Таблица 4

Логарифм уничтожения отбеливателя после воздействия изолятов в течение указанного времени концентрации, Бахир Дар, Эгиопия, 2013 г.

Обсуждение

Мы подтвердили, что pH и эффективность или способность логарифмического восстановления увеличивались с увеличением концентрации хлора. Похоже, что это противоречит тому, что утверждается в литературе о pH и эффективности отбеливателя. Когда pH находится между 2-7, равновесие благоприятствует HOCl.Когда pH падает ниже 2, основной формой является Cl2. При pH 7,4 HOCl и OCl ^– примерно равны, а по мере того, как pH превышает 7,4, увеличивается доля OCl ^– [12]. Максимальная дезинфицирующая эффективность достигается при pH 4–5, поскольку практически весь хлор присутствует в виде HOCl, который на два порядка более эффективен, чем OCl ^– [3, 7, 12]. Газообразный хлор довольно токсичен, поэтому следует избегать pH ниже 4. В целом, для безопасности и эффективности лучше всего подходит pH 5-7 [12].Щелочные гермициды имеют pH 8-14. Чем выше pH, тем лучше очищающие и уменьшающие свойства бактерицид. Однако очистители / бактерициды с pH выше 10 могут быть вредными для отделки пола [10]. Другая литература заявляет нам аналогичный диапазон pH. Коммерческий бытовой жидкий отбеливатель составляет от 5 до 10% гипохлорита натрия и имеет pH от 11 до 12. Гипохлорит натрия токсичен из-за части гипохлорита, которая образуется при растворении гипохлорита натрия в воде в щелочных условиях [13].

Исследования, проведенные в разных странах, показали разные результаты эффективности отбеливателя против туберкулеза. Более высокие концентрации, 1% (10 000 частей на миллион) хлора, необходимы для уничтожения M. tuberculosis за 1 минуту [9]. Однако более низкие концентрации хлора, такие как 0,0006–0,01%, оказались менее эффективными в отношении Mycobacterium. Более того, эффективность гипохлорита натрия несколько снижалась в присутствии мокроты [14]. Его концентрация также варьируется в зависимости от времени и используемых образцов [6]. M. tuberculosis в мокроте был успешно стерилизован путем добавления равных объемов 15% отбеливателя в течение одной минуты, 6% в течение пяти минут или 3% в течение 20 минут [15]. Исследования показали, что концентрация отбеливателя и время, затрачиваемое на обеззараживание разлива биологической опасности, варьировались от 0,05% до 0,5% в течение 15-20 минут [16, 17]. Аналогичным образом, сильное загрязнение и BSC могут быть загрязнены на 0,2% и 1% в течение 15 минут [17]. Исследование, проведенное Ascenzi JM и др. В 1987 году, было направлено на определение более точного метода (1:10 объем суспензии штамма и дезинфицирующее средство) для измерения туберкулоцидной активности дезинфицирующих средств.Выделение M. bovis после 2 и 5 минут воздействия 0,05% отбеливателем составило 43 и 0 КОЕ / мл соответственно, что указывает на то, что увеличение времени при одинаковой концентрации гипохлорита оказывает туберкулоцидное действие. Однако результаты, полученные на этом организме, нельзя считать актуальными при работе с медленнорастущими микобактериями [18]. Из-за различий в методологиях, типах дезинфицирующих средств и различиях в стандартах времени для подтверждения эффективности наше исследование трудно сравнивать с другими исследованиями.В Эфиопии наиболее рекомендуемые временные рамки — 10 минут, 15 минут, 20 минут, 30 минут и 60 минут [6]. Другие возможные причины несоответствия были связаны с различием в приготовлении соотношения тестовой суспензии и дезинфицирующего средства, в нашем случае использовалось равное количество тестовых посевов и дезинфицирующего средства, что является обычной практикой в ​​туберкулезной лаборатории для обеззараживания жидких отходов, таких как мокрота. Другое различие заключалось в типе используемых изолятов: для этого исследования мы использовали изоляты MTBC, но другие использовали неинфекционные изоляты M.tuberculosis (h47Rv) и M. bovis . В этом исследовании не наблюдается различий в туберкулоцидной активности отбеливателя в отношении резистентных и чувствительных штаммов MTBC. Бактериальная устойчивость к антибактериальным средствам является либо естественным свойством организма (внутренним), либо приобретенным. Однако на сегодняшний день резистентность микобактерий к биоцидам, опосредованная плазмидами или транспозонами, не продемонстрирована [7]. Использование дезинфицирующего средства в медицинском учреждении обязательно для предотвращения внутрибольничной инфекции.Документально подтверждено распространение туберкулеза при использовании неправильно продезинфицированных бронхоскопов и эндоскопов [1, 9]. В общей сложности 80% случаев лабораторного туберкулеза возникли без очевидной причины, и было высказано предположение, что использование неэффективных химических дезинфицирующих средств может быть причиной некоторых из этих случаев лабораторных инфекций [9].

Заключение

Исследование показало, что 0,1% отбеливатель в течение 15 минут и 0,5% отбеливатель в течение 10 минут был туберкулоцидным при отсутствии какой-либо органической нагрузки.Однако для дезактивации образца, содержащего туберкулез, требовалась более высокая концентрация отбеливателя (т.е. 0,5 в течение 15 минут, 1% в течение 10 минут). Более того, это исследование подтвердило отсутствие разницы между отбеливателем и дезинфицирующим средством в восприимчивости к чувствительным и резистентным пятнам MTBC. В настоящее время национальные и региональные лаборатории микобктериологии Эфиопии используют 2% -ный отбеливатель в течение 60 минут для обеззараживания оставшихся образцов мокроты перед их сдачей на сжигание. Согласно этому открытию, эта практика — чрезмерное использование отбеливателя.Желательно использовать отбеливатель правильной и подходящей концентрации. Нет никакой дополнительной пользы от разбавления, превышающего рекомендованное. Это будет только дороже, так как вы будете покупать больше химикатов. Более того, использование высококонцентрированного отбеливателя опасно для здоровья. Комитеты по инфекционному контролю в медицинских учреждениях, состоящие из врачей, медсестер и / или лиц, принимающих решения, несут ответственность за принятие и утверждение эффективного времени концентрации отбеливателя, дезинфицирующих средств и методов очистки, которые будут использоваться для каждого компонента их медицинских учреждений.

Благодарности

Мы выражаем нашу глубокую признательность Региональному научно-исследовательскому лабораторному центру здравоохранения Бахир-Дар и Национальному региональному бюро здравоохранения штата Амхара за основной процесс исследования.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют об отсутствии конкурирующих интересов.

Вклад авторов

DM участвовал в разработке, участвовал в лабораторных процедурах, проведении исследования и составил рукопись. AA выполнил лабораторные работы и критически отредактировал рукопись.BW и FB критически отредактировали рукопись. Все авторы прочитали и одобрили окончательный вариант рукописи.

Ссылки

Руководство по тестированию химических дезинфицирующих средств на их вирулицидную активность в области медицины

Приложение A

Информация для проведения тестов на инфекционность

Инфекционность суспензий и их разведений может быть определенным в планшетах как микроанализ. Для определения титра можно применять метод разведения конечной точки (TCID ₅₀ ) (микро- и макроанализ) или анализ бляшек (микроанализ).

Микроанализ в планшетах

Пример: Добавьте 0,05–0,15 мл соответствующего разведения образца на лунку 96-луночного планшета для культивирования клеток (от 6 до 8 лунок на уровень разведения). Разведения образцов можно наносить на прилипшие клетки или добавлять к 0,05–0,15 мл клеточной суспензии. Если используются прилипшие культуры клеток, культуральную среду заменяют по истечении времени абсорбции 1-2 часа. Культуры клеток инкубируют при 37 ° C (обычно в течение 5–15 дней), а затем оценивают цитопатические эффекты под инверсным световым микроскопом.Инфекционность образцов рассчитывается как TCID ₅₀ / мл.

