которого готовится с учетом следующих пропорций: 20 мл концентрата на 980 мл воды комнатной температуры. В общей сложности должен получиться 1 литр рабочего раствора.

Эту операцию проводят путем полного погружения в рабочий раствор на 5 минут.

Этап второй – предстерилизационная очистка, или ПСО

После дезинфекции в течение 30 секунд осуществляют ПСО каждого инструмента с помощью щетки в том же растворе, в котором проводили дезинфекцию. Это ручной способ очистки.

При наличии в кабинете УЗ ванночки можно воспользоваться механизированным способом ПСО.

Затем в течение 1-2 минут ополаскивают инструмент под проточной водой.

После предстерилизационной очистки необходимо обязательно провести пробу на наличие скрытой крови. В этом поможет азопирамовая проба. Данная манипуляция показывает, насколько хорошо был промыт и почищен инструмент.

Если проба положительная – необходимо еще раз провести дезинфекцию инструмента, затем ПСО и добиться того, чтобы проба была отрицательной.

После этого обязательно следует заполнить журнал контроля качества ПСО.

Сушат инструмент в открытом виде на чистой одноразовой салфетке до полного высыхания.

Этап третий – стерилизация

Инструмент следует упаковать в специальные пакеты для стерилизации, на которых указывают содержимое, дату, время стерилизации и срок годности простерилизованного инструмента, подпись лица, проводившего ПСО.

Далее следует стерилизация инструмента.

Стерилизационную упаковку помещают в автоклав по режиму 134 градуса Цельсия на 5 минут (или другую программу в случае щадящей стерилизации) или в сухожаровый шкаф по режиму 180 градусов Цельсия на 60 минут.

Для контроля работы стерилизаторов используют специальные внешние индикаторы, их размещают внутри камеры на лотке в пяти ключевых точках (по углам и в центре).

После стерилизационную упаковку с инструментами хранят в ящике рабочего стола либо в УФ шкафу. Этот прибор позволяет сохранить стерильность инструмента.

Далее следует заполнить журнал контроля качества работы стерилизатора.

Согласно СанПиН, в кабинете косметолога должно быть не менее трех комплектов инструментов.

Кроме инструментов, обязательной стерилизации подлежат лоточки.

КОСМЕТОЛОГИЧЕСКИЕ КИСТИ

Кисти необходимо промыть под проточной водой, чтобы смыть остатки косметологических средств. После этого инструмент погружают в 2% рабочий раствор концентрата «Эстилодез» на 5 минут. По завершению манипуляции инструменты ополаскивают под проточной водой в течение 1-2 минут и сушат в открытом виде на чистой одноразовой салфетке до полного высыхания. Хранят кисти в пакетах для продезинфицированного инструмента в ящике рабочего стола или в УФ шкафу.

ИГЛЫ ДЛЯ ИНЪЕКЦИЙ

После проведения процедуры иглы необходимо погрузить для дезинфекции и дальнейшей утилизации в специальный контейнер, наполненный 1% рабочим раствором «Эстилодез». Замену контейнеров производят 1 раз в 72 часа (3 дня).

Контейнеры с содержимым необходимо утилизировать в специальные желтые пакеты для мусора класса Б в бак для сбора медицинских отходов в помещении временного хранения отходов.

Все манипуляции проводятся в перчатках.

Всю линию дезинфекции, а также одноразовые расходные материалы и косметологические средства вы можете купить на нашем сайте в каталоге.

Дезинфекция и ПСО инструмента — Дезинфицирующие средства и профессиональные моющие средства

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Для ежедневной очистки и ухода за стоматологическими отсасывающими системами и плевательницами.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Для дополнительной еженедельной специальной очистки отсасывающих систем, плевательниц и отводящих систем.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования. Обладает моющими свойствами. Концентрация от 0,1%.
Многократно в течение 28 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования. Обладает моющими свойствами.
Многократно в течение 7 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Дезинфицирующее средство с широким спектром действия. Обладает отличными моющими свойствами.
Концентрация от 0,025%.
Многократно в течение 31 суток. Коррозионно-пассивны.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция с моющим эффектом инструментов, поверхностей, оборудования. Концентрация рабочего раствора от 0,5% Многократно в течение 28 суток.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Готовый раствор на основе перекиси водорода для стерилизации медицинских инструментов.
Время экспозиции 15 мин.
Многократно в течение 31 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Хлорсодерщащие таблетки массой 3.4 гр.
Дезинфекция оборудования, инвентаря, тары и поверхностей

Продукт недоступен.

400 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования. Отличные моющие свойства. Возможность добавлять дополнительные моющие средства. Концентрация от 0,2%.
Многократно в течение 31 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Комбинированный препарат без альдегида для дезинфекции и очистки, а также дезинфекции, совмещенной с предстерилизационной очисткой инструментов всех видов, кроме гибких эндоскопов. Без альдегида.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Дезинфицирующее средство на основе диальдегида янтарной кислоты для дезинфекции, дезинфекции высокого уровня и стерилизации жестких и гибких эндоскопов, и ультразвуковых зондов.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Готовый раствор. Дезинфекция совмещенная с ПСО стоматологических инструментов, в том числе вращающихся.

В наличии

Доступна оптовая скидка

400 руб

Добавить

Совмещает дезинфекцию и предстерилизационную очистку (30 дней)

В наличии

Доступна оптовая скидка

660 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток
Средство обладает моющим и дезодорирующим эффектом, полностью нейтрализует неприятные запахи(в т.ч. запах мочи, гнилостные запахи, запах плесени, посторонние запахи в помещениях с лежачими больным)

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Миродез универ 1 л.

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Совмещает дезинфекцию и предстерилизационную очистку (41 день)

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Готовый к применению раствор для дезинфекции и предстерилизационной очистки боров и вращающихся инструментов в стоматологии с ультразвуком и без.

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

3308 руб

Добавить

Мультиферментное моющее средство для автоматизированных систем и ручной очистки.

Продукт недоступен.

5050 руб

Добавить

Сайдекс Опа 3,8 л.

Дезинфекция изделий медицинского назначения из различных материалов (включая жесткие и гибкие эндоскопы, инструменты к ним, металлические инструменты)

Продукт недоступен.

5050 руб

Добавить

Экобриз 1 л.

Концентрат. Дезинфекция инструментов, поверхностей, оборудования.
Многократно в течение 14 суток

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Энзимодез1 л.

Концентрат. Дезинфекция инструментов, Многократно в течение 3 дней

Продукт недоступен.

Доступна оптовая скидка

360 руб

Добавить

Инструкция «Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинского назначения»

1. Общие положения

1.1. Дезинфекция, предстерилизационная очистка и стерилизация изделий медицинского назначения (далее изделия) производятся с целью профилактики внутрибольничных инфекций у пациентов и персонала лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ).

1.2. Дезинфекцию изделий (на поверхностях, а также в их каналах и полостях) проводят с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов: вирусов (в том числе возбудителей парентеральных вирусных гепатитов, ВИЧ-инфекции), вегетативных бактерий (включая микобактерии туберкулеза), грибов (включая грибы рода Кандида).

Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у пациентов. После дезинфекции изделия промывают водопроводной водой, высушивают и применяют по назначению или (при наличии показаний) подвергают предстерилизационной очистке и стерилизации.

1.3. Стерилизацию изделий проводят с целью уничтожения микроорганизмов всех видов, в том числе споровых форм. Стерилизации подлежат все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью в организме пациента или вводимой в него, инъекционными препаратами, а также изделия, которые в процессе эксплуатации контактируют со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

1.4. Изделия многократного применения, подлежащие стерилизации, перед стерилизацией подвергаются предстерилизационной очистке (ПСО). Предстерилизационную очистку проводят с целью удаления с изделий белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов.

1.5. В качестве средств дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации в Республике Беларусь используются только разрешенные в установленном порядке физические и химические средства.

1.6. При выборе средств следует учитывать рекомендации изготовителей изделий, касающиеся воздействия конкретных средств на материалы этих изделий (из числа разрешенных в республике для данной цели).

При проведении дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации допускается использование оборудования (установки, моечные машины, стерилизаторы и др.), разрешенного в установленном порядке к промышленному выпуску и применению (в случае импортного оборудования — разрешенного к применению) в Республике Беларусь.

1.7. Емкости с растворами дезинфицирующих, моющих и стерилизующих средств должны быть изготовлены из коррозионностойких материалов, снабжены перфорированными поддонами и плотно закрывающимися крышками, иметь четкие надписи с указанием названия средства, его концентрации, даты приготовления (для готовых к применению средств, разрешенных для многократного использования, указывают дату начала использования средства).

1.8. Рекомендации по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации сложных по конструкции изделии (эндоскопы, медицинские инструменты к гибким эндоскопам и др.), а также дополнительные сведения, касающиеся различных аспектов указанных видов обработки изделий, более подробно изложены в официальных инструктивно-методических документах.

Дезинфекция и стерилизация ИМН

Дезинфекция и стерилизация ИМН

Вопрос №1

Стерилизация — это метод уничтожения

A) всех форм микроорганизмов

B) только споровых форм микроорганизмов

C) только непатогенных микроорганизмов

D) только патогенных микроорганизмов

Вопрос №2

Дезинфекцию, совмещенную с ПСО изделий медицинского назначения, можно проводить

A) химическим методом

B) механическим методом

C) биологическим методом

D) физическим методом

Вопрос №3

Изделия из резины стерилизуют в автоклаве в режиме:

A) 2,5 атм — 132⁰С — 20 мин

B) 2 атм — 132⁰С — 20 мин

C) 1,1 атм — 120⁰С — 45 мин

D) 0,5 атм — 180⁰С — 60 мин

Вопрос №4

На стерильном столе стерильность изделий сохраняется:

A) 6 часов

B) 12 часов

C) 24 часов

D) 36 часов

E) 72 часа

Вопрос №5

Дезинфекция — это метод уничтожения:

A) всех форм микроорганизмов

B) только патогенных микроорганизмов

C) только споровых форм микроорганизмов

D) патогенных и условно-патогенных микроорганизмов

Вопрос №6

Для стерилизации ИМН химическим методом применяют препараты из групп:

A) ПАВ

B) спирты

C) альдегиды

Вопрос №7

Для контроля качества ПСО берут:

A) 1% изделий, но не менее 3 штук

B) 5 изделий

C) все изделия

D) все ответы верны

Вопрос №8

Режим стерилизации изделий из стекла в сухожаровом шкафу:

A) 160⁰С — 60 мин

B) 160⁰С — 120 мин

C) 180⁰С — 60 мин

D) 180⁰С — 30 мин

E) 180⁰С — 120 мин

Вопрос №9

Стерилизации подлежат медицинские изделия, соприкасающиеся:

A) с кровью

B) с раневой поверхностью

C) с продуктами питания

D) с воздухом

E) все ответы верны

Вопрос №10

Режимы стерилизации воздушным способом:

A) 120⁰С — 30 мин

B) 180⁰С — 60 мин

C) 180⁰С — 45 мин

D) 200⁰С — 30 мин

E) все ответы верны

F) нет правильного ответа

Вопрос №11

Контроль на наличие остатков жира, масленых растворов:

A) амидопириновая проба

B) судановая проба

C) фенолфталеиновая проба

D) все ответы верны

E) нет правильного ответа

Вопрос №12

Качественная реакция на остаточное количество моющего средства:

A) все ответы верны

B) фенолфталеиновая проба

C) судановая проба

D) амидопириновая проба

Вопрос №13

Дезинфекции подлежат медицинские изделия, соприкасающиеся:

A) с воздухом

B) с кожей и слизистыми оболочками

C) с продуктами питания

D) с выделениями пациента

E) все ответы верны

Вопрос №14

Глассперленовый способ предназначен для стерилизации изделий

A) из металла

B) из резины

C) из хлопка

D) из стекла

E) нет правильного ответа

Вопрос №15

Преимущества химического способа стерилизации:

A) щадящий температурный режим

B) возможность стерилизовать оптику, полимерных материалов

C) все ответы верны

D) высокий температурный режим

Вопрос №16

Источник информации для работы с дезинфицирующим средством:

A) приказ Министерства Здравоохранения

B) приказ МЗСР РФ

C) инструкция по применению дезинфицирующего средства

D) методические указания по применению дезинфицирующего средства

E) все ответы верны

Вопрос №17

При химическом контроле качества стерилизации в автоклаве используют:

A) индикатор ИС 180 — 60

B) индикатор ИС 160 — 120

C) индикатор ИС 132 — 20

D) индикатор ИС 120 — 45

E) индикатор ИС 200 — 60

F) нет правильного ответа

Вопрос №18

На качество паровой стерилизации влияют факторы:

A) все ответы верны

B) правильность загрузки камеры для стерилизации

C) правильная загрузка бикса

D) исправная дезкамера

E) исправность автоклава

F) исправный сухожаровой шкаф

Вопрос №19

Выбрать режимы дезинфекции для физического метода:

A) в сухожаровом шкафу 160⁰С — 150 мин

B) в автоклаве 0,5 атм. — 110⁰С — 20 мин

C) в сухожаровом шкафу 120⁰С — 45 мин

D) в автоклаве 0,5 атм. — 120⁰С — 30 мин

E) в сухожаровом шкафу 180⁰С — 120 мин

F) кипячение в дистиллированной воде 30 мин

G) нет верного ответа

H) все ответы верны

Вопрос №20

Индикаторы, используемые для контроля качества химической стерилизации в сухожаровом шкафу:

A) все ответы верны

B) ИС 180 — 60

C) ИС 160 — 150

D) ИС 132 -20

E) ИС 120 — 45

F) нет верного ответа

Вопрос №21

В сухожаровом шкафу стерилизация проводится:

A) Все ответы верны

B) в крафт-пакетах

C) в закрытых металлических футлярах

D) открытым способом

E) на решетке открытым способом

Вопрос №22

Последовательность этапов обработки ИМН:

A) ПСО — дезинфекция — стерилизация

B) ПСО — стерилизация — дезинфекция

C) дезинфекция — ПСО — стерилизация

D) стерилизация — ПСО — дезинфекция

E) нет верного ответа

Вопрос №23

Химические индикаторы серии «СТЕРИКОНТ» используют для контроля качества:

A) все ответы верны

B) стерилизация внутри автоклава

C) стерилизация внутри упаковок

D) дезинфекции

Вопрос №24

В автоклаве стерилизация полимерных материалов и резины проводять при:

A) нет верного ответа

B) 0,5 атм. — 100⁰С — 180 мин

C) 0,5 атм. — 130⁰С — 45 мин

D) 1,1 атм. — 120⁰С — 45 мин

E) 2 атм. — 132⁰С — 20 мин

F) 2,5 атм. — 145⁰С — 5 мин

Вопрос №25

Для стерилизации, совмещенной с ПСО изделий медицинского назначения,

A) галоиды

B) спирты

C) поверхностно-активные вещества

D) все ответы верны

E) нет верного ответа

Вопрос №26

Химические индикаторы серии «СТЕРИТЕСТ» закладывают:

A) на полки сухожарового шкафа

B) внутрь стерилизуемой упаковки

C) в автоклаве в контрольные точки

D) все ответы верны

Вопрос №27

После вскрытия бикса срок сохранности стерильности:

A) 6 часов при соблюдении асептических условий работы

B) 72 часа при соблюдении асептических условий работы

C) 10 суток при соблюдении асептических условий работы

D) нет верного ответа

E) все ответы верны

Вопрос №28

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют нанесением 3 капель раствора

A) на металлический предмет

B) на каплю физраствора

C) на стерильный инструмент

D) на каплю крови

E) все ответы верны

Вопрос №29

В закрытом биксе с фильтром ватные шарики стерильны

A) 3 суток

B) 7 суток

C) 10 суток

D) 14 суток

E) 20 суток

F) все ответы верны

G) нет верного ответа

Вопрос №30

Дезиконты применяются для контроля качества

A) дезинфекции

B) ПСО

C) стерилизации

D) дезинфицирующего средства

E) все ответы верны

Вопрос №31

Качественная реакция на скрытую кровь

A) азопирамовая проба

B) фенолфталеиновая проба

C) судановая проба

D) йодокрахмальная проба

Вопрос №32

Стериконты применяются для контроля качества

A) стерилизации

B) ПСО

C) дезинфекции

D) все ответы верны

Вопрос №33

В сухожаровом шкафу время начала стерилизации отсчитывают

A) с момента включения сухожарового шкафа

B) с момента подъема температуры до 100⁰С

C) с момента подъема температуры до 150⁰С

D) с момента подъема температуры до 180⁰С

E) все ответы верны

F) нет верного ответа

Правильные ответы, решения к тесту:

Вопрос №1

Правильный ответ — A

Вопрос №2

Правильный ответ — A, D

Вопрос №3

Правильный ответ — C

Вопрос №4

Правильный ответ — A

Вопрос №5

Правильный ответ — D

Вопрос №6

Правильный ответ — C

Вопрос №7

Правильный ответ — A

Вопрос №8

Правильный ответ — C

Вопрос №9

Правильный ответ — A, B

Вопрос №10

Правильный ответ — B, D

Вопрос №11

Правильный ответ — B

Вопрос №12

Правильный ответ — B

Вопрос №13

Правильный ответ — B, D

Вопрос №14

Правильный ответ — A

Вопрос №15

Правильный ответ — A, B

Вопрос №16

Правильный ответ — D

Вопрос №17

Правильный ответ — C, D

Вопрос №18

Правильный ответ — B, C, E

Вопрос №19

Правильный ответ — B, C, F

Вопрос №20

Правильный ответ — B, C

Вопрос №21

Правильный ответ — B, E

Вопрос №22

Правильный ответ — C

Вопрос №23

Правильный ответ — B

Вопрос №24

Правильный ответ — D

Вопрос №25

Правильный ответ — C

Вопрос №26

Правильный ответ — B

Вопрос №27

Правильный ответ — A

Вопрос №28

Правильный ответ — D

Вопрос №29

Правильный ответ — E

Вопрос №30

Правильный ответ — A

Вопрос №31

Правильный ответ — A

Вопрос №32

Правильный ответ — A

Вопрос №33

Правильный ответ — D

Если он не чистый, он не стерильный: обработка загрязненных инструментов

PSO Compass Points

Пациент находился в операционной, но не спал. Во время настройки мастер заметил мусор на одном из инструментов — вероятно, засохшую кровь или ткань из предыдущего случая. Инструмент не был должным образом очищен перед стерилизацией. (Когда это происходит, все стерильное поле считается зараженным.) Все инструменты и принадлежности должны быть удалены, а инструменты должны быть повторно стерилизованы.Хирург решил отменить процедуру и отправить пациента домой, чтобы его вернули в ближайшем будущем. Менеджер стерильной обработки был уведомлен и планировал принять меры.

Ситуация

Неспособность обработать зараженные инструменты должным образом — то есть не очистить, не дезинфицировать или стерилизовать их — перед использованием их на последующих пациентах может привести к распространению смертельных патогенов.

Справочная информация

PSO Института ECRI обнаружил в своей базе данных 234 события, относящихся к грязным хирургическим инструментам.Пять основных факторов загрязнения:

Неадекватная очистка перед стерилизацией (34%)
Проблемы с паровой стерилизацией (также известной как мгновенная стерилизация) сразу после использования (12%)
Отверстия в обертке (11%)
Инструменты, не стерилизованные вовремя для случая (10%)
Проблема с инструментами у поставщика (9%)

Из событий, в которых неадекватная очистка перед стерилизацией была определена как фактор, инструменты были идентифицированы следующим образом (проценты не добавляются до 100% из-за округления):

Сложный инструмент (39%)
Канюлированный или просветный инструмент (35%)
Простой несложный инструмент (9%)
Другой или неидентифицированный (16%)

Оценка

Сложные и канюлированные инструменты или инструменты с просветом представляют все большую проблему для процесса очистки хирургических инструментов.Отчеты показывают, что персонал, занимающийся обработкой стерильных продуктов, часто сталкивается с проблемами, связанными с производительностью, неадекватным инвентарем инструментов и отсутствием доступа к конкретным инструкциям по очистке хирургических инструментов.

ECRI PSO выпускает 10 основных принципов эффективной очистки инструментов

Ежедневно отделы стерильной обработки медицинских учреждений управляют подготовкой бесчисленных хирургических инструментов к предстоящим процедурам. Это было продемонстрировано в февральском выпуске журнала PSO Monthly Brief за февраль 2013 г., в котором рассматривались устройства, подвергшиеся неадекватной переработке. Если устройства не были должным образом очищены перед дезинфекцией и стерилизацией, ткани, кости или другие органические материалы могут остаться внутри или на инструменте.

Последствия неадекватной обработки могут быть относительно незначительными, например, задержка операции на время поиска новых инструментов, если контаминация выявлена до начала процедуры, или более значительными, например, возможная инфекция.
Медицинские работники часто ошибочно полагают, что стерилизация сама по себе позволяет подготовить оборудование к повторному использованию; Это просто неправда. Фактически, повторная обработка — это многоступенчатая практика, которая включает в себя тщательную очистку, а также дезинфекцию или стерилизацию.Частично увеличение сложности переработки может быть связано с развитием технологий. «Современные инструменты имеют сложные подвижные части, которые трудно разобрать и тщательно очистить», — говорит Гейл Хорват, MSN, BS, RN, CNOR, CRCST, аналитик по безопасности пациентов в Институте ECRI PSO.

Руководство учреждения должно быть осведомлено о процессах и проблемах в отделении обработки стерильных продуктов и рассматривать их как часть предоставления безопасного ухода за пациентами. Изменения в оборудовании, персонале или процедурах могут повлиять на способность организации предоставлять надлежащим образом переработанные и безопасные инструменты.Таким образом, Институт PSO ECRI составил список из 10 основных принципов эффективной очистки инструментов:

1. Обеспечьте соответствующий обученный персонал, помещения и ресурсы для отделения стерильной обработки.

2. Стандартизируйте и упростите процедуры во всех областях, где обрабатываются инструменты.

3. Â Контролируйте качество обработки инструмента с помощью проверок после очистки.

4. Обратитесь к персоналу отдела переработки за информацией о закупках инструментов и оборудования.

5. Ограничьте зависимость операционных от немедленной стерилизации.

6. Установить критерии доставки для одалживаемых инструментов и запретить их немедленную стерилизацию.

7.Â Требовать регулярной оценки компетентности персонала, занимающегося переработкой инструментов.

8. Содействовать сотрудничеству и совместной работе персонала отделения переработки и операционной.

9. Принимать во внимание и уважать вклад персонала, занимающегося переработкой, в безопасность пациентов и качественный уход.

10. Поощряйте незамедлительное информирование о событиях или возможных авариях, связанных с загрязненными инструментами.

Источник: Институт ECRI

Страница не найдена — Hensler Surgical Products

перейти к содержанию Меню Тележка Тележка

Дом
Продукция
- Технология извлечения аутотрансплантата
  - Hensler Bone Press ™
  - Hensler Bone Collector ™
  - Всасывающие насадки Hensler Frazier
  - Кормоуборочный комбайн Corex ™ Iliac Crest
  - Двухпортовая воронка для кости KG-1®
  - Maxx ™ — сотовая система BMAC
- Аппаратные средства для позвоночника Zavation и системы кифопластики
  - Аппаратные средства для позвоночника Zavation
  - Универсальная система для кифопластики ZVplasty®
- Регенеративный | Восстановительные медицинские технологии
  - Amnio Breathe
  - Нашивки Infinity Amnion
  - Системы EmCyte® PRP
- Навигация, эндоскопические и электрохирургические технологии
  - Антипригарные щипцы Hensler
  - Сферы навигации
  - Эндоскопическая система отделения мягких тканей Segway
  - Биполярные аксессуары для электрокаутеризации
- Аллогенные технологии
  - Аллогеника
  - ConCelltrate® 100
- СИЗ и профилактические средства для здоровья
Магазин СИЗ
- Тестирование на COVID
- Дезинфицирующее средство для рук
- Маски и щиты
- Перчатки защитные
- PAPR и запчасти
- Медицинское и хирургическое оборудование
Около
- Около
- Основатели
- Патенты
Медиа
- Новости / Блог
- Промо
Пациентам
Контакт

Закрыть меню Закрыть корзину

Страница не найдена.

Хирургические продукты Hensler Политика возврата Политика конфиденциальностиУсловия и положенияМой аккаунтВеб-дизайн и маркетинг от Proclaim Interactive

Введение

Справочник по бактерицидному ультрафиолетовому облучению. 2009 июля 9: 1–16.

Владислав Ковальский

Immune Building Systems, Inc., 575 Madison Ave., 10022 New York, NY USA

Эта статья является предоставляется через Подмножество открытого доступа PMC для неограниченного повторного использования в исследованиях и вторичного анализа в любой форме и любыми средствами с указанием первоисточника. Эти разрешения предоставляются на период, пока Всемирная организация здравоохранения (ВОЗ) объявила COVID-19 глобальной пандемией.

Реферат

Ультрафиолетовое бактерицидное облучение (УФГИ) определяется как использование ультрафиолетовых (УФ) длин волн света в бактерицидном диапазоне (200–320 нм) для дезинфекции воздуха и поверхностей. Термин « UVGI » был первоначально введен Международной комиссией по освещению (CIE) и позже принят Центрами по контролю за заболеваниями (CDC), и этот термин отличает средства дезинфекции от небактерицидных длин волн УФА черного света и ламп для загара ( 320–400 нм).UVGI также используется для отделения дезинфекции воздуха и поверхностей от дезинфекции воды (CIE 2003). В этой книге термины «УФГИ» и «УФ» будут использоваться взаимозаменяемо, с пониманием того, что в любом контексте, если не указано иное, оба термина относятся к длинам бактерицидных волн УФС (200–280 нм) и УФВ (280–320 нм). нм). УФ-излучение ниже 320 нм является актиничным, что означает, что оно вызывает фотохимические реакции. УФА-излучение (320–400 нм) не считается бактерицидным и в этой книге специально не рассматривается (за исключением импульсного света).