Приложение B

Контрольные значения коэффициентов восстановления с использованием нескольких контрольных веществ и вирусов (таблица B.1).

Приложение C

Определение химических веществ

a) Количественное определение формальдегида

Концентрации формальдегида в растворах формальдегида, доступных на рынке, обычно различаются и могут также зависят от условий хранения.Таким образом, важно провести количественное определение концентрации формальдегида или его разбавления, используемого в контрольном тесте. Следует учитывать, что растворы формальдегида, приготовленные из концентрированных растворов формальдегида (например, формалина), содержат полимеры и проявляют максимальную эффективность через несколько дней при комнатной температуре.

Количественное определение формальдегида, например, с помощью хлорида гидроксиламмония:

Принцип метода следующий:

Формальдегид реагирует с хлоридом гидроксиламмония с образованием соответствующего оксима.{-} + \ mathrm {H} _ {2} \ mathrm {O} $$

Значение pH титруется гидроксидом натрия до его прежнего значения. Количество использованного гидроксида натрия указывает на концентрацию образца.

Проведение определения:

Аликвоту исследуемой пробы, содержащую от 100 до 150 мг формальдегида, с помощью пипетки переносят в контейнер, подходящий для титрования на pH-метре, и добавляют дистиллированную воду примерно к 1 массе. 100 мл. Раствор калибруется на pH-метре точно до pH 3.0 с прибл. 0,5 н. Соляная кислота. 25 мл прибл. Добавляют 0,5 н. Раствор гидроксиламмонийхлорида, pH которого предварительно откалиброван до 3,0, и смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 10 мин. Затем раствор снова титруют до pH 3,0 0,5 н. Гидроксидом натрия на pH-метре.

Расчет концентрации формальдегида в образце:

$$ \ frac {\ begin {array} {c} \ text {Потребляемое количество 0,5} \, \ text {N NaOH} \\ \ text {в мл} \ times 30.03 \ end {array}} {\ text {Объем образца в мл} \ times 20} = \ text {концентрация формальдегида в образце на грамм в} 100 \, \ mathrm {ml}.$$

б) Титрование ПАК

Перуксусные кислоты — это равновесные системы, состоящие из следующих компонентов:

Перуксусная кислота, пероксид водорода, уксусная кислота и вода.

Перуксусная кислота хранится при 4 ° C.

Исходный раствор перуксусной кислоты готовят с использованием раствора перуксусной кислоты с концентрацией приблизительно 40%. Срок годности основного раствора составляет не более одного дня при температуре 4 ° C.

Таким образом, определение концентрации PAA титрованием выполняется максимум за день до теста.

Вещества :

• Перуксусная кислота

• ортофосфорная кислота 85% р. А. марка

• Калий йодид р. А. сорт.

• 1% раствор крахмала — крахмал стр. А. марка

• Гептамолибдат-тетрагидрат аммония р. Марка A.

• 0,1н. Раствор тиосульфата натрия

• Бидест. вода, ледяные хлопья

Приготовление раствора крахмала:

1 г крахмала разводят в 100 мл воды, доводят до кипения и дают остыть.

(срок хранения не более 4 недель).

При титровании обязательно разбавьте по крайней мере 100 мл ледяной воды. При недостаточном разбавлении перекись водорода вступает в реакцию с йодом уже в холодных условиях.

Процедура :

1. 1.

   Определение концентрации ПАК

10 мл 5% ортофосфорной кислоты и прибл. 0,5 г йодида калия добавляют к 100 мл ледяной воды и хорошо перемешивают, затем добавляют 3–4 капли раствора крахмала.

После добавления исходного раствора ^{Footnote 10} образец немедленно и быстро титруют раствором тиосульфата натрия при перемешивании до исчезновения синего цвета. Первоначальное исчезновение цвета имеет решающее значение; через короткое время раствор снова становится синим, поскольку H ₂ O ₂ начинает реагировать с иодидом.

Расчет :

$$ \ frac {\ mathrm {ml} 0.1 \, \ mathrm {N} \ mathrm {Na} _ {2} \ mathrm {S} _ {2} \ mathrm {O} _ {3} \ times 3.803} {10 \ times \ text {ml sample}} = \% \ text {перуксусная кислота} $$

Израсходованное количество раствора тиосульфата натрия концентрация перуксусной кислоты 1 мл 0,1 н. Раствор тиосульфата натрия 3,803 мг перуксусной кислоты.

1. 2.

   Определение концентрации перекиси водорода

Добавляют кончик шпателя гептамолибдата аммония и раствор нагревают до комнатной температуры, затем титруют раствором тиосульфата натрия до видимого обесцвечивания.

Расчет :

$$ \ frac {\ mathrm {ml} 0.1 \, \ mathrm {N} \ mathrm {Na} _ {2} \ mathrm {S} _ {2} \ mathrm {O} _ {3} \ times 1.701} {10 \ times \ text {ml sample}} = \% \ mathrm {H} _ {2} \ mathrm {O} _ {2} $$

Израсходованное количество раствора тиосульфата натрия≙ концентрация H ₂ O ₂ .

1 мл 0,1 н. Раствора тиосульфата натрия 1,701 мг H ₂ O ₂ .

Приложение D

Подготовка воды стандартной жесткости (WSH)

Требуются два раствора:

Раствор A:

Растворение 19.84 г безводного хлорида магния (MgCl ₂ ) и 46,24 г безводного хлорида кальция (CaCl ₂ ) в бидистиллированной воде и доливают до 1000 мл (также могут использоваться эквивалентные количества водных солей). Стерилизуйте раствор в паровом стерилизаторе. Раствор можно хранить при 2–8 ° C до одного месяца.

Раствор B:

Растворите 35,02 г бикарбоната натрия (NaHCO ₃ ) в бидистиллированной воде и залейте до 1000 мл. Стерилизуйте раствор мембранной фильтрацией.Раствор можно хранить при температуре 2–8 ° C до одной недели.

Для приготовления 1 л воды стандартизированной жесткости не менее 600 мл стерильного бидеста. воду добавляют в стерилизованную мерную колбу на 1000 мл. Добавляют 6,0 мл раствора A и 8,0 мл раствора B, перемешивают и заполняют до 1000 мл. Раствор должен иметь pH 7,0 + 0,2. При необходимости pH калибруют с помощью 1 н. Гидроксида натрия (NaOH) или 1 н. Соляной кислоты (HCl). Вода стандартной жесткости должна быть свежеприготовленной в асептических условиях и использоваться в течение 12 часов.

Жесткость составляет 376 частей на миллион в расчете на содержание карбоната кальция.

Приложение E

Табличное и графическое отображение результатов испытаний

a) Пример табличного отображения результатов испытаний

(рис. E.1).

Пример табличного отображения результатов теста (Информация о цитотоксичности дезинфицирующего средства и о максимально обнаруживаемом снижении титра инфекционности). c.t. время контакта

б) Примеры графического изображения результатов испытаний

Приложение F

Информация по составлению экспертных заключений по тестам дезинфицирующего действия

• Кратко опишите, в какой области применения (например,грамм. дезинфекция рук, поверхностей, инструментов или белья) средство будет использоваться во введении. Особенно важно указать, при каких условиях агент будет использоваться и почему агент считается эффективным (например, цитируя литературные ссылки, где это уместно).

• Должны быть указаны все активные ингредиенты, заданные рабочие концентрации и идентификационные данные испытуемого образца.

• Дезинфицирующее средство должно быть точно описано: номер партии, дата производства, срок годности, физические свойства, цвет, значение pH (значение pH тестовых растворов в исследуемой пробе и в рабочем разведении с WSH должно быть задокументировано.Это не относится к спиртовым растворам с концентрацией> 60%).

• Должны быть описаны происхождение, подготовка и история пассажа тестового вируса, а также клеточной линии.

• Должны быть подробно описаны метод испытаний и прогоны испытаний. Ссылки на руководство недостаточно. В частности, подробно опишите приготовление и, при необходимости, метод концентрирования суспензии тестируемого вируса, а также метод тестирования и расчет концентрации (титра) вируса.Любое отклонение от этого руководства должно быть подробно описано и обосновано.

• Результаты всех тестов должны быть задокументированы в таблице как необработанные данные и как рассчитанные TCID ₅₀ или данные PFU, включая 95% доверительный интервал. Также следует указать метод расчета титра. Это можно сделать, например, используя метод Спирмена-Кербера [3, 4] или для LVP формулы, используя метод Тейлора или Пуассона [5, 6].Статистическая оценка и определение 95% доверительного интервала для коэффициента уменьшения (RF) должны быть рассчитаны в соответствии с указаниями, приведенными в пункте 8.

Приложение G

Меморандум об использовании фильтровальных колонок с молекулярными ситами в тестах на вирулицидную активность

(по состоянию на 18 мая 2013 г.).

Для подтверждения противовирусной активности дезинфицирующих средств во время тестов дезинфицирующих средств необходимо продемонстрировать снижение титра ≥4 log ₁₀ шагов после указанного времени контакта.Однако, поскольку некоторые дезинфицирующие средства проявляют сильную цитотоксичность, такое снижение титра не всегда может быть достигнуто. В таких случаях EN 14476 и директива DVV / RKI рекомендуют «детоксикацию» тестируемых растворов с помощью молекулярной фильтрации, например с использованием колонок Sephadex ™ LH 20. С помощью этого метода цитотоксичность, как правило, можно снизить на один log ₁₀ шаг в зависимости от активных веществ. В некоторых лабораториях также используются колонки для молекулярной фильтрации, чтобы остановить действие нецитотоксических дезинфицирующих средств, инактивирующих вирус.Опыт нескольких лабораторий показал, что инфекционные вирусы задерживаются в этих процессах молекулярной фильтрации непредсказуемым образом, что может привести к неверным результатам. Имитируется противовирусный эффект, которого на самом деле нет.

Этот эффект наблюдался для разных видов вирусов и при использовании дезинфицирующих средств, основанных на разных активных ингредиентах. В таблице G.1 показаны различные примеры с использованием и без использования колонок для молекулярной фильтрации: составы на основе QAV 1, 3 и 4 показали значительное удержание инфекционных вирусов в колонках, тогда как в продукте 2 на основе QAV такого эффекта не наблюдалось. .В прямых сравнительных исследованиях исследуемых растворов — фильтрованных и нефильтрованных — были измерены различия в титрах до 3 log ₁₀ шагов. Однако этот эффект удержания не возникает при параллельном титровании вирусного контроля. Эти наблюдаемые эффекты приводят к гипотезе о том, что критический фактор лежит в составе исследуемых растворов, состоящих из дезинфицирующего средства, вирусной суспензии и, где это применимо, белковой нагрузки.

Несколько экспертных отчетов и публикаций содержат тесты на эффективность дезинфицирующих средств, основанные исключительно на протоколах с использованием молекулярно-ситовой фильтрации.В отдельных случаях достоверно оценить точность этих данных сложно. Это тот случай, если отсутствуют контрольные измерения, которые доказали бы, что в столбцах не осталось остаточного вируса. Поэтому мы указываем, что для тестов эффективности дезинфицирующих средств, в которых требуемое снижение титра не может быть достигнуто без «детоксикации», все времена контакта должны измеряться как с фильтрацией через молекулярное сито, так и без нее. При этом можно определить какое-либо удержание вирусов в столбцах.При необходимости необходимо внести другие изменения в протокол теста (например, повысить титр вируса). Молекулярная фильтрация через сито не подходит для остановки противовирусных эффектов в нецитотоксических растворах, поскольку необходимое время для этой процедуры — особенно при коротком времени воздействия — делает результаты менее точными, чем серии разведений.

Приложение H

1. Примерный расчет титра вируса и коэффициент снижения согласно Спирману и Керберу

Расчет титра контрольного титрования первого прогона теста (T1):

Титр рассчитывается согласно числовым значениям, приведенным в таблице H.1 (см. Пункт 8.1):

$$ \ mathrm {m} = — 6 + 1 / 2-1 \ times 2,38 = 7,88 $$

С учетом применяемого тестового объема титр составляет 8,88 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл. {2} \ sum \ {\ mathrm {p} _ {\ mathrm {i}} (1- \ mathrm {p} _ {\ mathrm {i}}) / (16-1) \}} \)

Как p ₁ = 1, p ₂ = 0.75, p ₃ = 0,5 и p ₄ = 0,13 и n равно 16 во всех разведениях, поэтому

$$ \ mathrm {P} _ {1} (1- \ mathrm {p} _ {1 }) / (\ mathrm {n} _ {1} -1) = 0 $$

$$ \ mathrm {p} _ {2} (1- \ mathrm {p} _ {2}) / (\ mathrm {n} _ {2} -1) = 0,75 (1-0,75) / (16-1) = 0,0125 $$

$$ \ frac {\ mathrm {p} _ {3} \ left (1- \ mathrm {p} _ {3} \ right)} {\ mathrm {n} _ {3} -1} = \ frac {0.50 \ left (1-0.50 \ right)} {16-1} = 0,0167 $$

$$ \ frac {\ mathrm {p} _ {4} \ left (1- \ mathrm {p} _ {4} \ right)} {\ mathrm {n} _ {4} -1} = \ frac {0,13 \ left (1-0.13 \ right)} {16-1} = 0,0075 $$

$$ \ mathrm {s} _ {\ mathrm {m}} = \ sqrt {1 \ left (0,0125 + 0,0167 + 0,0075 \ right)} $$

$$ \ mathrm {s} _ {\ mathrm {m}} = 0,19, $$

$$ \ mathrm {i}. \ Mathrm {e}. 2 \, \ mathrm {s} _ {\ mathrm {m}} = 0.38 $$

$$ \ text {Результат:} \, \ mathrm {k} _ {\ mathrm {a}} = 0.38 $$

Таким образом, титр контрольного титрования составляет 8,88 ± 0,38 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл.

Если остаточный вирусный титр первого прогона теста (цифры не показаны) рассчитывается аналогично, результат для этого примера равен 3.{2}} = 0,50 $$

Таким образом, коэффициент уменьшения первого испытательного прогона составляет 5,38 ± 0,50 log ₁₀ .

Предполагается, что титры контрольного титрования вируса и титрования остаточного вируса во втором тестовом прогоне при аналогичных основных условиях составляют 8,25 ± 0,22 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл и 3,25 ± 0,34 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл, RF _T2 , включая 95% доверительный интервал, рассчитывается как 5,0 ± 0,40.

Среднее значение RF из обоих прогонов теста, включая 95% доверительный интервал, рассчитывается согласно (см.{2} \ right) / 2} = 0,45 $$

Следовательно, общий RF из обоих прогонов теста (включая 95% доверительный интервал) для данного примера составляет 5,19 ± 0,45 log ₁₀ .

Индивидуальные титрования соответствуют требованиям руководства в отношении точности, так как 95% доверительный интервал рассчитанных титров составляет ≤0,5 log ₁₀ .

2. Пример расчета для расчета титра и коэффициента восстановления с использованием метода посева большого объема (LVP) в соответствии с п. 8.3

Предполагая, что после воздействия дезинфицирующего средства обнаруживается только низкая инфекционность, что приводит к использованию LVP, есть два варианта расчета титра b, которые можно использовать для расчета коэффициента снижения, как описано в пункте 8.2.