Ключевые слова: Патоген пищевого происхождения, дезинфекция воды, черный свет, дезинфекция поверхности, система дезинфекции

Бактерицидное ультрафиолетовое облучение (UVGI)

Ультрафиолетовое бактерицидное облучение (UVGI) определяется как использование ультрафиолетового (УФ) света бактерицидный диапазон (200–320 нм) для дезинфекции воздуха и поверхностей. Термин « UVGI » был первоначально введен Международной комиссией по освещению (CIE) и позже принят Центрами по контролю за заболеваниями (CDC), и этот термин отличает средства дезинфекции от небактерицидных длин волн УФА черного света и ламп для загара ( 320–400 нм).UVGI также используется для отделения дезинфекции воздуха и поверхностей от дезинфекции воды (CIE 2003). В этой книге термины «УФГИ» и «УФ» будут использоваться взаимозаменяемо, с пониманием того, что в любом контексте, если не указано иное, оба термина относятся к длинам бактерицидных волн УФС (200–280 нм) и УФВ (280–320 нм). нм). УФ-излучение ниже 320 нм является актиничным, что означает, что оно вызывает фотохимические реакции. УФА-излучение (320–400 нм) не считается бактерицидным и в этой книге специально не рассматривается (за исключением импульсного света).В таблице приведены определения основных диапазонов УФ-излучения. Ранее считалось, что УФА простирается до 315 нм, но было обнаружено, что диапазон 315–320 нм оказывает незначительное бактерицидное действие. Диапазон UVA, а, следовательно, и диапазон UVB, были пересмотрены различными организациями, так что теперь все актиническое УФ-излучение находится строго в пределах диапазонов UVB и UVC. Это разделение позволяет UVA быть полностью небактерицидным и удобно помещает все бактерицидные UV в диапазоны UVB и UVC.

Таблица 1.1

Первичные полосы ультрафиолетового излучения

Полоса	Длина волны, нм	Тип и классификация
UVA	320–400	Ближний к ультрафиолетовому излучению )
УВБ	280–320	Эритемальный	Бактерицидный	Актинический
UVC	200–280	Озонопроизводящий	Бактерицидный
VUV	100–200	Вакуумный ультрафиолет

Определения диапазонов УФ-излучения UVA, UVB и UVC, приведенные в таблице, еще не полностью включены во все соответствующие директивы или принятые каждым агентством, но, вероятно, в конечном итоге будут приняты повсеместно.VUV (вакуумный ультрафиолет) не пропускает воздух, поскольку он быстро поглощается, и поэтому диапазон VUV не представляет интереса для дезинфекции воздуха и поверхностей и не рассматривается в этой книге.

В этой вводной главе представлены некоторые другие основные определения и предметы, которые служат основой для последующих глав, где эти концепции будут рассмотрены более подробно. Главы в этой книге составлены таким образом, чтобы в первую очередь обратиться к справочной информации, включая теорию и математическое моделирование, затем оборудование и методы проектирования и, наконец, тестирование и приложения.В приложениях представлены таблицы с полезными данными и информацией, на которые будут ссылаться в этой книге.

Краткая история ультрафиолетовой дезинфекции

История ультрафиолетового света начинается с Исаака Ньютона и его современников. В 1672 году Исаак Ньютон опубликовал серию экспериментов с призмами, которые разделяли солнечный свет на составляющие его цвета, от красного до фиолетового. Воздействие солнечного света на человека, микроорганизмы и химические вещества стало предметом большого интереса и экспериментов в 1800-х годах.В 1814 году Фраунгофер нанес на карту более 500 полос солнечного света, некоторые из которых находились в ультрафиолетовой области. В 1842 году Беккерель и Дрейпер независимо друг от друга показали, что длины волн от 340 до 400 нм вызывают фотохимические изменения на пластинах дагеротипа (Hockberger 2002).

УФ-лампа была разработана раньше, чем исследования бактерий при солнечном свете. В 1835 году Уитстон изобрел первую дуговую лампу на парах ртути (Hg), но она оказалась нестабильной и недолговечной. Физо и Фуко (1843) сообщили о проблемах с глазами после экспериментов с угольной дуговой лампой и предположили, что это произошло из-за «химических лучей».В 1850 году Стокс использовал алюминиевые электроды для создания «закрытой» дуговой лампы в кварцевой трубке, которая испускала УФ-лучи с длиной волны 185 нм (Hockberger 2002).

Самые ранние научные наблюдения бактерицидных эффектов ультрафиолетового излучения начались с Доунса и Бланта (1877), которые сообщили, что бактерии инактивировались солнечным светом, и обнаружили, что фиолетово-синий спектр был наиболее эффективным. В 1885 году Арлоинг и Дюкло продемонстрировали, что солнечный свет убивает Bacillus anthacis и Tyrothrix scaber соответственно.Видмарк (1889, 1889a) опубликовал исследования, подтверждающие, что УФ-лучи от дуговых ламп являются причиной ожогов кожи, с использованием призмы для разделения УФ-спектра и воды, чтобы блокировать инфракрасные лучи. В 1892 году было продемонстрировано, что ультрафиолетовый свет отвечает за это действие с помощью тестов на Bacillus anthracis (Ward 1892). Также в 1892 году Гейслер использовал призму и гелиостат, чтобы показать, что солнечный свет и дуговые лампы смертельны для Bacillus typhosus . Финсен (1900) выполнил первый строгий анализ эффектов УФ-света.УФ-спектр около 250 был идентифицирован как биоцидный Барнардом и Морганом (1903), а диапазон был сужен Ньюкомером (1917) и выделен до 253,7 нм Эрисманном и Ноэтлингом (1932). В таблице приведены наиболее важные события в истории исследований и приложений УФ-излучения.

Таблица 1.2

Хронология критических событий в истории ультрафиолетового излучения

Беккерель Свет с длиной волны 340–400 нм, фотореактивный обнаружено, что более короткие длины волн УФ-излучения не проникают2

Год	Событие	Ссылка
1814	Фраунгофера отображает спектральные полосы солнечного света
Хокбергер	1835	Уитстон изобретает первую дуговую лампу на парах ртути	Хокбергер (2002)
1850	Стокс изобретает кварцевую дуговую лампу с длиной волны 185 нм	Хокбергер (2002)
1842 находит	Hockberger (2002)
1877	Впервые продемонстрировано бактерицидное действие солнечного света	Downes and Blunt (1877)
1889	УФ-свет продемонстрировал эритемальность	Wid 1889)
1892	УФ-компонент солнечного света признано биоцидным	Ward (1892)
1892	Geissler демонстрирует летальность дуговых ламп до B.брюшной тиф	Hockberger (2002)
1903	Бактерицидный УФ-спектр от 226 до 328 нм	Барнард и Морган (1903)
1904	Первая кварцевая лампа для УФ-излучения	)
1906	УФ, впервые использованный для дезинфекции питьевой воды	фон Реклингхаузен (1914)
1909	Первые европейские применения для обеззараживания воды УФ-излучением	AWWA (1971)
Анри (1912)
1916	Первые применения УФ-излучения для дезинфекции воды в США	AWWA (1971)
1921	УФ-фотореактивность с TiO7 2 первый продемонстрировано	Renz (1921)
1925	Впервые продемонстрировано УФ-фотодеградация материалов 90 262	Luckiesh and Taylor (1925)
1927	Опубликован первый спектр эритемного действия	Hausser and Vahle (1927)
1927	Бактерицидное действие ультрафиолетовых лучей, впервые количественно определено по Бедно, 1926 г. )
1928	Вирулицидное действие УФ, впервые количественно определенное научно	Риверс энд Гейтс (1928)
1929	Фунгицидное действие УФ, впервые количественно определено научно		Fulton и Co.	УФ бактерицидный пик на 253.7 нм, изолированные	Ehrismann and Noethling (1932)
1932	Эритемный спектр УФ, впервые количественно определен	Coblentz et al. (1932)
1936	Первая потолочная УФ-система в больницах	Wells and Wells (1936), Hart (1936)
1936	Явления УФ фотореактивации впервые выявлены	Prat (1936)
1937	Первое применение в школах в верхних слоях воздуха	Wells (1938)
1938	Первая газоразрядная люминесцентная УФ лампа	Whitby and Scheible (2004)
1940	УФ впервые применили к воздуху системы	Rentschler and Nagy (1940)
1942	Первые рекомендации по выбору размеров для УФ-дезинфекции воздуха	Luckiesh and Holladay (1942)
1942	Верхний и нижний УФ-лучи для казарм Well 90s / Navy и другие.(1942)
1950	Методы определения размеров первого каталога	Buttolph and Haynes (1950)
1954	Первое применение кондиционера	Harstad et al. (1954)
1954	Ошибочное британское исследование пришло к выводу, что УФ неэффективен	MRC (1954)
1957	Райли доказывает эффективность УФ для борьбы с туберкулезом	Riley et al. (1957)
1974	Первые системы контроля роста микробов	Grun and Pitz (1974)
1985	УФ-системы охлаждающего змеевика, используемые на европейских пивоварнях	Philips (1985)
	CDC подтверждает эффективность УФ-излучения для борьбы с туберкулезом	CDC (2005)
1996	Первая система облучения охлаждающего змеевика в США	Scheir (2000)
1997	Первые УФ-светодиоды (светодиоды) при 265 нм	Guha and Bojarczuk (1998)
1999	ВОЗ рекомендует UVGI для борьбы с туберкулезом	WHO (1999)
2000	Армия США рекомендует UVGI для изоляции болезней	USACE (2000)
2003	CDC официально санкционирует использование UVGI в больницах	CDC (2003)
2003	FEM UVGI санкционирует как вариант биозащиты зданий	FEMA (2003)
2003	Первая внутриканальная система UVGI, продемонстрировавшая снижение симптомов болезни и загрязнения воздуха	Menzies et al.(2003)
2003	ASHRAE формирует комитет по УФ-обработке воздуха и поверхности	Martin et al. (2008)
2005	Федеральное правительство определяет УФ для дезинфекции охлаждающего змеевика	GSA (2003)
2007	Доказано, что потолочная УФ-система снижает SSI в операционных	Ritter et al. (2007)

Согласно фон Реклингхаузену (1914), первое использование ультрафиолетового излучения для дезинфекции питьевой воды произошло в 1906 году.В 1909-1910 годах первая система обеззараживания воды была запущена в Марселе, Франция. Первое свидетельство того, что УФ-свет оказывает фотохимическое воздействие на микроорганизмы, было представлено Анри (1914). В 1916 году первая американская система обеззараживания воды была испытана в Хендерсоне, штат Кентукки (AWWA, 1971). В 1921 году Ренц продемонстрировал, что УФ может вызывать фотореакции с оксидом титана (TiO2). Hausser и Vahle (1927) представили первый подробный спектр действия эритемы. Бедфорд (1927) и Гейтс (1929) были одними из первых, кто установил дозы УФ-излучения, необходимые для бактериальной дезинфекции.Дозировки для дезинфекции грибков были впервые опубликованы Фултоном и Кобленцем (1929). Первые исследования УФ-облучения вирусов, по-видимому, были опубликованы Риверсом и Гейтсом (1928) и Штурмом и др. (1932). Coblentz et al. (1932) уточнил спектр эритемного действия.

В 1930-е годы были впервые применены УФ-системы в больницах для борьбы с инфекциями (Wells and Wells 1936, Hart and Sanger 1939, Robertson et al. 1939, Kraissl et al. 1940, Overholt and Betts 1940). Первые УФ-системы в верхней комнате, по-видимому, были установлены Уэллсом (1938).В 1940-х годах были опубликованы первый подробный проект и анализ УФ-дезинфекции воздуха вместе с основными руководящими принципами по применению УФ-излучения в системах вентиляции (Rentschler and Nagy 1940, Sharp 1940, Wells 1940, Buchbinder and Phelps 1941, DelMundo and McKhann 1941, Luckiesh and Holladay 1942, Sommer and Stokes 1942, Henle et al.1942, Hollaender 1943). Первые попытки использовать УФ-системы для борьбы с респираторными инфекциями в школах и бараках были предприняты вскоре после этого (Wells et al. 1942, Wells 1943, Schneiter et al.1944 г., Уиллер и др. 1945 г., Перкинс и др. 1947, Хиггонс и Хайд 1947). Было предпринято несколько первых попыток разработать строгие методы определения размеров и технические инструкции для УФ-приложений (Luckiesh and Holladay 1942a, Luckiesh 1945, 1946).