1. a)

   Расчет по формуле Тейлора:

Если некоторые инфицированные культуры клеток обнаружены с использованием метода LVP, титр можно рассчитать по следующей формуле:

$$ \ mathrm {c} = \ frac {\ mathrm {D}} {\ mathrm {V} _ {\ mathrm {W}}} * \ left (- \ ln \ frac {n-n_p} {n} \ right) $$

c =:

Концентрация инфекционных вирусных частиц

D =:

разведение

V _w =:

объем на скважину

n =:

количество засеянных лунок

n _p =:

количество вирус-положительных лунок

Для примера расчета используются следующие значения:

• V _w = 0.1 мл

• n = 96

• n _p = 9

• D = 1000

Если эти значения ввести в формулу выше, результат будет 984 инфекционных частиц на мл . Один TCID ₅₀ эквивалентен 0,69 инфекционным вирусным частицам. Таким образом, в результате получается титр 984: 0,69 = 1426 TCID ₅₀ на мл. Значение, используемое для расчета коэффициента уменьшения, представляет собой десятичный логарифм этого титра, т.е.е. 3,15 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл.

1. b)

   Расчет по формуле Пуассона:

Если с помощью метода LVP не обнаружены инфицированные культуры клеток, количество инфекционных вирусных частиц (предел обнаружения 95%) определяется следующим образом:

$$ \ mathrm {c} = \ ln \ mathrm {p} / — \ mathrm {v} $$

Ключ:

p =:

— вероятность не обнаружить вирус; вероятность не обнаружения вируса не должна быть выше 5% ( p = 0.05). Таким образом, рассчитывается концентрация вируса в данном объеме образца, который может быть обнаружен с вероятностью 95%.

V =:

тестовый объем [мл]

В этом примере образец разбавлен до 1: 1000, из-за цитотоксичности, вносится в микропланшет (96 лунок, 0,1 мл / лунка).

Это приводит к следующему вычислению:

• p = 0,05, ln p = −2,99

• V = 96 × 0.1 мл; исследуемый объем составляет 9,6 мл.

В формулу подставлено значение ≤0,31 вирусных частиц / мл. С учетом разведения (0,31 × 1000) результат составляет 310 инфекционных вирусных частиц на мл. Поскольку один TCID ₅₀ эквивалентен 0,69 инфекционным вирусным частицам, результатом является титр 310: 0,69 = 445 TCID ₅₀ / мл, логарифм которого составляет ≤2,65 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл. Это значение является титром, используемым для расчета коэффициента уменьшения.

Для расчета коэффициента уменьшения и его 95% доверительного интервала мы предполагаем, что титр контрольного вируса, как показано в приведенном выше примере, составляет 8,88 ± 0,38 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл. 3,15 log ₁₀ TCID ₅₀ / мл был определен как остаточный титр вируса. Следовательно, коэффициент уменьшения составляет (8,88–3,15) 5,73 log ₁₀ .

Поскольку по прагматическим причинам титр остаточного вируса не имеет 95% доверительного интервала, результатом является коэффициент уменьшения 5.73 ± 0,38 лог ₁₀ .

Если при определении остаточного титра вируса инфекционность не обнаружена и титр рассчитывается по формуле Пуассона, результатом является коэффициент уменьшения (8,88–2,65) 6,23 log ₁₀ .

Поскольку по прагматическим причинам остаточный титр вируса не имеет 95% доверительного интервала, результатом является коэффициент уменьшения ≥6,23 ± 0,38 log ₁₀ . Здесь перед коэффициентом уменьшения стоит символ ≥, чтобы продемонстрировать, что остаточная инфекционность не была обнаружена, т.е.е. коэффициент уменьшения составляет, по крайней мере, это значение, но может быть и выше.

Инструменты и методы лабораторной дезактивации

Отслеживание количества лабораторных инфекций (LAI) в США — непростая задача. Не обо всех инцидентах сообщается, и иногда жертва может не знать об источнике инфекции. Несмотря на это, Бюро статистики труда США (BLS) действительно собирает доступную информацию об этих зарегистрированных воздействиях в лабораториях. Цифры уменьшались за последнее десятилетие, ¹ , но риски все еще происходят.

Можно заразиться патогеном, просто прикоснувшись к зараженным поверхностям в лаборатории без средств индивидуальной защиты (СИЗ). Согласно Институту клинических и лабораторных стандартов (CLSI), в лаборатории «телефоны, дверные ручки и ручки, компьютерные терминалы и другие поверхности считаются загрязненными». ² Одним из важных способов минимизировать риск воздействия на сотрудников лаборатории является использование передовых методов дезактивации.

Обеззараживание — это действие по минимизации общего присутствия патогенных микробов.Для лабораторий, которые обрабатывают стандартные образцы пациентов, это присутствие микробов может присутствовать в форме переносимых с кровью патогенов, бактерий, грибков и даже прионов. Цель процесса дезактивации — уменьшить количество этих загрязнителей, чтобы свести к минимуму возможность передачи или заражения.

Регулярная дезактивация

Регулярная дезинфекция лабораторных столешниц или рабочих зон должна происходить часто. Лабораторные столы следует мыть как минимум после каждой рабочей смены и после того, как произошла утечка.Этот рутинный процесс дезактивации также должен быть задокументирован. Также рекомендуется регулярно включать в процесс дезинфекции телефоны, компьютерные терминалы и другие часто обрабатываемые поверхности в лаборатории.

Обычно химические гермициды рекомендуются для обеззараживания поверхности в лабораторных условиях. Эти бактерициды классифицируются как дезинфицирующие средства высокого, среднего или низкого уровня в зависимости от их активности и силы действия. Наиболее часто рекомендуемым дезинфицирующим средством для лабораторных поверхностей является 10-процентный раствор гипохлорита натрия (или отбеливателя), который считается химическим бактерицидным средством средней силы.Дезинфекция промежуточного уровня уничтожает большинство бактерий (включая Mycobacterium tuberculosis) и все грибки, а также инактивирует вирусы.

должны использовать зарегистрированное EPA или одобренное дезинфицирующее средство. Производители перечисляют свои продукты в Агентстве по охране окружающей среды США (EPA), и агентство проверяет, что дезинфицирующее средство эффективно против распространенных патогенов и соответствует требованиям стандарта Управления по охране труда и здоровья (OSHA) по патогенам, передающимся через кровь.Эти требования включают способность продукта эффективно обеззараживать загрязненные поверхности и разливы. ³

Многие производители предлагают готовые чистящие средства с отбеливателем, но многие лаборатории по-прежнему делают свои собственные разведения из концентрированного отбеливателя. Это приемлемая практика, но свежие отбеливающие растворы следует готовить ежедневно, так как эффективность раствора быстро снижается. Также важно при приготовлении смесей учитывать концентрацию покупного отбеливателя.Традиционно лаборатории готовили раствор 1:10, так как большинство отбеливателей раньше продавалось с концентрацией 5,25%. Поскольку многие доступные коммерческие концентрации отбеливателя в настоящее время составляют 8,25 процента, лаборатории должны приготовить раствор 1:16 для дезинфекции, если они используют этот отбеливатель. Перед тем, как делать разведения, лаборанты должны проверять этикетку купленного отбеливателя. Гипохлорит натрия — это коррозионно-активный химикат, и даже в разбавленном виде он может со временем вызвать повреждение некоторых поверхностей.Чтобы предотвратить это, продезинфицированную поверхность следует промыть стерильной водой или 70-процентным этанолом (еще одно промежуточное химическое бактерицидное средство).