К 1950-м годам было четко установлено, что УФ-облучение эффективно для дезинфекции как воздуха, так и поверхностей, и были разработаны новые инженерные приложения. В каталогах General Electric подробно описывается широкий спектр УФ-приложений, включая различные методы установки УФ-ламп внутри воздуховодов и кондиционеров (Buttolph and Haynes 1950, GE 1950).Harstad et al. (1954) продемонстрировали, что установка УФ-ламп в кондиционерах снизит загрязнение воздуха, и что микроорганизмы накапливаются и накапливаются на внутренних поверхностях AHU. Рост бактерий на охлаждающих змеевиках был признан потенциальной проблемой для здоровья еще в 1958 году (Walter 1969). Первое доказательство того, что оборудование для охлаждения воздуха может вызывать респираторные инфекции, было представлено Андерсоном (1959), когда было обнаружено, что устройство для охлаждения воздуха заражено размножением микробов.Эта же проблема возникла в больницах примерно с 1944 года, но возможность роста бактерий на охлаждающих змеевиках не была окончательно продемонстрирована до 1964 года (Cole et al. 1964). Рост микробов на другом оборудовании, таком как фильтры и пыль внутри каналов кондиционирования воздуха, был впервые продемонстрирован Уайтом (1968). Распространение микробов через вентиляционные системы и их способность вызывать респираторные инфекции получили широкое признание в конце 1960-х годов как в медицинских, так и в инженерных профессиях (Banaszak et al.1970, Schicht 1972, Zeterberg 1973). В то время было понятно, что рост микробов может происходить везде, где воздух соприкасается с влагой (Gunderman 1980, Ager and Tickner 1983, Spendlove and Fannin 1983). Первая система UVGI, разработанная специально для дезинфекции поверхностей оборудования для обработки воздуха, включая увлажнители воды и фильтры, была подробно описана Grun и Pitz (1974). Лучано (1977) подробно описал множество применений UVGI, включая применение в больницах, в которых УФ-лампы специально устанавливаются перед охлаждающими змеевиками и после фильтров.В 1985 году Филлипс опубликовал руководство по дизайну, в котором было представлено первое исчерпывающее описание применения УФ-ламп для контроля роста микробов (Philips 1985). В руководстве по проектированию Philips упоминаются европейские установки, которые уже работали до 1985 года. В январе 1996 года первая система UVGI в США, предназначенная для контроля роста охлаждающих змеевиков, была установлена государственной службой Омахи (PSO) в Талсе (Scheir 2000). . В том же году Central and Southwest Corporation последовала примеру PSO и начала реализовывать значительную экономию энергии (ELP 2000).

Хотя системы UVGI использовались в больницах с 1936 года, но только в 2003 году, примерно шестьдесят лет спустя, CDC официально признал, что УФ-системы эффективны и могут использоваться в больницах с одной оговоркой — УФ-верхняя комната и системы воздуховодов могут использоваться только в дополнение к другим системам очистки воздуха (CDC 2003). В 1957 году Райли и его сотрудники успешно завершили демонстрацию того, как УФ-дезинфекция воздуха может контролировать распространение туберкулеза (ТБ) в больничных палатах (Riley et al.1957). Только в 1994 году, более чем сорок лет спустя, Центры по контролю за заболеваниями (CDC) признали, что УФ-излучение может быть эффективным для борьбы с туберкулезом в ответ на растущую во всем мире эпидемию туберкулеза, которая не поддавалась контролю с помощью традиционных методов (CDC 2005). . В 2003 году влиятельное Американское общество инженеров по отоплению, охлаждению и кондиционированию воздуха (ASHRAE) сформировало рабочую группу, которая сосредоточилась на УФ-обработке воздуха и обработки поверхности (TG2.UVAS), которая в 2007 году стала постоянным Техническим комитетом TC 2.9 (Martin et al.2008 г.).

Единицы и терминология

При УФ-дезинфекции использовались различные единицы измерения освещенности и дозы УФ-излучения. Энергия излучения, иногда называемая интенсивностью, имеет предпочтительные единицы Вт / м ² при дезинфекции воздуха и поверхностей. Доза УФ-излучения (также известная как плотность потока энергии) имеет предпочтительные единицы Дж / м ² при дезинфекции воздуха и поверхностей. Коэффициенты пересчета для различных единиц, которые использовались в литературе, представлены в таблице. Использование Table очень просто, как показано в следующих примерах.Обратите внимание, что джоуль (Дж) эквивалентен ватт-секунде (Вт · с), а Вт / м ² равен мкВт / мм ²

Таблица 1.1

Первичные полосы ультрафиолетового излучения

Таблица 1.3

Единицы энергетической освещенности и дозы УФ-излучения

Пример 1:

Преобразование энергетической освещенности 144 мВт / см ² (милливатт на квадратный сантиметр) в единицы Вт / м ² (ватт на квадратный метр)

Ответ:

Считайте вниз от первого столбца, мВт / см ² до серого прямоугольника, а затем до второго столбца, Вт / м ², где коэффициент преобразования равен 10.Умножаем 144 10 = 1440 Вт / м ².

Пример 2:

Преобразуйте дозу УФ-излучения 33 мкДж / см ² (микроджоулей на квадратный сантиметр) в единицы Дж / м ² (Джоули на квадратный метр).

Ответ:

Считайте из четвертого столбца, мкДж / см ², до серого прямоугольника, а затем до второго столбца, Дж / м ², где коэффициент преобразования равен 0,01. Умножаем 33 0,01 = 0,33 Дж / м ².

Термин «УФС» сегодня часто используется для обозначения всех применений бактерицидного УФ-излучения, но правильное определение этого термина — это, конечно, диапазон длин волн УФ-излучения между 200 и 280 нм, и это строгое определение используется повсюду. эта книга.Например, УФ-лампа может относиться к любой лампе, которая излучает УФ-волны любой длины, включая лампы черного света и лампы для загара (хотя в этой книге рассматриваются только бактерицидные УФ-лампы). Термин «лампа UVGI» конкретно относится к лампам, которые излучают длины волн УФ в актиническом «широкополосном» диапазоне от 200 до 320 нм (исключая черный свет и солнечные лампы). Термин «УФ-лампа» конкретно относится к лампам, которые излучают длины волн УФ-С в «узкополосном» диапазоне 200–280 нм. В текущем и общепринятом использовании термин «UVC» часто подразумевает, что полоса UVC является единственным фактором, способствующим бактерицидному эффекту, но это значение часто неверно, и такого использования в данном тексте избегают — везде, где в данном документе используется термин «UVC». это относится конкретно к диапазону УФС излучения.Другие термины, такие как UVR (ультрафиолетовое излучение) и GUV (бактерицидный ультрафиолет), также использовались в прошлом в контексте бактерицидного воздействия.

Термин «бактерицидный» означает, что эти УФ-системы уничтожают, убивают или инактивируют микроорганизмы, такие как вирусы, бактерии и грибки. Технически вирусы представляют собой молекулы, поэтому принято называть вирусы инактивированными, а не убитыми. Во всех случаях бактерицидное действие означает дезинфекцию, а дезинфекция подразумевает сокращение микробной популяции, будь то в воздухе, воде или на поверхностях.Популяции микробов измеряются в КОЕ или колониеобразующих единицах (т.е. выращиваются на чашках Петри). В случае вирусов подходящей мерой вирусных популяций является БОЕ или бляшкообразующие единицы. Однако, где бы в этой книге ни использовался термин «КОЕ», он будет применяться как к вирусам, так и к бактериям (для удобства), с пониманием читателя, что правильная терминология для вирусов — это БОЕ, независимо от того, используется ли он. или нет. Плотность микробов в воздухе всегда указывается в КОЕ / м ³ (хотя в некоторых более старых текстах используется КОЕ / фут ³).Плотность микробов на поверхности дается в КОЕ / см ² (в старых текстах это КОЕ / дюйм ²). Следовательно, дезинфекция воздуха будет измеряться с точки зрения снижения плотности переносимого по воздуху количества в КОЕ / м ³, а дезинфекция поверхностей будет измеряться с точки зрения уменьшения КОЕ / см ².

Стерилизация — это родственный термин, означающий полное уничтожение микробной популяции. Однако действительно трудно продемонстрировать полное уничтожение микробной популяции, поскольку любой микробиологический тест будет иметь определенный предел точности.Для практического удобства при дезинфекции воздуха и для аналитических целей «математическая стерилизация» может представлять собой степень дезинфекции, равную шести логарифмам или выше, когда нет выживших. Это определение может не применяться к ультрафиолетовой дезинфекции воды, но при дезинфекции воздуха было бы крайне необычно иметь воздушные плотности порядка миллиона КОЕ / м ³, а типичные воздушные плотности находятся в диапазоне нескольких тысяч КОЕ / м ³. / м ³. Очевидно, что при плотности в несколько тысяч КОЕ / м ³ уменьшение на три или четыре логарифма (1000–10 000 КОЕ / м ³) приведет к стерилизации, а уменьшение на шесть логарифмов является адекватным определением стерилизации для воздуха. средства дезинфекции.Дезинфекция поверхностей — это совсем другое дело, и плотность поверхностного загрязнения не совсем понятна и не определена, поэтому «математическое определение» стерилизации для дезинфекции поверхности в этом тексте не определено.

Дезинфекция воздуха и воды

Конструкция УФ-систем для обеззараживания воды отличается от систем обеззараживания воздуха и поверхностей, и поэтому совокупные знания, накопленные в водной промышленности, имеют ограниченное прямое применение для обеззараживания воздуха и поверхностей.Ультрафиолетовые лучи ослабляются в воде, и этот процесс не имеет аналогов при обеззараживании воздуха, даже если он насыщен. Ослабление УФ-излучения в воде происходит в пределах примерно 15 см, что требует как более высоких уровней мощности УФ-излучения, так и плотно упакованных массивов УФ-ламп. Оценки доз ультрафиолетового излучения, необходимых для обеззараживания воды, примерно в десять раз выше, чем те, которые требуются при обеззараживании воздуха, и эта разница искажает любые попытки использовать методы определения размеров УФ-систем для воды при проектировании систем обеззараживания воздуха.Кроме того, ряд конкретных микроорганизмов, вызывающих озабоченность в водном хозяйстве, значительно отличается от микроорганизмов, обнаруженных в воздухе, и поэтому константы скорости УФ-излучения на водной основе используются только в том случае, если микробный агент находится как в воздухе, так и в воде (например, Legionella ) или также поверхностные и для теоретического анализа. Некоторое совпадение в области применения УФ-излучения на воде и в воздухе также существует в области патогенов пищевого происхождения, где определенные патогены пищевого происхождения могут переноситься по воздуху и где они могут существовать в виде поверхностного загрязнения, поддающегося дезинфекции УФ-излучением.

Хотя доза УФ-излучения в воздухе является простой функцией воздушного потока и времени воздействия, а поле УФ-излучения в воздухе определить не так уж сложно, восприимчивость переносимых по воздуху микробов является сложной функцией относительной влажности и реакции, зависящей от вида. . Часто считалось, что чувствительность микробов к ультрафиолетовому излучению в воздухе при 100% относительной влажности (RH) должна соответствовать их восприимчивости в воде, но это оказывается чрезмерно упрощенным, и можно только сказать, что чувствительность к ультрафиолету при высокой относительной влажности приближается к в воде.В результате этих различных различий между УФ-дезинфекцией на водной основе и УФ-дезинфекцией воздуха и поверхности, исследования первой из них дают ограниченные преимущества для исследований в области воздушной дезинфекции, и тема обеззараживания воды не рассматривается в этой книге, за исключением тех случаев, когда он оказывает определенное влияние на дезинфекцию воздуха и поверхностей и в их общих теоретических аспектах. База данных констант скорости ультрафиолета в Приложениях охватывает все известные ультрафиолетовые исследования микробной дезинфекции, включая исследования патогенов и аллергенов, передающихся через воду и продукты питания.Существует множество подробных текстов по теме обеззараживания воды УФ-излучением (во много раз больше, чем об УФ-обеззараживании в воздухе), и читатели, желающие ознакомиться с УФ-технологией и методами, должны напрямую обращаться к этим текстам (см., Например, Bolton и хлопок 2008 г.). Однако представленная здесь информация о теории UVGI и константах скорости УФ-инактивации может представлять немалый интерес для тех, кто занимается дезинфекцией воды.

Дезинфекция поверхностей

Дезинфекция поверхностей означает либо дезинфекцию внутренних поверхностей зданий и вентиляционных систем, либо дезинфекцию поверхностей оборудования и материалов, таких как стоматологическое и медицинское оборудование.Как и водные системы, системы УФ-дезинфекции поверхностей имеют долгую историю успеха. Однако конструкция и работа поверхностных УФ-систем имеют гораздо больше общего с дезинфекцией воздуха, чем водные системы. Загрязненные поверхности часто являются источником переносимых по воздуху микробов, а переносимые по воздуху микробы часто вызывают поверхностное загрязнение. Взаимодействие процессов загрязнения воздуха и поверхности делает вопрос дезинфекции воздуха и поверхности практически неотделимым для некоторых приложений, например, в здравоохранении и пищевой промышленности.Дезинфекция поверхностей охлаждающих змеевиков, например, удаляет споры плесени со змеевиков и предотвращает последующее образование аэрозолей, тем самым помогая поддерживать чистоту воздуха. УФ-системы для дезинфекции змеевиков также дезинфицируют воздух напрямую, поэтому такие системы часто выполняют одновременно функции дезинфекции воздуха и поверхности.

Одно из основных различий между дезинфекцией воздуха и поверхностей с помощью УФ-излучения заключается в том, что соответствующие константы интенсивности УФ-излучения различаются при этих двух типах воздействия — константы скорости распространения по воздуху обычно выше в воздухе при нормальной влажности.То есть микробы более уязвимы в воздухе, тогда как микробы на поверхности, по-видимому, обладают определенной степенью внутренней защиты. Хотя этот вопрос еще предстоит решить в ходе будущих исследований, имеющаяся база данных констант скорости ультрафиолетового излучения для микробов на поверхности полезна в качестве консервативной оценки констант скорости переноса по воздуху, а также констант скорости на основе воды, когда исследования констант скорости переноса по воздуху не проводятся.

Поскольку микробы, переносимые по воздуху, часто переносятся с поверхности, и наоборот, и по различным причинам, упомянутым выше, эти темы, а именно дезинфекция воздуха и поверхности ультрафиолетом, сильно пересекаются.Фактически, дезинфекция поверхностей имеет гораздо больше общего с дезинфекцией воздуха, чем дезинфекция воды, и часто эти две технологии взаимосвязаны. Поэтому целесообразно обрабатывать воздух и поверхность УФ-дезинфекцией вместе, как в этом тексте, и следует понимать, что большинство систем дезинфекции воздуха будут одновременно выполнять некоторую функцию дезинфекции поверхности, намеренно или иным образом. Точно так же многие УФ-системы для дезинфекции поверхностей (например, системы нижних комнат, хирургические системы над головой) также будут выполнять некоторые функции обеззараживания воздуха в силу своей конструкции или иным образом.

Дезинфекция воздуха

Воздушные патогены и аллергены представляют гораздо большую угрозу для здоровья человека, чем водные микробы, с точки зрения общей заболеваемости и чистых затрат на здравоохранение, но систем обеззараживания воздуха гораздо меньше, чем систем обеззараживания воды , а по воздушной УФ-дезинфекции доступно гораздо меньше информации, чем по водным. Успех UVGI для дезинфекции воздуха также подвергался многочисленным интерпретациям и даже полностью отвергался, несмотря на неоднократные демонстрации его эффективности.После десятилетий исследований область воздушной УФ-дезинфекции остается полна неизвестных и заблуждений, а ее применение гораздо менее многочисленно, чем могло бы быть. В последующих главах делается попытка консолидировать всю базу знаний, относящуюся к UVGI, и продемонстрировать, как тщательное применение правильных принципов проектирования и новых подходов может привести к результатам, столь же предсказуемым и надежным, как и у систем обеззараживания воды. Новые вычислительные методы в сочетании с богатым недавним опытом проектирования и установки, а также текущими исследованиями позволяют устанавливать системы с достаточно высокой степенью уверенности в их производительности.

Методы демонстрации производительности на месте, наряду с различными руководящими принципами и стандартами для таких установок, превратили область UVGI из неопределенного искусства в почти законченную науку. Ключевым отсутствующим компонентом в настоящее время является убедительное доказательство того, что дезинфекция воздуха UVGI снижает заболеваемость воздушно-капельным путем, что потребует годы сбора данных, когда будет достаточно и адекватных установок для мониторинга. Некоторые текущие исследования изучают это направление исследований, и предварительные результаты показывают, что UVGI, как предсказывают теория и анализ, эффективен в уменьшении как симптомов, так и частоты различных заболеваний, передающихся воздушно-капельным путем.По мере увеличения количества приложений эта база данных должна в конечном итоге предоставить надежные доказательства, которые могут привести к полному экономическому обоснованию установки UVGI в медицинских учреждениях, школах и других типах зданий. Широкое распространение ультрафиолетового излучения для дезинфекции воздуха в зданиях, вероятно, принесет будущим поколениям экономические дивиденды и дивиденды для здоровья.

Дезинфекция воздуха Полевые исследования

Использование ультрафиолетового излучения для дезинфекции воздуха насчитывает около восьмидесяти лет, и тем не менее его применение в современных зданиях все еще далеки от обычного.Хотя девять из десяти полевых исследований UVGI дали положительные результаты, те немногие, которые не оправдали больших ожиданий, чаще всего приводились как доказательство неудач. В 1936 году Харт использовал ряд ультрафиолетовых ламп для стерилизации приточного воздуха в хирургической операционной (Hart 1937). В 1937 году первая установка УФ-ламп в школьной вентиляционной системе резко снизила заболеваемость корью, и последующие применения имели аналогичный успех (Riley, 1972). В конце 1940-х годов Уэллс и его сотрудники установили УФ-системы во всех общинах и продемонстрировали снижение скорости передачи болезней в общинах (Wells and Holla, 1950).В конце 1950-х годов эксперименты на морских свинках продемонстрировали устранение туберкулезных (ТБ) бацилл из отработанного воздуха больничных палат (Riley and O’Grady 1961). За этими ранними приложениями последовало множество проектов, которые были скорее имитационными, чем спроектированными. Результатом стала смесь успехов и неудач. В одном плохо спланированном исследовании MRC исследователи не смогли добиться статистически значимого снижения заболеваемости и ошибочно пришли к выводу, что ультрафиолетовое излучение не способствовало снижению заболеваемости (MRC 1954).Исследование MRC серьезно затруднило дальнейшее развитие УФ-технологий в 1950-х и 1960-х годах, и в результате того, что это исследование широко цитируется (и несмотря на его широкую критику со стороны экспертов), почти остановило дальнейшее развитие. внедрения и замедленные исследования (Riley 1980, 1980a). Этот спад УФ-индустрии нельзя измерить с точки зрения потерянных разработок, потерянных полевых данных, потерянных затрат на здравоохранение или потерянных жизней, но есть те, кто сегодня продолжает настаивать на том, что УФГИ — это непроверенная технология «змеиного масла».Мы должны убедить их в обратном.

В результате явно несовершенного отчета об успехе UVGI широко игнорировалось в различных руководствах и стандартах, особенно в медицинских учреждениях, где к нему следовало обращаться напрямую. Без санкции высших органов здравоохранения UVGI томилась и в значительной степени игнорировалась в медицинских учреждениях, где она принесла бы наибольшую пользу. Эта изменчивая история отражена в различных руководствах, в которых не упоминается использование UVGI.Лишь несколько избранных из наиболее хорошо информированных больниц и исследователей нашли время, чтобы изучить и внедрить УФ-технологии, часто с большим успехом (Goldner and Allen 1973, Goldner et al. 1980, Nardell 1988). Недавно новое исследование подтвердило то, что всегда говорилось в первоначальных исследованиях, что УФ-технология может иметь большое влияние на сокращение различных типов внутрибольничных и внебольничных инфекций (Menzies et al.2003, Ritter et al.2007, Escombe et al. др. 2009).

Патогены и аллергены

Патогены — это любые микробы, вызывающие инфекции у людей и животных, в том числе вирусы, бактерии и грибки.Некоторые более крупные микробы, такие как простейшие, также могут вызывать инфекции, но эти паразиты, как правило, слишком велики, чтобы переноситься по воздуху. Поэтому в этой книге в первую очередь рассматриваются только вирусы, бактерии и грибки, включая споры бактерий и споры грибов, как загрязнители воздуха и поверхности. Насекомые, такие как пылевые клещи, не уничтожаются ультрафиолетом, и в этом тексте они не рассматриваются. Все вирусы, перечисленные в Приложении B, являются патогенами или бактериофагами, как и большинство бактерий в Приложении A и некоторые грибы в Приложении C.

Аллергены — это микробы, биологические продукты и соединения, которые вызывают аллергические реакции у атопических или восприимчивых людей. Соединения и биологические продукты (например, летучие органические соединения и перхоть домашних животных), как правило, не очень восприимчивы к ультрафиолетовому разрушению (хотя они легко удаляются фильтрами), поэтому в этой книге они специально не рассматриваются. Аллергены, о которых идет речь в этой книге, строго относятся к грибам и бактериям — вирусных аллергенов нет. Некоторые возбудители также могут быть аллергенами. Почти все грибы, перечисленные в Приложении C, являются аллергенами, и многие из них также являются патогенами.Почти все бактерии, перечисленные в Приложении А, являются патогенами, а некоторые из них также являются аллергенами.

Некоторые бактерии и практически все грибы могут образовывать споры. В нормальном состоянии или состоянии роста (называемом «вегетативным») бактерии существуют как клетки, а грибы существуют как клетки или дрожжи. Спорообразующие (спорообразующие) бактерии и грибы образуют споры при правильных условиях (обычно неблагоприятных). Споры представляют собой спящие формы, обычно более компактные, чем клеточные, круглой или яйцевидной формы, и могут противостоять теплу, обезвоживанию и холоду намного лучше, чем клеточная (или вегетативная) форма.Кроме того, они устойчивы к УФ-излучению. Поскольку они обычно меньше исходных клеток, споры имеют тенденцию легко переноситься по воздуху и могут переноситься на улицу. Спорам требуется только тепло, влага и тень, чтобы прорасти или вернуться в вегетативное состояние, а для роста и размножения требуются только питательные вещества.

Некоторые бактерии и грибы вырабатывают токсины, включая эндотоксины и экзотоксины. УФ оказывает ограниченное влияние на токсины, но длительное воздействие может снизить концентрацию токсинов (Anderson et al.2003, Астхана и Тувсон 1992, Шанта и Шриниваса 1977). Обычно в неблагоприятных условиях микробы должны вырабатывать токсины в высоких уровнях роста, а поскольку УФ-излучение уничтожает бактерии и грибы, продуцирующие токсины, маловероятно, что после УФ-дезинфекции останется достаточный уровень токсинов, чтобы создать опасность отравления.

Текущие исследования

Несмотря на обширные результаты исследований УФГИ по дезинфекции воздуха и поверхностей, еще предстоит проделать большую работу. Недавние исследования продемонстрировали эффективность UVGI и намекнули на возможное сокращение заболеваний, передаваемых воздушно-капельным путем, в коммерческих офисных зданиях.Способность UVGI сокращать расходы на техническое обслуживание охлаждающего змеевика хорошо известна. Также необходимы дополнительные исследования для определения констант скорости УФ-излучения для более широкого круга патогенов. С этой целью было предоставлено руководство по лабораторным испытаниям (включенное в эту книгу), которое должно облегчить получение воспроизводимых результатов испытаний, что не всегда имело место в прошлом.

В дополнение к предоставлению самой последней информации из текущей литературы по УФГИ, этот текст также предоставляет результаты авторского исследования восприимчивости к ультрафиолетовому излучению, включая модель воздействия относительной влажности в воздухе и геномную модель для прогнозирования восприимчивость к ультрафиолетовому излучению для вирусов (рассматривается в 10.1007 / 978-3-642-01999-9_2и 10.1007 / 978-3-642-01999-9_4). Также здесь впервые представлены исследования автора по моделированию импульсного УФ-излучения.

Возможно, наиболее важные применения UVGI сегодня находятся в отрасли здравоохранения, которая остро нуждается в решениях проблемы внутрибольничных (нозокомиальных) инфекций. Такие инфекции в настоящее время распространились вовне и стали инфекциями, приобретаемыми в сообществе, и вполне вероятно, что эта картина будет повторяться с новыми и появляющимися патогенами и устойчивыми к лекарствам штаммами, пока более эффективное решение не будет реализовано в широком масштабе.УФГИ может сыграть важную роль в ограничении распространения внутрибольничных инфекций, но больше всего необходимы не новые технологии (соответствующие технологии существуют в настоящее время), а поощрение и поддержка в виде руководящих принципов и рекомендаций по УФ-технологии от тех органов, которые до недавнего времени был несколько сдержанным и уклончивым по этому поводу.

UVGI и будущее борьбы с болезнями

UVGI имеет определенное будущее в борьбе с заразными заболеваниями, и при широкомасштабном применении он может стать ключом к борьбе с эпидемиями и пандемиями.Никакая другая современная технология не обладает возможностями, адаптируемостью и благоприятными экономическими показателями, чтобы сделать ее жизнеспособной для чрезвычайно широкого круга приложений по борьбе с болезнями. Он уже широко и эффективно используется в системах водоснабжения и дезинфекции поверхностей. В сочетании с фильтрацией воздуха это наиболее эффективная и экономичная технология обеззараживания воздуха. UVGI обещает в один прекрасный день внести значительный вклад в искоренение многих заразных болезней — от приложений здравоохранения до школ и жилых помещений.Появление микробов с множественной лекарственной устойчивостью, таких как MRSA и XTB, и новых патогенов, таких как SARS и птичий грипп, вероятно, будет стимулировать более широкое использование систем UVGI во все более широком числе приложений. Вклад УФ-технологий в борьбу с эпидемиями поддается анализу с помощью статистических моделей эпидемиологии, которые продемонстрировали потенциал широкого использования УФ-систем для теоретической остановки эпидемий инфекционных заболеваний, передающихся по воздуху (Ковальски, 2006). Возможно, продолжающиеся исследования и разработки в конечном итоге приведут к тому, что UVGI станет стандартным компонентом систем вентиляции во всех помещениях, и этому веку воздушных эпидемий придет конец.