Некоторые особые случаи

При дезинфекции бокса биологической безопасности (BSC) можно использовать раствор отбеливателя. Наряду с дезинфекцией рабочей поверхности шкафа следует также очистить заднюю и боковые стенки, а также внутреннюю часть стеклянной створки. Опять же, полоскание водой или этанолом поможет предотвратить точечную коррозию поверхностей из нержавеющей стали BSC, которая может быть вызвана отбеливателем.Ультрафиолетовое освещение никогда не следует использовать для бактериальной дезинфекции внутри БББ. Хорошо известно, что эффективность обеззараживания УФ-светом блокируется пылью, тенями и интенсивностью света. ⁴ Существует также опасность воздействия ультрафиолетового света на пользователя BSC, которого следует избегать. Однако УФ-свет в BSC может быть эффективно использован для дезактивации ДНК в определенных процессах молекулярной лаборатории.

Использование формальдегида

В отделении анатомической патологии лаборатории формальдегид иногда используется в качестве дезинфицирующего средства.В зависимости от концентрации формальдегид может считаться дезинфицирующим средством высокого уровня. Химическое вещество, известный канцероген, помещается внутрь криостата, а пары, образующиеся от источника тепла, используются для обеззараживания внутренней части устройства. Однако эффективность дезинфекции неясна, а опасность использования канцерогена оценивает этот метод как менее чем удовлетворительный. Обратитесь к производителю криостата за инструкциями по очистке, но многие инструменты можно продезинфицировать с помощью 70-процентного спирта.

Работа с прионами

При дезинфекции особое внимание уделяется обращению с прионами. Прионы представляют собой аномально свернутые белки, которые вызывают заболевания, известные как трансмиссивные губчатые энцефалопатии (TSE). Наиболее известным TSE является болезнь Крейтцфельдта-Якоба (CJD), и лаборатории могут обрабатывать образцы от пациентов CJD. Прионы инактивируются нелегко, и тестирование проб в лаборатории следует проводить с использованием одноразового оборудования, где это возможно. Ткани, удаленные у пациентов с CJD, перед обработкой необходимо зафиксировать с помощью 95% муравьиной кислоты.Одноразовые инструменты, используемые с такими образцами, перед повторным использованием следует погрузить в 1 н. Гипохлорит натрия (NaOH) на один час. Поверхности, на которые были обработаны или пролиты образцы, также следует погрузить в NaOH на один час для дезинфекции.

Химическая концентрация

Хотя концентрация химикатов играет важную роль в эффективности против патогенов, последнее, что нужно учитывать при выборе всех лабораторных дезинфицирующих средств, — это время контакта с патогеном. Большинство дезинфицирующих средств не убивают микроорганизмы мгновенно при контакте; продукт необходимо оставить на загрязненной поверхности на определенное время, чтобы завершить свое действие.Все дезинфицирующие средства, зарегистрированные EPA, имеют указанное время контакта, указанное на этикетке. Например, дезинфицирующее средство для поверхностей может иметь время контакта или уничтожения вируса гепатита В от одной до трех минут; однако время его туберкулоцидного контакта может составлять десять минут. Обязательно ознакомьтесь с этикетками и ознакомьтесь с требованиями к времени контакта. Правильное использование этих продуктов — единственный способ обеспечить надлежащую дезинфекцию.

Опасное место…

Лаборатория представляет собой по своей сути опасное место, где повсеместно распространены патогены, передающиеся через кровь и воздух, и необходимо принимать специальные меры для защиты людей, работающих в отделении.Для предотвращения LAI всегда должны использоваться инженерные средства контроля, средства контроля рабочей практики и СИЗ. Обеззараживание поверхностей — еще один важный контроль, который необходимо использовать должным образом. Понимание правильных типов, концентраций и времени контакта подходящих лабораторных дезинфицирующих средств — это практика, которая уменьшит количество угрожающих патогенов и сделает лабораторию более безопасным местом для работы.

ССЫЛКИ

1. Бюро статистики труда Министерства труда США.Травмы, болезни и смертельные случаи. https://www.bls.gov/iif/.
2. CLSI. Безопасность клинических лабораторий; Утвержденное руководство — третье издание. Документ CLSI GP17-A3. Уэйн, Пенсильвания: Институт клинических и лабораторных стандартов; 2012.
3. Управление охраны труда и здоровья Министерства труда США. Токсичные и опасные вещества: болезнетворные микроорганизмы, передающиеся с кровью. https://www.osha.gov/pls/oshaweb/owadisp.show_document?p_table=standards&p_id=1005.
4. Министерство здравоохранения и социальных служб США, Служба общественного здравоохранения, Центры по контролю и профилактике заболеваний, Национальные институты здравоохранения. Биобезопасность в микробиологических и биомедицинских лабораториях (BMBL) . 5-е изд. Вашингтон, округ Колумбия: Министерство здравоохранения и социальных служб США; 2011.

Daniel J. Scungio, MT (ASCP), SLS, CQA (ASQ) , имеет более чем 25-летний опыт работы в качестве сертифицированного медицинского технолога. Он был менеджером лаборатории в течение 10 лет, прежде чем стал сотрудником по безопасности лабораторий в Sentara Healthcare, системе, состоящей из двенадцати больниц и более 20 лабораторий и центров рисования в Вирджинии и Северной Каролине.Как «Дэн, специалист по безопасности в лаборатории», он предоставляет консультации, обучение и тренинги в США и Канаде. Посетите страницу Дэна, работающего в лаборатории, в Facebook: www.facebook.com/danthelabsafetyman.

Руководство по биобезопасности — Стэнфордский университет, гигиена окружающей среды и безопасность

Общая процедура обеззараживания (Рисунок 4)

• Наденьте подходящие СИЗ
• Поместите впитывающий материал (бумажное полотенце, подгузник для скамьи) на загрязненную поверхность, затем добавьте жидкое дезинфицирующее средство; это предотвратит распространение заражения.
• После нанесения дезинфицирующего средства оставьте достаточно времени для контакта. Если время контакта слишком короткое, поверхность не будет тщательно продезинфицирована.
• При очистке пролитого концентрированного материала или если дезинфицирующее средство должно действовать на неровную поверхность, подождите дополнительное время, чтобы дезинфицирующее средство подействовало.
• Избегайте использования концентрированных или неразбавленных растворов дезинфицирующего средства для «ускорения» процесса дезактивации. На дезинфицируемую поверхность могут негативно повлиять сильнодействующие химические вещества.Это особенно важно при работе с отбеливателем, который является очень сильным коррозионным веществом. Некоторые дезинфицирующие средства оставляют после себя остатки химикатов.
• Промойте очищенную область дистиллированной водой, чтобы избежать неблагоприятного воздействия на ваш эксперимент. Это особенно важно в помещениях для культивирования тканей, где клеточная линия может быть уничтожена остатками дезинфицирующего средства, оставшимися на оборудовании.

Выбор дезинфицирующего средства

Выбор дезинфицирующего средства основан на нескольких факторах (рис. 5):

• Какой целевой организм вы хотите инактивировать?
• Каковы физические характеристики дезинфицируемой поверхности? (пористые поверхности могут впитывать дезинфицирующие средства; некоторые дезинфицирующие средства могут разъедать металлические поверхности).
• Как долго будет время контакта дезинфицирующего средства с целевым организмом? (высокие концентрации биологических организмов могут потребовать более длительного времени контакта).

Обратите внимание, что дезинфекция прионов и прионоподобных белков должна осуществляться в соответствии с особыми инструкциями.

Важно отметить, что «отбеливатель», очень распространенное и эффективное дезинфицирующее средство, нестабильно при разбавленных концентрациях; рабочих разведений гипохлорита натрия следует делать еженедельно из основного раствора.Рабочие растворы 10% -ного отбеливателя (разбавление бытового отбеливателя в воде 1:10) эффективны в большинстве ситуаций. Учтите, что неразбавленный отбеливатель не должен стекать в канализацию.