Ссылки

Ager BP., Tickner JA. Контроль микробиологических опасностей, связанных с системами кондиционирования и вентиляции. Ann Occup Hyg. 1983. 27 (4): 341–358. DOI: 10.1093 / annhyg / 27.4.341. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Андерсон К. Pseudomonas pyocyanea , рассыпанный из аппарата воздушного охлаждения. Med J Aus. 1959; 1: 529. [PubMed] [Google Scholar]
Андерсон В.Б., Хак П.М., Диксон Д.Г., Мэйфилд С.И. Инактивация эндотоксинов в воде с помощью УФ-ламп среднего давления.Appl Environ Microbiol. 2003. 69 (5): 3002–3004. DOI: 10.1128 / AEM.69.5.3002-3004.2003. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Asthana A., Tuveson RW. Воздействие ультрафиолета и фототоксинов на отдельных грибковых возбудителей цитрусовых. Int J Plant Sci. 1992. 153 (3): 442–452. DOI: 10,1086 / 297050. [CrossRef] [Google Scholar]
AWWA. 1971. Качество воды и очистка. Американская ассоциация водопроводных сооружений I, редактор. Нью-Йорк: Макгроу-Хилл.
Banaszak EF., Thiede WH., Fink JN.Гиперчувствительный пневмонит из-за загрязнения кондиционера. New England J Med. 1970. 283 (6): 271–276. DOI: 10.1056 / NEJM197008062830601. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Барнард Дж., Морган Х. Физические факторы в фототерапии. Брит Мед Дж. 1903; 2: 1269–1271. DOI: 10.1136 / bmj.2.2237.1269. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Bedford THB. Природа действия ультрафиолета на микроорганизмы. Brit J Exp Path. 1927; 8: 437–441. [Google Scholar]
Bolton JR., Хлопок CA. Справочник ультрафиолетовой дезинфекции. Денвер, Колорадо: Американская ассоциация водопроводных сооружений; 2008. [Google Scholar]
Buchbinder L., Phelps EB. Исследования микроорганизмов в смоделированных комнатных средах. II. Выживаемость стрептококков в темноте. J Bact. 1941; 42: 345–351. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
Баттольф Л.Дж., Хейнс Х. Ультрафиолетовая очистка воздуха. Кливленд, Огайо: General Electric. Отчет № ЛД-11; 1950. [Google Scholar]
CDC. 2003 г.Руководство по контролю инфекций окружающей среды в медицинских учреждениях. MMWR 52 (RR-10). [PubMed]
CDC. 2005. Руководство по профилактике передачи Mycobacterium tuberculosis в медицинских учреждениях. В: CDC, редактор. Федеральный регистр. Вашингтон: Правительство США. Типография.
CIE. 2003. Ультрафиолетовая дезинфекция воздуха. Вена, Австрия: Международная комиссия по освещению. Отчет № CIE 155: 2003.
Coblentz WW., Stair R., Hogue JM. Спектральная эритемическая реакция незагорелой кожи человека на ультрафиолетовое излучение.J Res Nat Bur Stand. 1932; 8: 541–547. [Google Scholar]
Коул В.Р., Бернард Х.Р., Данн Б. Рост бактерий на змеевиках кондиционирования воздуха прямого расширения. Хирургия. 1964. 55 (3): 436–439. [PubMed] [Google Scholar]
DelMundo F., McKhann CF. Влияние ультрафиолетового облучения воздуха на заболеваемость инфекциями в детской больнице. Am J Dis Child. 1941; 61: 213–225. [Google Scholar]
Даунс А., Блант Т.П. Исследование влияния света на бактерии и другие организмы. Proc Roy Soc London.1877; 26: 488–500. DOI: 10.1098 / rspl.1877.0068. [CrossRef] [Google Scholar]
Ehrismann O., Noethling W. Uber die bactericide wirkung monochromatischen lichtes. Ztschr Hyg Infektionskr. 1932; 113: 597–628. DOI: 10.1007 / BF02177985. [CrossRef] [Google Scholar]
ELP. 2000. Как лампы UV-C сэкономили одной компании 58 000 долларов. Электроосвещение и питание 78 (2).
Эскомб А., Мур Д., Гилман Р., Навинкопа М., Тикона Э., Митчелл Б., Ноукс К., Мартинес К., Шин П., Рамирес Ротерс.Ультрафиолетовое излучение в верхних комнатах и отрицательная ионизация воздуха для предотвращения передачи туберкулеза. PLoS Med. 2009. 6 (3): 312–322. DOI: 10.1371 / journal.pmed.1000043. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
FEMA. 2003. Справочное руководство по снижению потенциальных террористических атак на здания: Федеральное агентство по чрезвычайным ситуациям. Отчет № FEMA 426.
Finsen N. Die Resultate der Behandlung des lupus vulgaris durch knzentrierte chemische Lichtstrahlen. Allg Wien Med Z.1900; A5: 60–65. [Google Scholar]
Физо Х., Фуко Л. Наблюдения, касающиеся действий в области красных пятен на дегуеринских бляшках. C R Habd Seances Acad Sci. 1843; 23: 679–682. [Google Scholar]
Fulton HR., Coblentz WW. Фунгицидное действие ультрафиолета. J Agric Res. 1929; 38: 159. [Google Scholar]
Gates FL. Исследование бактерицидного действия ультрафиолета. J Gen Physiol. 1929; 13: 231–260. DOI: 10.1085 / jgp.13.2.231. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
GE.1950. Бактерицидные лампы и их применение. США: General Electric. Отчет № SMA TAB: VIII-B.
Гольднер Дж. Л., Аллен БЛ. Ультрафиолет в ортопедических операционных в Университете Дьюка. Clin Ortho. 1973; 96: 195–205. DOI: 10.1097 / 00003086-197310000-00028. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Goldner JL., Moggio M., Beissinger SF., McCollum DE. Ультрафиолетовый свет для борьбы с бактериями, переносимыми по воздуху в операционной. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение, Анналы Нью-Йоркской академии наук.Нью-Йорк: NYAS; 1980. С. 271–284. [PubMed] [Google Scholar]
Grun L., Pitz N. U.V. радиаторы в увлажняющих установках и воздушных каналах систем кондиционирования в больницах. Zbl Bakt Hyg. 1974; B159: 50–60. [PubMed] [Google Scholar]
GSA. 2003. Стандарты обслуживания общественных зданий. Вашингтон: Служба общественных зданий Управления общих служб.
Гуха С., Боярчук Н. Ультрафиолетовые и фиолетовые светодиоды на основе GaN на кремнии. Appl Phys Lett.1998; 72: 415. DOI: 10,1063 / 1,120775. [CrossRef] [Google Scholar]
Гундерман К.О. Распространение микроорганизмов через системы кондиционирования воздуха, особенно в больницах. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение. Бостон: Нью-Йоркская академия наук; 1980. С. 209–217. [PubMed] [Google Scholar]
Harstad JB., Decker HM., Wedum AG. Использование ультрафиолетового излучения в комнатном кондиционере для удаления бактерий. Am Ind Hyg Assoc J. 1954; 2: 148–151. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
Hart J.Стерилизация воздуха в операционной специальной бактерицидной лучистой энергией. J Thoracic Surg. 1936; 6: 45–81. [Google Scholar]
Харт Д. Инфекции в операционной: предварительный отчет. Arch Surg. 1937; 34: 874–896. [Google Scholar]
Харт Д., Сэнгер П. У. Влияние на заживление ран бактерицидного ультрафиолетового излучения специального отделения: экспериментальное исследование. Arch Surg. 1939. 38 (5): 797–815. [Google Scholar]
Hausser K., Vahle W. Sonnenbrand und sonnenbraunung. В: Райтер Т., Габор Д., редакторы. Zellteilung und Strahlung. Берлин: Springer; 1927. С. 101–120. [Google Scholar]
Henle W., Sommer HE., Stokes J. Исследования воздушно-капельной инфекции в больничной палате: II. Влияние ультрафиолетового облучения и испарения пропиленгликоля на предотвращение экспериментального заражения мышей воздушно-капельным путем. J Pediat. 1942; 21: 577–590. DOI: 10.1016 / S0022-3476 (42) 80046-3. [CrossRef] [Google Scholar]
Анри В. Сравнение действия ультрафиолетовых лучей на организмы с использованием простых фотохимических реакций и комплексов.Compt Rend Soc Biol. 1912; 73: 323–325. [Google Scholar]
Анри В. Этюд метаболического действия в области ультрафиолетового излучения. CR Acad Sci (Париж), 1914; 159: 340–343. [Google Scholar]
Хиггонс Р.А., Хайд Г.М. 1947. Влияние ультрафиолетовой стерилизации воздуха на заболеваемость респираторными инфекциями в детском учреждении. Штат Нью-Йорк, журнал J Med 47 (7). [PubMed]
Хокбергер П. История ультрафиолетовой фотобиологии человека, животных и микроорганизмов. Photochem Photobiol.2002. 76 (6): 561–579. DOI: 10.1562 / 0031-8655 (2002) 076 <0561: AHOUPF> 2.0.CO; 2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Холлендер А. Влияние длинного ультрафиолетового и короткого видимого излучения (от 3500 до 4900) на Escherichia coli . J Bact. 1943; 46: 531–541. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
Kowalski WJ. Справочник по аэробиологической инженерии: Руководство по технологиям борьбы с заболеваниями, передающимися по воздуху. Нью-Йорк: Макгроу-Хилл; 2006. [Google Scholar]
Kraissl CJ., Cimiotti JG., Meleney FL. Рекомендации по использованию ультрафиолетового излучения в операционных. Ann Surg. 1940; 111: 161–185. DOI: 10.1097 / 00000658-194002000-00001. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Lorch W. Handbook of Water Purification. Чичестер: Ellis Horwood Ltd; 1987. [Google Scholar]
Лучано-младший. Контроль загрязнения воздуха в больницах. Нью-Йорк: Пленум Пресс; 1977 г. [Google Scholar]
Luckiesh M., Taylor AH. Выцветание цветных материалов при дневном и искусственном освещении.Trans Illum Eng Soc. 1925; 20: 1078. [Google Scholar]
Luckiesh M., Holladay LL. Испытания и данные по обеззараживанию воздуха бактерицидными лампами. Gen Electric Rev.1942; 45 (4): 223–231. [Google Scholar]
Luckiesh M., Holladay LL. Проектирование установок бактерицидных ламп для жилых помещений. Обзор General Electric. 1942. 45 (6): 343–349. [Google Scholar]
Luckiesh M. Дезинфекция бактерицидными лампами: Воздух — II. Электрический мир, октябрь 1945; 13: 109–111. [Google Scholar]
Лакиеш М.Применение бактерицидной, эритемной и инфракрасной энергии. Нью-Йорк: D. Van Nostrand Co; 1946. [Google Scholar]
Мартин С., Данн К., Фрихаут Дж., Банфлет В., Лау Дж., Неделькович А. Бактерицидное ультрафиолетовое облучение: современные передовые практики. ASHRAE J августа; 2008. С. 28–36. [Google Scholar]
Мензис Д., Попа Дж., Хэнли Дж. А., Рэнд Т., Милтон Д. К.. Влияние бактерицидных ультрафиолетовых ламп, установленных в системах вентиляции офисов, на здоровье и благополучие работников: двойные слепые множественные перекрестные испытания.Ланцет. 2003; 362: 1785–1791. DOI: 10.1016 / S0140-6736 (03) 14897-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
MRC. 1954. Обеззараживание воздуха ультрафиолетовым облучением; Его влияние на болезни среди школьников Комитетом по гигиене воздуха. Лондон: Совет медицинских исследований, Канцелярия Ее Величества. Отчет № 283.
Nardell EA. Глава 12: Ультрафиолетовая дезинфекция воздуха для борьбы с туберкулезом. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Архитектурный дизайн и микробное загрязнение помещений.Нью-Йорк: издательство Оксфордского университета; 1988. С. 296–308. [Google Scholar]
Новичок Х. Абиотическое действие ультрафиолетового света. J Exp Med. 1917; 26: 841. DOI: 10.1084 / jem.26.6.841. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Overholt RH., Betts RH. Сравнительный отчет по инфицированию ран после торакопластики. J Thoracic Surg. 1940; 9: 520–529. [Google Scholar]
Perkins JE., Bahlke AM., Silverman HF. Влияние ультрафиолетового облучения классных комнат на распространение кори в крупных сельских центральных школах.Am J Pub Health. 1947; 37: 529–537. DOI: 10.2105 / AJPH.37.5.529. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Philips. 1985. Каталог UVGI и руководство по дизайну. Нидерланды: Каталожный номер U.D.C. 628,9.
Prat S. Strahlung und antagonistische wirkungen. Протоплазма. 1936; 26: 113–149. DOI: 10.1007 / BF01628602. [CrossRef] [Google Scholar]
Rentschler HC. Преимущества бактерицидного ультрафиолетового излучения в системах кондиционирования воздуха. HPAC. 1940; 12 (Надь Р.): 127–130. [Google Scholar]
Ренц К.Фотореакции оксидов титана, церия и земных кислот. Helv Chim Acta. 1921; 4: 961. DOI: 10.1002 / hlca.192100401101. [CrossRef] [Google Scholar]
Райли Р., Уэллс В., Миллс К., Ника В., Маклин Р. Гигиена воздуха при туберкулезе: количественные исследования инфекционности и контроля в экспериментальной палате. Am Rev Tuberc Pulmon. 1957; 75: 420–431. [PubMed] [Google Scholar]
Райли Р.Л., О’Грейди Ф. Инфекция, передающаяся по воздуху. Нью-Йорк: компания «Макмиллан»; 1961. [Google Scholar]
Riley RL.Экология атмосферы в помещениях: воздушно-капельные инфекции в больницах. J Chron Dis. 1972; 25: 421–423. DOI: 10.1016 / 0021-9681 (72)
Райли Р.Л. Часть I. История и эпидемиология: Историческая справка. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение, Анналы Нью-Йоркской академии наук. Нью-Йорк: NYAS; 1980. С. 1–9. [Google Scholar]
Райли Р.Л. Профилактика и контроль инфекций, передающихся воздушно-капельным путем, в обществе. В кн .: Кундсин РБ., Редактор. Воздушное заражение, Анналы Нью-Йоркской академии наук.Нью-Йорк: NYAS; 1980. С. 331–339. [Google Scholar]
Риттер М., Олбердинг Э., Малинзак Р. Ультрафиолетовое освещение во время ортопедических операций и скорость инфицирования. J Bone Joint Surg. 2007; 89: 1935–1940. DOI: 10.2106 / JBJS.F.01037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Риверс Т., Гейтс Ф. Ультрафиолетовый свет и вакцинный вирус. II. Влияние монохроматического ультрафиолетового света на вакцинный вирус. J Exp Med. 1928; 47: 45–49. DOI: 10.1084 / jem.47.1.45. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Robertson EC., Дойл МЭ., Тисдалл Ф.Ф., Коллер ЛР., Уорд Ф.С. Загрязнение воздуха и стерилизация воздуха. Am J Dis Child. 1939; 58: 1023–1037. [Google Scholar]
Scheir R. Электроэнергетика решает проблему качества воздуха в помещении с помощью электроэнергии UVC. HPAC Eng. 2000. 69 (5): 28–29. [Google Scholar]
Schicht HH. Распространение микроорганизмов установками кондиционирования воздуха. Паровозик Октябрь; 1972. С. 6–13. [Google Scholar]
Schneiter R., Hollaender A., Caminita BH., Kolb RW., Fraser HF., DuBuy HG., Neal PA., Rosenblum HG. Эффективность ультрафиолетового облучения верхних слоев воздуха для контроля бактериального загрязнения воздуха в спальных помещениях. Am J Hyg. 1944; 40: 136. [Google Scholar]
Шанта Т., Шриниваса М. Фото-разрушение афлатоксина в арахисовом масле. Индийский J Technol. 1977; 15: 453. [Google Scholar]
Sharp G. Воздействие ультрафиолетового света на бактерии, взвешенные в воздухе. J Bact. 1940; 38: 535–547. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
Sommer HE., Стоукс Дж. Исследования воздушно-капельной инфекции в больничной палате. J Pediat. 1942; 21: 569–576. DOI: 10.1016 / S0022-3476 (42) 80045-1. [CrossRef] [Google Scholar]
Spendlove JC., Fannin KF. Источник, значение и контроль микробных аэрозолей в помещениях: аспекты здоровья человека. Представитель общественного здравоохранения, 1983; 98 (3): 229–244. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
USACE. 2000. Руководство по проектированию и эксплуатации систем отопления, вентиляции и кондиционирования воздуха в зонах изоляции заболеваний. Центр укрепления здоровья и профилактической медицины армии США.Отчет № TG252.
фон Реклингхаузен М. Ультрафиолетовые лучи и их применение для стерилизации воды. Институт Дж. Франклина. 1914; 1057–1062: 681–704. DOI: 10.1016 / S0016-0032 (14)-7. [CrossRef] [Google Scholar]
Уолтер К.В. Вентиляция и кондиционирование как бактериологическая инженерия. Анестезиология. 1969; 31: 186–192. DOI: 10.1097 / 00000542-1960-00012. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Уорд М. Эксперименты по действию света на Bacillus anthracis .Proc Roy Soc Lond. 1892; 52: 393–403. DOI: 10.1098 / rspl.1892.0086. [CrossRef] [Google Scholar]
Уэллс У., Уэллс М. Инфекция, передаваемая воздухом. ДЖАМА. 1936; 107: 1698–1703. [Google Scholar]
Wells WF. Воздушные инфекции. Mod Hosp. 1938; 51: 66–69. [Google Scholar]
Wells WF. Бактерицидное облучение воздуха, физические факторы. J Franklin Inst. 1940; 229: 347–372. DOI: 10.1016 / S0016-0032 (40)
-0. [CrossRef] [Google Scholar]
Wells WF., Wells MW., Wilder TS. Экологический контроль эпидемического заражения; I — Эпидемиологическое исследование лучистой дезинфекции воздуха в дневных школах.Am J Hyg. 1942; 35: 97–121. [Google Scholar]
Wells WF. Обеззараживание воздуха в дневных школах. Am J Pub Health. 1943; 33: 1436–1443. DOI: 10.2105 / AJPH.33.12.1436. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Wells WF., Holla WA. Вентиляция при кори и ветрянке по месту жительства. Отчет о ходе работ с 1 января 1946 г. по 15 июня 1949 г., исследование инфекций, передающихся воздушно-капельным путем. J Am Med Assoc. 1950; 142: 1337–1344. [PubMed] [Google Scholar]
Wheeler SM., Ingraham HS., Hollaender A., Лилль Н.Д., Гершон-Коэн Дж., Браун Е.В. Ультрафиолетовый контроль над инфекциями, передающимися по воздуху, в военно-морском учебном центре. Am J Pub Health. 1945; 35: 457–468. DOI: 10.2105 / AJPH.35.5.457. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Whitby G., Scheible O. История ультрафиолетового излучения и сточных вод. Новости IUVA. 2004. 6 (3): 15–26. [Google Scholar]
ВОЗ. 1999. Руководство по профилактике туберкулеза в медицинских учреждениях в условиях ограниченных ресурсов. Женева: Всемирная организация здравоохранения.Отчет № ВОЗ / CDS / TB / 99.269.
Уайт В. Бактериологические аспекты установок кондиционирования воздуха. J Hyg. 1968; 66: 567–584. DOI: 10.1017 / S002217240002831X. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
Видмарк Э. Uber den einfluss des lichtes auf die haut. Гигиея. 1889; 3: 1–23. [Google Scholar]
Видмарк Дж. Де l’influence de la lumiere sur la peau. Biol Foren Forhandl Verhandlungen Biolog Vereins. 1889; 1: 9–13: 131–134. [Google Scholar]
Zeterberg JM.Обзор респираторной вирусологии и распространения вирулентных и, возможно, антигенных вирусов через системы кондиционирования воздуха. Энн Аллергия. 1973; 31: 228–299. [PubMed] [Google Scholar]