Дезинфицирующие средства на спиртовой основе также испаряются со временем, и их следует добавлять через определенные промежутки времени.

Следующий список дезинфицирующих средств, их эффективность, время контакта и рекомендуемые разведения являются общими рекомендациями — пожалуйста, следуйте рекомендациям конкретного производителя, если таковые имеются.

Четвертичные соединения аммония обычно используются в растворах для мытья полов.Соединения четвертичного аммония эффективны при инактивации большинства вегетативных бактерий, грибов и липидосодержащих вирусов. Соединения четвертичного аммония НЕ эффективны при использовании для дезинфекции Mycobacterium tuberculosis (TB), спор бактерий и многих вирусов, таких как HBV.

• Рекомендуемое время контакта: 10 минут
• Рекомендуемое рабочее разбавление: 0,1-2,0%
• Рекомендовано для: очистки оптических инструментов и административных помещений вблизи лаборатории

Этанол обычно используется на оборудовании, поверхности которого подвержены коррозии при применении других дезинфицирующих средств.Этиловый спирт эффективен для инактивации большинства вегетативных бактерий, грибков и липидосодержащих вирусов. Этанол НЕ эффективен при дезинфекции HBV, Mycobacterium tuberculosis (TB) и спор бактерий.

• Рекомендуемое время контакта: 10 минут
• Рекомендуемое рабочее разбавление: 70-85%
• Рекомендовано для: поверхностей из нержавеющей стали. ВНИМАНИЕ: Не используйте 70% этанол для очистки шкафа биобезопасности с рециркуляцией класса II и типа А. Пары этанола легко воспламеняются, и нижний предел взрываемости (НПВ) этанола легко достигается

Фенольные смолы обычно используются для обеззараживания поверхностей, таких как столешницы лабораторий.Фенолы эффективны в инактивации вегетативных бактерий, грибков, туберкулеза, липидосодержащих вирусов и имеют некоторое влияние на ВГВ. Однако фенольные смолы не инактивируют споры бактерий.

• Рекомендуемое время контакта: 10 минут
• Рекомендуемое рабочее разбавление: 1,0-5,0%
• Рекомендовано для использования в качестве альтернативы отбеливателю в качестве дезинфицирующего средства широкого спектра действия для столешниц, полов и металлических поверхностей. Фенольные смолы не разъедают металлические поверхности так быстро, как отбеливатель

Йодсодержащие соединения или йодофоры обычно используются для обеззараживания металлических поверхностей или оборудования.Йодофоры эффективны в инактивации вегетативных бактерий, грибов, туберкулеза и липидосодержащих вирусов и имеют некоторое влияние на ВГВ. Однако йодофоры не инактивируют споры бактерий.

• Рекомендуемое время контакта: 10 минут
• Рекомендуемое рабочее разбавление: 25-1600 частей на миллион, 0,47%
• Рекомендуется для: шкафов биобезопасности, стоматологического оборудования, столешниц, полов и лабораторного оборудования в целом

Хлорные соединения , такие как отбеливатель, обычно используются в лаборатории из-за относительной легкости доступа и низкой стоимости.Соединения хлора (гипохлорита) эффективны при инактивации вегетативных бактерий, грибов, липидных и нелипидных вирусов, Coxiella burnetii и туберкулеза. Соединения хлора в некоторой степени инактивируют споры бактерий.

• Рекомендуемое время контакта: 30 минут
• Рекомендуемое рабочее разбавление: 500 ppm (разбавление 1:10 бытового отбеливателя, 5% гипохлорит-иона)
• Рекомендуется для: полов, разливов (дезактивация жидких образцов), крышек скамей и загрязненной одежды.Не используйте отбеливатель для очистки электронного оборудования, оптического оборудования или неокрашенной нержавеющей стали. Неразбавленный отбеливатель и другие дезинфицирующие средства не должны сливаться в канализацию

Параформальдегид и формальдегид часто используются для обеззараживания больших частей лабораторного оборудования, такого как шкафы биобезопасности (но только профессионалами!). Параформальдегид / формальдегид инактивирует вегетативные бактерии, грибки, липидные и нелипидные вирусы, HBV, TB, Coxiella burnetii и бактериальные споры.Однако параформальдегид и формальдегид являются зарегистрированными канцерогенами в штате Калифорния и очень токсичны для использования без доступа к вытяжному шкафу и / или средствам индивидуальной защиты. Не используйте параформальдегид или формальдегид в лаборатории для обеззараживания оборудования. Утвержденный подрядчик по изготовлению шкафов биобезопасности будет использовать параформальдегид для обеззараживания вашего шкафа биобезопасности перед заменой HEPA-фильтров. Обязательно избегайте использования шкафа биобезопасности во время этой операции!

Глутаральдегид часто используется для дезинфекции больничных инструментов.Глутаральдегид инактивирует вегетативные бактерии, грибки, липидные и нелипидные вирусы, HBV, TB, Coxiella burnetii и бактериальные споры. Однако глутаральдегид очень токсичен для использования без доступа к вытяжному шкафу и / или средствам индивидуальной защиты. Не используйте глутаральдегид в лаборатории для обеззараживания оборудования.

Оксид этилена часто используется для дезинфекции больничных инструментов. Оксид этилена инактивирует вегетативные бактерии, грибки, липидные и нелипидные вирусы, HBV, TB, Coxiella burnetii и бактериальные споры.Однако окись этилена является зарегистрированным канцерогеном в штате Калифорния и очень токсична для использования без механической вентиляции и средств индивидуальной защиты. Не используйте окись этилена в лаборатории для дезактивации оборудования.

Микроорганизмов | Бесплатный полнотекстовый | Биоцидная эффективность выбранных растворов дезинфицирующих средств на основе воды и озонированной воды против штаммов Listeria monocytogenes

1. Введение

Целью исследования было сравнить биоцидную эффективность против штаммов L. monocytogenes тринадцати выбранных дезинфицирующих средств, растворы которых были приготовлены с использованием стерильной жесткой воды и озонированной воды. Целью было также оценить стабильность растворов трех дезинфицирующих средств, эффективность которых была значительно выше в озонированной воде по сравнению с жесткой водой.

2. Материалы и методы

2.1. Бактериальные штаммы

2.2. Озонированная вода

2.3. Дезинфицирующие средства

2.4. Приготовление бактериальных суспензий

Из культур штаммов L. monocytogenes, полученных на колумбийском агаре с 5% овечьей крови (CAB, bioMérieux, Marcy-l’Etoile, France), суспензии плотностью 0.5 Стандарт МакФарланда (5,80 × 10 ⁸ КОЕ × мл ^-1 ) готовили в 3 мл бульона Мюллера-Хинтона (MHB, Becton Dickinson, Franklin Lakes, Нью-Джерси, США). Для этого сначала была установлена ​​оптическая плотность стерильной среды MHB (Mueller Hinton Broth, Becton Dickinson, Franklin Lakes, Нью-Джерси, США). Затем из одной колонии, выращенной на колумбийском агаре с 5% овечьей крови (CAB, bioMérieux, Marcy-l’Etoile, Франция), собирали стерильный тампон и загружали в MHB (бульон Мюллера-Хинтона, Becton Dickinson, Franklin Lakes, Нью-Джерси. , США) с последующим измерением оптической плотности суспензии и последующей колонизацией L.monocytogenes при необходимости. Оптическую плотность суспензии устанавливали равной 0,5 + оптической плотности стерильного MHB (бульон Мюллера-Хинтона, Becton Dickinson, Franklin Lakes, Нью-Джерси, США). Измерения проводились на денитометре DEN-1B фирмы Biogenet (Юзефув, Польша).