Прошедшие события

МО Ассоциация администраторов домов престарелых

Кэти Вайр представит «Учимся вместе: решения проблем с падениями и НПА» в Ассоциации администраторов домов престарелых.

Узнать больше »

Конференция по безопасности в здравоохранении — выступите против сопротивления

ФОКУС КОНФЕРЕНЦИИ

Эта конференция будет посвящена темам профилактики инфекций и безопасности пациентов, включая, помимо прочего, устойчивость к противомикробным препаратам, рациональное использование антибиотиков, стерилизацию, дезинфекцию, сепсис, нежелательные хирургические явления, включая пожары, средства безопасности пациентов и PSO.Специальную сессию на тему «Выгорание персонала с помощью инструментов для повышения устойчивости» проведет Дж. Брайан Секстон, доктор философии, директор Центра безопасности пациентов Университета Дьюка. ЧЕТВЕРГ, 18 АВГУСТА 13:00 — 14:00 PSO: согласование защиты с обязательной отчетностью штата Кэти Вайр, JD, MBA,…

Узнать больше »

Медицинский факультет MU — 26-я ежегодная конференция по уходу за ослабленными пожилыми людьми

Присоединяйтесь к нам на 26-й Ежегодной конференции по уходу за ослабленными пожилыми людьми — главной конференции Среднего Запада, посвященной улучшению ухода за ослабленными пожилыми людьми.Это межпрофессиональное совещание способствует развитию ухода за пожилыми пациентами в клинических условиях, больницах, домах престарелых и в конце жизни. С 1991 года это ежегодное мероприятие предоставляет новейшую информацию по медицинскому менеджменту, междисциплинарному уходу и системным изменениям для врачей, медсестер, социальных работников, государственных инспекторов, администраторов домов престарелых, адвокатов, фармацевтов и других специалистов. Больше информации.

Узнать больше »

68-я ежегодная конвенция MHCA — 28-31 августа 2016 г.

Присоединяйтесь к нам на предстоящей 68-й ежегодной выставке и конгрессе! Мы рады представить вам еще один год самых востребованных и актуальных учебных занятий.Каждый день планируется предлагать различные виды обучения, чтобы удовлетворить потребности всего персонала, от сертифицированных помощников медсестры до владельца. У вас будет возможность заработать 21 час непрерывного обучения — предлагаемое расписание доступно для скачивания ниже. В этом году снова проводится на выставке Branson Convention…

Узнать больше »

Ежегодная конференция и выставка ASHRM 2016

Ежегодная конференция и выставка ASHRM 2016 в конференц-центре Orange County в Орландо, Флорида, 25-28 сентября, является ведущей образовательной конференцией по управлению рисками в сфере здравоохранения.Присоединяйтесь к нам на ASHRM 2016, чтобы улучшить свое образование в области управления рисками в сфере здравоохранения и связаться с другими менеджерами по рискам.

Узнать больше »

EMS WORLD EXPO — Программа для сотрудников службы безопасности EMS

Опять же, по многочисленным просьбам, программа для офицеров по безопасности EMS в этом году предлагает расширенное содержание в общей сложности четырех часов непрерывного обучения, связанного с безопасностью. Эксперты проведут обсуждение некоторых из ключевых проблем безопасности, с которыми сегодня сталкиваются агентства EMS, включая усталость поставщиков медицинских услуг, соблюдение контрольных списков, поведенческое здоровье и инфекционный контроль.После завершения программы участники получат сертификат о посещении, одобренный Национальным советом по безопасности EMS. Посещаемость включена в программу конференции. Когда: Четверг, 6 октября,…

Узнать больше »

94-я ежегодная выставка и конференция MHA

Конференция и выставка

Ежегодная выставка и выставка ассоциации больниц штата Миссури, на которой выступают признанные на национальном уровне докладчики, обеспечивает шесть часов прямого контакта с участниками конференции, что позволяет вам предлагать свои услуги руководителям здравоохранения по всему штату.94-я ежегодная выставка и конференция MHA 2–4 ноября 2016 г. | Тан-Тар-А Резорт | Осейдж Бич, Пн

Узнать больше »

Форум по безопасности пациентов

50 долларов США

ЗАРЕГИСТРИРУЙТЕСЬ ЗДЕСЬ Присоединяйтесь к нам в среду на форуме по безопасности пациентов CPS 14 марта 2018 г. в Сент-Луисе, штат Миссури (открыт для всех типов поставщиков медицинских услуг), организованном Medtronic. Клиническая цель форума — просвещение и улучшение реакции медицинских работников на пациентов с респираторной недостаточностью. Информационная брошюра Форума по безопасности пациентов РЕГИСТРАЦИЯ Дата: 14 марта 2018 г. Время: 7: 30-4: 30 Расположение: The Lodge Des Peres, 1050 Des Peres Road, Des Peres, MO 63131 (всего в 15 минутах от улицы St.Louis Lambert International Airport)…

Узнать больше »

Учебный лагерь по безопасности пациентов DHHS штата Небраска (только для агентств скорой помощи Небраски)

Министерство здравоохранения и социальных служб Небраски проводит учебный лагерь 2 июня 2018 г. (только для агентств EMS Небраски) Регистрация начинается в 7:30 утра, а мероприятие начнется в 8:00. О БОТОВЫЙ ЛАГЕРЬ Учебный лагерь CPS по безопасности пациентов — это единственный в своем роде семинар, который знакомит посетителей с основами и теориями безопасности пациентов.Инструкторы помогут участникам переоценить свою программу обеспечения безопасности пациентов, что завершится разъяснением следующих шагов. практический 8-часовой семинар, проводимый двумя пациентами по безопасности…

Узнать больше »

Получение изображений с помощью пластин PSP

Автор:

Доктор.Минди Кэш

Протокол для получения изображений вне радиологической клиники с использованием пластин PSP (фотостимулируемый люминофор), включая процедуры инфекционного контроля

На кафедре клиники

Введите «Запрос изображения» в аксиоме для предписанных рентгенограмм. Этот шаг требуется только в том случае, если студенты 3 ^{-го года обучения} и не завершили свой первый сеанс радиологии, и, следовательно, им требуется ассистент стоматолога для получения изображений.Клинический инструктор смахнет их одобрение. Независимо от того, заполнен ли запрос изображения или нет, код процедуры для запланированных изображений должен быть «добавлен в диаграмму» в axiUm. Это может быть код, который запускает выставление счета пациенту (например, 02111 Periapical 1 Film), или код для изображения, которое является частью лечения (например, 02111E). Если MiPacs открыт, закройте его.

В диспансере

Обменять бирку (и) на необходимое оборудование; пластины PSP в мешках и барьерной упаковке необходимого размера, устройства для позиционирования, прикусные лапки.

В кресле для визуализации

Этапы получения изображений (до надевания перчаток)

Подготовьте комнату с барьерами в соответствии с требованиями клиники.
Посадите пациента для рентгенограмм.
Поместите две чистые белые крышки для лотков на стойку внутри операционной.
Поместите чистую чашку для зубного протеза рядом с Scan and Go.
Разложите две белые одежды на прилавке перед операционным. Один получит открытые грязные пластины для визуализации, а другой должен содержаться в чистоте.
Откройте пакет с пластинами PSP с защитной пленкой и пролейте их на одну из крышек лотка. (Не касайтесь завернутых пластин PSP руками без перчаток).
Откройте пакет с позиционирующими устройствами и высыпьте его содержимое на вторую белую крышку лотка. (Не прикасайтесь к устройствам позиционирования руками без перчаток).
Включите рентгеновский аппарат, убедившись, что значения кВп и мА правильные.
Снимите бумажный нагрудник пациента, если он носит, и наденьте свинцовый фартук и воротник для щитовидной железы.
Вымойте руки, наденьте перчатки и маску.