2,5. Оценка биоцидной эффективности озонированной и не озонированной воды

Суспензии тестируемых штаммов L. monocytogenes (100 мкл) переносили пипеткой в ​​пробирки Eppendorf (1,5 мл, Genoplast, Польша).После центрифугирования бактериальных суспензий (3000 об / мин за 5 мин) к осадкам добавляли 150 мкл раствора озона соответствующей концентрации (среднее значение, определенное по пункту 2.2–2.32 мкг O ₃ / мл). Сразу после приготовления суспензии в озонированной / не озонированной воде делали ряд десятичных разведений в стерильном PBS (фосфатно-солевой буфер, Avantor, Гливице, Польша). Каждое разведение (100 мкл) высевали в колумбийский агар с 5% овечьей крови (CAB, bioMérieux, Marcy-l’Etoile, Франция) и инкубировали в течение 24 часов при 37 ° C.Таким образом определяли исходное количество L. monocytogenes. Количество бактерий в полученной суспензии составляло 3,60–4,20 × 10 ⁸ КОЕ × мл ^–1 . Отрицательный контроль — 150 мкл озоновой воды, положительный контроль — 150 мкл бактериальной суспензии данного штамма, суспендированной в стерильной жесткой воде. Исследование проводили в трех экземплярах для каждого штамма и каждой тестируемой концентрации.

После определения диапазона концентраций, в котором находится значение минимальной бактерицидной концентрации (МБК) озонированной воды, процедуру повторяли, готовя растворы с концентрацией, изменяющейся на 1% в этом диапазоне, для точного определения МБК ( минимальная бактерицидная концентрация).

Чтобы проверить стойкость озонированной воды, тот же цикл испытаний был проведен через один и два часа после завершения процесса озонирования. Все чашки с культурами в виде полосок инкубировали в условиях, описанных выше, а затем считывали результаты.

2.6. Оценка эффективности дезинфицирующих средств

После определения диапазона концентраций, в котором находится значение минимальной бактерицидной концентрации (МБК) данного дезинфицирующего средства, процедура была повторена путем приготовления растворов с концентрацией, изменяющейся на 1% в этом диапазоне, для точного определения МБК.

A — коэффициент эффективности,

b — эффективная концентрация дезинфицирующего средства в активном растворе (озонированная вода),

c — эффективная концентрация дезинфицирующего средства в не озонированном водном растворе.

R — уменьшение количества бактерий (log КОЕ)

log _i — количество исходных бактерий

log _preMBC — количество бактерий, выделенных из суспензии, обработанной дезинфицирующим средством с концентрацией preMBC

2.7. Оценка стабильности растворов QAC 2, OA 3 и ChC1

Три дезинфицирующих средства, для которых коэффициент эффективности был самым низким, были оценены на стабильность (QAC 2, OA 3 и ChC 1).Приготовленные рабочие растворы как в озонированной, так и в озонированной воде хранили при комнатной температуре. Эффективность этих агентов в отношении штаммов L. monocytogenes оценивали сразу после приготовления растворов, через 12 и 24 ч, определяя значения МБК в отдельные интервалы времени. Эта часть эксперимента была разработана, чтобы оценить, не продлевается ли возможное повышение эффективности дезинфицирующих средств из-за некоторых реакций между озоном и активными веществами. На основе значений MBC был рассчитан коэффициент A для конкретного дезинфицирующего средства, штаммов и времени хранения.

2,8. Статистический анализ

Статистический анализ выполнялся в программе STATISTICA 13.1 PL (StatSoft). Оценивалась значимость различий между эффективностью озонированной воды, значениями МБК дезинфицирующих средств, снижением количества L. monocytogenes и коэффициентами максимальной эффективности дезинфицирующих средств.

2.8.1. Биоцидная эффективность озонированной и не озонированной воды

Было проверено, как значение МБК озонированной воды менялось в зависимости от времени (0, 1 и 2 часа) и L.monocytogenes. Эксперимент проводили в 3-х повторностях. В качестве независимых переменных рассматривались деформация, а также время, прошедшее после озонирования воды, и в качестве зависимой переменной было признано определенное значение МБК. Проверяли достоверность различий между средними значениями MBC для комбинации обеих независимых переменных. Для этого использовались генеральные линейные модели (ГЛМ). Был проведен многофакторный дисперсионный анализ. Апостериорный критерий Тьюки использовался для значимости α = 0.05.

2.8.2. Оценка эффективности дезинфицирующих средств

Было проверено, как значение МБК тестируемых дезинфицирующих средств варьировалось в зависимости от типа воды (озонированная / не озонированная), используемой для приготовления растворов. Эксперимент проводили в 3-х повторностях. В качестве независимых переменных обрабатывались дезинфицирующее средство, тип воды, а также штамм, а в качестве зависимой переменной было признано определенное значение дезинфицирующих средств MBC. Проверяли достоверность различий между средними значениями MBC для комбинации всех независимых переменных.Для этого использовались генеральные линейные модели (ГЛМ). Был проведен многофакторный дисперсионный анализ. Апостериорный критерий Тьюки был использован для значимости α = 0,05.

2.8.3. Уменьшение количества бактерий

Было проверено, как уменьшение количества бактерий варьируется в зависимости от типа воды (озонированная / не озонированная), используемой для приготовления дезинфицирующих растворов. Эксперимент проводили в 3-х повторностях. В качестве независимых переменных рассматривался тип воды, а в качестве зависимой переменной было признано определенное уменьшение количества бактерий.Проверялась достоверность различий между средним снижением, полученным для конкретного дезинфицирующего средства, в зависимости от типа воды. Для этого использовались генеральные линейные модели (ГЛМ). Был проведен односторонний дисперсионный анализ. Апостериорный критерий Тьюки был использован для значимости α = 0,05.

2.8.4. Коэффициенты максимальной эффективности дезинфицирующих средств

Проверено, как изменяются коэффициенты максимальной эффективности дезинфицирующих средств в зависимости от типа воды (озонированная / не озонированная), используемой для приготовления дезинфицирующих растворов.Эксперимент проводили в 3-х повторностях. В качестве независимых переменных рассматривался тип воды, а в качестве зависимой переменной были признаны определенные коэффициенты максимальной эффективности дезинфицирующих средств. Проверялась достоверность различий между средним значением коэффициента, полученным для конкретного дезинфицирующего средства, в зависимости от типа воды. Для этого использовались генеральные линейные модели (ГЛМ). Был проведен односторонний дисперсионный анализ. Апостериорный критерий Тьюки был использован для значимости α = 0,05.

4.Обсуждение

На сегодняшний день информации о синергетическом действии озонированной воды и дезинфицирующих средств не обнаружено. Однако следует ожидать, что внедрение раствора дезинфицирующих средств на основе озонированной воды повысит эффективность тестируемых средств, по крайней мере, до уровня аддитивного действия.

В проведенных исследованиях также оценивалась долговечность решений с самым низким показателем эффективности для QAC 2, OA 3 и ChC 1.Снижение биоцидной активности дезинфицирующих растворов, приготовленных с использованием не озонированной воды, может указывать на то, что они постепенно инактивируются во время хранения.

Результаты нашего исследования показывают, что озонированная вода обладает микробицидными свойствами. Поскольку озонированная вода и дезинфицирующие средства проявляют синергетический эффект биоцидного действия, их комбинация может использоваться для более эффективного уничтожения микроорганизмов. Кроме того, озонированная вода может снизить рабочую концентрацию дезинфицирующих средств. Однако важно помнить о коротком периоде полураспада озона и использовать его непосредственно или через короткое время после приготовления соответствующих дезинфицирующих растворов.

Как сделать лучший выбор для объектов

Дезинфекция и дезинфекция, Образовательная

Вернуться к новостям

Зачем лечить?