В перчатках:

Войдите в систему axiUm, выберите пациента из Rolodex.
Выберите значок MiPacs в электронной карте здоровья пациента. Дважды проверьте вверху экрана, что выбран правильный пациент.
Выберите шаблон для импорта изображений. Это можно сделать, щелкнув стрелку вниз справа от описания шаблона и выбрав нужный шаблон.Часто проще и понятнее выбрать шаблон FMS 20, даже если многие пробелы будут оставлены пустыми.
Выберите значок «Показать шаблон», расположенный слева от описания шаблона в строке меню.
Выберите подключаемый модуль Stella AG. Он находится справа от описания шаблона и выглядит как черный квадрат с проводом, выступающим снизу.
- Чрезвычайно важно, чтобы плагин запускался только с помощью значка. Если он запускается с помощью раскрывающегося меню «Инструменты», изображения будут черными (не диагностика).Если значок отсутствует на панели инструментов, немедленно обратитесь в IITS.
Постучите по каждой пластине Scan and Go и поместите в чашку протеза.
После того, как все пластины будут промаркированы программой Scan and Go, перенесите чашку протеза на стойку за пределами операционной и разлейте пластины на ткань. Разделите их на две стопки в зависимости от размера.
Соберите устройства позиционирования.
Поместите пластину PSP в соответствующее устройство так, чтобы точка была в слоте.Убедитесь, что активная сторона пластины обращена к рентгеновской трубке.
Убедитесь, что правильное положение изображения в шаблоне выделено красным, указывая, где изображение будет вставлено после экспонирования. Если это не так, выберите еще раз, щелкнув мышью.
Поместите пластину PSP / устройство позиционирования в ротовую полость пациента.
Выйдите из операционной, отрегулируйте время экспозиции в соответствии с установленной таблицей и нажмите и удерживайте кнопку, чтобы экспонировать изображение.
Поместите открытый PSP активной стороной вниз на вторую белую ткань вне помещения (для предотвращения чрезмерного воздействия света).
Завершите экспозицию всех изображений, выполнив те же процедуры.

Пластины PSP упали:

Если вы уронили датчик изображения, возьмите его руками в перчатках, продезинфицируйте барьер и сотрите его в сканере, прежде чем вернуть его в диспансер для замены. Не пинайте датчик и не ходите по нему.

Шаг стирания выполняется для удаления метки, поскольку пластины уже были помечены при сканировании и отправке.

На стойке за пределами кабинета

Дезинфицирующие пластины PSP, завернутые в барьер

Протрите каждую пластину PSP, обернутую барьером, тканью, смоченной одной частью 5,25% гипохлорита натрия, разбавленного десятью частями воды, и поместите на вторую чистую ткань.

Снять перчатки

Снимите перчатки и осторожно перенесите просушенные на воздухе пластины в чашку протеза.Накройте пустым стерилизационным пакетом, чтобы избежать чрезмерного воздействия окружающего света.
Снимите свинцовый фартук / воротник для щитовидной железы с пациента.
Перенесите очищенные пластины PSP, завернутые в барьерную пленку, в чашке протеза на станцию сканирования.

На станции сканирования

Обработка пластин ПСП

Напишите свое имя на предоставленном конверте (ах).
Откройте перегородку с одной пластины PSP так, чтобы один конец пластины выступал наружу.Убедитесь, что во время сканирования вы снимаете барьер только с одной пластины за раз во время обработки, чтобы предотвратить чрезмерное воздействие света.
Вставьте открытую пластину в сканер.
Утилизировать барьер.
Пластина PSP сканируется, стирается и выбрасывается в блюдо.
Осторожно возьмите выдвинутые пластины PSP за край и поместите в помеченные конверты.
- Таблички ПСП рассортировать по размеру в отдельные конверты; Размер №1 в одном конверте, а Размер №2 в другом.

В кабинете визуализации

Вернитесь к оператору визуализации, чтобы подтвердить снимок. Наденьте новые перчатки.
Изображения должны появиться в подключаемом модуле Stella AG.
Закройте плагин. Изображения будут перенесены в файл MiPacs.
Сохраните изображения и закройте MiPac: Вы можете щелкнуть значок «Сохранить» или просто закрыть MiPac, щелкнув X, и вам будет предложено сохранить все изображения.Студенты не могут одобрять изображения. Если откроется диалоговое окно с запросом имени пользователя и пароля для утверждения изображений, выберите «Отмена» или «Не утверждать».
Выйти из axiUm.

Очистите камеру визуализации

Утилизируйте все пленочные барьеры, поверхностные барьеры и крышки лотков. Снимите свинцовый фартук / воротник для щитовидной железы. Протрите все поверхности для дезинфекции, как того требует протокол инфекционного контроля в клинике.
Направьте пациента обратно в клиническое кресло.Перенесите использованные инструменты, собранные под крышкой лотка, обратно в кресло в клинике, где они останутся готовыми к переносу в кресло для визуализации в случае, если потребуется повторная съемка или потребуется дополнительная визуализация.
Верните конверт (и) со стертыми пластинами PSP в диспансер и получите бирку (и).

У кафедры:

Шаги по просмотру и утверждению изображений

Убедитесь, что axiUm открыт с правильным выбранным пациентом.Откройте MiPacs. Выберите новую серию для просмотра из списка в левой части экрана. Это должна быть серия с красным треугольником.
Смонтируйте изображения из области переполнения в шаблоне в правильных положениях, сделав все необходимые повороты для исправления ориентации изображения с помощью значка «Повернуть на 90 градусов по часовой стрелке», расположенного слева от строки меню.
Если изображения помещаются в шаблон FMS 20, анатомическая информация будет автоматически присвоена изображению, в зависимости от того, где она вставлена в шаблон.
- Если изображения помещаются в общий шаблон (например, PA1, PA3), вам нужно будет пометить каждое изображение с анатомическим положением. Если вы не выполните этот шаг, появится сообщение об ошибке, когда вы попытаетесь сохранить серию и утвердить серию.

Чтобы пометить анатомическую информацию каждого изображения в общем шаблоне:

Выделите каждое изображение по отдельности, а затем выберите соответствующее описание зубов из раскрывающегося списка, который находится в списке анатомической информации в левой части экрана.Продолжайте, пока все изображения не будут помечены.
Самостоятельно оцените изображения, а затем просмотрите их со своим клиническим инструктором.
- Запрещается вносить изменения в изображения (например, плотность или контрастность) в неутвержденном состоянии. Любые внесенные изменения следует отменить с помощью значка «Отменить все», пока все изображения выбраны.

При необходимости пересдачи:

Запрос на повторную визуализацию завершен и одобрен инструктором в axiUm. MiPac должны быть снова закрыты с серией в неутвержденном состоянии.
Пройдите в диспансер и возьмите новую упаковку пластин PSP, обернутых соответствующей защитной пленкой.
Вернитесь с пациентом в кресло для визуализации и выполните шаги, описанные выше. Исправленные изображения добавляются к исходной серии.

Внесение изменений в последовательный монтаж в MiPac

Серия должна быть правильно установлена до утверждения.
- Неутвержденные изображения можно перетаскивать в разные места в шаблоне.
- Вращения можно выполнять по мере необходимости, чтобы отразить правильное анатомическое положение, используя значок «Повернуть на 90 градусов по часовой стрелке».
- Любые повторные снимки, которые не являются диагностически полезными, должны быть извлечены из шаблона и перетащены в область переполнения внизу.
- Если вы сделали больше изображений, чем помещается в исходном шаблоне, или хотите включить исходную повторную съемку с исправленным видом, повторно смонтируйте серию.Для этого выберите новый подходящий шаблон и выберите «Перемонтировать текущую серию».

Это приведет к тому, что все изображения переместятся в область переполнения. Снова установите изображения в новый шаблон в соответствующих положениях и ориентации.

После подтверждения соответствия изображений и правильного монтажа выберите все изображения, чтобы убедиться, что никаких изменений (например, плотности или контрастности) не было сделано намеренно или случайно, и щелкните значок «Отменить все».Затем клинический инструктор может утвердить серию.
Код запланированной процедуры считывается как завершенный в axiUm.
Перед окончанием сеанса введите рентгенографическую интерпретацию изображений в ежедневную запись электронной карты здоровья как часть записи о лечении для этого визита.

Автор хотел бы выразить признательность доктору Карен Айкен и госпоже Андреа Уэлш за значительный вклад в подготовку статьи.

Кроме того, особая благодарность Тревору Тхангу и Митчеллу Голоски за их помощь во время создания DPES.

Статья проверена

Доктор Росс Барлоу и миссис Андреа Уэлш

Институт ECRI заявляет, что диагностические ошибки являются главной проблемой для безопасности пациентов

Институт ECRI (бывший Научно-исследовательский институт неотложной помощи) объявил диагностические ошибки главной проблемой в своем отчете «10 главных проблем безопасности пациентов для организаций здравоохранения за 2018 год». Институт ECRI — это независимая некоммерческая организация, которая занимается применением научных исследований, чтобы определить, какие медицинские процессы, устройства, процедуры и лекарства являются лучшими, а также улучшить уход за пациентами.Институт ECRI обслуживает 5000 членов и клиентов, включая больницы, системы здравоохранения, государственных и частных плательщиков, федеральные и государственные учреждения США, клиники, пациентов, политиков и министерства здравоохранения.

На прошлой неделе на встрече в Плимуте был оглашен список проблем, связанных с безопасностью пациентов

Института ECRI за 2018 год. Список выглядит следующим образом:

Ошибки диагностики
Безопасность опиоидов на всем протяжении лечения
Координация ухода в учреждении
Обходные пути
Включение медицинских ИТ в программы безопасности пациентов
Управление поведенческим здоровьем в отделениях неотложной помощи
Готовность к чрезвычайным ситуациям при любых опасностях
Очистка, дезинфекция и стерилизация устройств
Вовлеченность пациентов и санитарная грамотность
Лидерство в обеспечении безопасности пациентов

В списке указаны основные проблемы, которые возникли в запросах членов Института ECRI, анализе их первопричин и нежелательных явлениях, представленных в их Организацию по безопасности пациентов (PSO).PSO Института ECRI получил 2 миллиона отчетов о событиях и проверил сотни анализов первопричин с 2009 года.

Рассматривая свои основные проблемы, связанные с диагностическими ошибками, Институт ECRI заявил: «Согласно опубликованным исследованиям, ежегодно примерно 1 из 20 взрослых испытывает диагностическую ошибку. Эти ошибки и задержки могут привести к перебоям в оказании помощи, повторному тестированию, ненужным процедурам и причинению вреда пациенту ». Гейл М. Хорват, MSN, RN, CNOR, CRCST, аналитик по безопасности пациентов в Институте ECRI, продолжила:« Диагностические ошибки не только распространены, но могут иметь серьезные последствия.Многие смертельные случаи в больницах, которые были приписаны нормальному течению болезни, могли быть результатом диагностической ошибки ».

Диагностическая поддержка

Рекомендации Института ECRI включают использование структурированных инструментов и алгоритмов для преодоления когнитивных предубеждений, приводящих к ошибкам. Организации могут собирать данные при возникновении ошибок или возможных сбоев, которые затем могут использовать для извлечения уроков из ошибок. Хорват также упомянул, что вмешательства в поддержку принятия клинических решений могут выявить случайные находки, требующие последующего наблюдения, а также выявить тесты, которые не были проведены.

Общество по улучшению диагностики в медицине (SIDM) стимулирует изменения посредством медицинского образования, повышения качества и инициатив по вовлечению пациентов в улучшение диагностики и уменьшение диагностических ошибок. Их генеральный директор Пол Эпнер сказал о пресс-релизе ECRI: «SIDM приветствует Институт ECRI за то, что он привлек внимание к проблеме диагностических ошибок и отметил, что это как когнитивная, так и системная проблема. Мы присоединяемся к ним и призываем медицинские организации измерять, сообщать и разрабатывать инициативы по улучшению диагностического процесса.”

Будущее диагностики

Хорошо известно, что до недавнего времени диагностическим ошибкам уделялось мало внимания в области безопасности пациентов, однако за последние четыре года были достигнуты большие успехи. Диагностическая ошибка и вовлечение пациента ранее рассматривались как проблема, ориентированная на врача, но в последние годы данные показали, что диагностическая ошибка влияет на всех нас и несет ответственность за них, независимо от того, являемся ли мы врачом, медсестрой, администратором, пациентом, родственником, фармацевтом или другой член медицинской бригады.Мы все работаем в партнерстве, при этом в центре принятия решения находится пациент, чтобы поставить правильный диагноз и разработать план действий для управления их часто сложными медицинскими потребностями. Благодаря этим знаниям и сосредоточению внимания на диагностических ошибках стало больше инструментов цифрового здравоохранения, помогающих как пациентам, так и поставщикам медицинских услуг. Они могут исследовать симптомы или клинические особенности, находить точную подтвержденную информацию об условиях и совместно взаимодействовать друг с другом, чтобы прийти к заключению.Isabel Healthcare активно участвует в этой работе команды, предоставляя медицинским работникам инструмент поддержки принятия клинических решений, который называется Isabel DDx Generator и Isabel Symptom Checker для пациентов.