Почти каждая среда на планете содержит бактерии и микроорганизмы. Вы можете быть удивлены, узнав, что на одном квадратном дюйме кожи человека насчитывается более 600 000 бактерий ¹ . Большинство бактерий безвредны для человека. Но болезнетворные организмы, называемые патогенами, могут быть опасными или даже смертельными.Одно из самых заразных и опасных заболеваний в новейшей истории — COVID-19, вызываемое вирусом SARS-CoV-2.

Регулярное использование правильных типов дезинфицирующих средств на поверхностях в вашем учреждении имеет решающее значение для предотвращения распространения болезней и заболеваний, таких как COVID, грипп (грипп) и простуда. Поскольку на рынке представлено множество типов дезинфицирующих средств, важно понимать, как они работают, включая их плюсы и минусы, чтобы принять обоснованное решение о том, как лучше всего дезинфицировать и защитить людей, находящихся на вашем предприятии.

Как действуют дезинфицирующие средства?

Дезинфицирующие средства — это химические вещества, применяемые к неживым объектам с целью уничтожения бактерий, вирусов, грибков, плесени или грибка, обитающих на объектах. По определению, формула дезинфицирующего средства должна быть зарегистрирована в Агентстве по охране окружающей среды (EPA). «Активный ингредиент» в каждой формуле дезинфицирующего средства — это то, что убивает патогены, обычно разрушая или повреждая их клетки. Активным ингредиентам обычно помогают другие ингредиенты с различными целями.Например, поверхностно-активные вещества могут быть добавлены в формулу дезинфицирующего средства для обеспечения равномерного смачивания поверхности или для облегчения очистки.

Основные виды дезинфицирующих средств, категорически говоря

Несколько широких категорий дезинфицирующих средств используются при обслуживании коммерческих и промышленных объектов. Ниже приведены несколько наиболее распространенных типов. Хотя это не исчерпывающий список, они охватывают подавляющее большинство используемых сегодня. Если вам нужна более подробная информация о плюсах и минусах этих типов дезинфицирующих средств, обратитесь к таблице «Жидкие дезинфицирующие средства 101» компании Nyco.

Особо следует отметить: когда такой возбудитель, как SARS-CoV-2, вызывающий COVID-19, первоначально идентифицируется экспертами, он классифицируется как «новый патоген». EPA разрешает только определенные дезинфицирующие средства быть признаны эффективными против появляющихся патогенов. У Nyco есть несколько дезинфицирующих средств с этим особым заявлением. Прочтите этикетку дезинфицирующего средства, чтобы определить, есть ли на нем заявка на появление нового патогена.

Что следует учитывать при выборе дезинфицирующего средства

Есть четыре основных момента, которые следует учитывать при выборе дезинфицирующего средства, которое наилучшим образом соответствует потребностям вашего учреждения. Ответы на эти вопросы дадут вам основу для определения лучшего продукта (ов) для использования в вашей организации.

1. Эффективность

Убивает ли дезинфицирующее средство микробы и патогены, вызывающие наибольшую озабоченность в вашем учреждении? Например, вас может сильно беспокоить Staphylococcus aureus, устойчивый к метициллину (MRSA).Некоторые дезинфицирующие средства одобрены EPA как эффективные против этих бактерий . Nyco® Uno — одно из таких дезинфицирующих средств. Имейте в виду, что патогены могут иметь несколько штаммов, а дезинфицирующие средства сертифицированы для определенных штаммов. Uno также эффективен против Staphylococcus aureus (CA-MRSA), устойчивого к метициллину, вызываемого сообществом. В зависимости от вашей отрасли и типа учреждения — здравоохранения, образования, долгосрочного ухода, гостеприимства — у вас будут разные потребности и требования.

2.Время убийства

Как быстро дезинфицирующее средство убивает определенный патоген? Сохраняет ли продукт видимую влажность поверхностей, чтобы выдержать это время уничтожения? Опять же, формулы дезинфицирующих средств зарегистрированы для уничтожения определенных патогенов в течение определенного периода времени, и они должны быть влажными на поверхности все время, чтобы активно работать. Типичное время убийства — от 30 секунд до 5 минут. Если дезинфицирующему средству требуется 10 минут, убедитесь, что оно действительно останется влажным так долго.Дезинфицирующие средства на спиртовой основе могут очень хорошо испаряться до требуемого времени контакта. Прочтите и соблюдайте все инструкции по применению и, при необходимости, увлажнению.

3. Безопасность

Безопасен ли продукт для людей и безопасен для поверхностей, на которые он наносится? Как вы узнали ранее в этой статье, некоторые категории дезинфицирующих средств токсичны, некоторые окрашивают, другие вызывают коррозию, а третьи имеют нежелательный запах. Проверьте показатели токсичности и воспламеняемости продуктов, а также любые рекомендации по средствам индивидуальной защиты (СИЗ) для дезинфицирующих средств, которые вы применяете.Убедитесь, что дезинфицирующее средство не повредит какую-либо поверхность, для которой оно предназначено.

4. Простота использования

Практичны ли шаги, необходимые для использования данного дезинфицирующего средства, в вашем учреждении? Некоторые приложения требуют выполнения нескольких шагов, что не всегда возможно. Жесткость воды — это один из факторов, который может повлиять на эффективность некоторых формул дезинфицирующих средств. Sani-Spritz Spray очищает и дезинфицирует всего за один шаг, что делает его лучшим выбором в качестве простого, готового к использованию дезинфицирующего средства, которое борется с широким спектром бактерий, вирусов, грибков и плесени в больницах, учреждениях и на производстве.

Сортировка информации о различных типах дезинфицирующих средств требует времени, но это важный шаг для обеспечения того, чтобы вы принимали наилучшее решение по техническому обслуживанию для своего учреждения. Наличие под рукой подходящих продуктов и надежного плана по предотвращению заболеваний и инфекций сэкономит усилия и расходы в будущем, а также даст дополнительное душевное спокойствие вам, вашим сотрудникам и любым посетителям, которые проходят через ваши двери.

¹ Разъясненная наука. «Мы окружены». Наука разъяснена.com. http://www.scienceclarified.com/scitech/Bacteria-and-Viruses/We-Are-Surounded.html (по состоянию на 21 февраля 2016 г.)

Метки: дезинфицирующее средство, дезинфицирующие средства, перекись водорода

Теплица и цветоводство: очистка и дезинфекция теплицы

Первые шаги к чистой теплице

Если у вас были повторяющиеся проблемы с такими болезнями, как корневая гниль Pythium или насекомыми, такими как грибные мошки, возможно, ваша теплица и участки для выращивания горшечных культур нуждаются в хорошей очистке.В процессе выращивания сельскохозяйственных культур на влажных поверхностях накапливаются инфекционные микробы, а на влажных поверхностях разрастаются водоросли, являющиеся укрытием для грибных мошек и прибрежных мух.

Внимание к санитарии и дезинфекции теплицы — это шаги, которые производители могут выполнять между циклами выращивания. Некоторые производители ждут недели, прежде чем открывать теплицу, прежде чем убирать мусор, оставшийся от предыдущего вегетационного периода. Лучше очистить как можно раньше, чтобы исключить места зимовки вредителей, чтобы сократить их популяцию до начала весеннего вегетационного периода.Вредителей гораздо легче предотвратить, чем вылечить.

Хотя дезинфекцию следует проводить регулярно, время не всегда позволяет выполнить эти дополнительные усилия. Воспользуйтесь возможностью тщательно очистить теплицы между циклами выращивания, когда теплицы полностью пусты.

Очистка

Очистка включает в себя физическое удаление сорняков, мусора и почвы и является первым шагом перед дезинфекцией теплицы и оборудования. Некоторые производители используют пылесос для уборки бетонных и покрытых полов для удаления мусора.Почва и органические остатки растений и питательных сред снижают эффективность дезинфицирующих средств. Есть некоторые чистящие средства, специально разработанные для использования в теплицах, например Strip-It, который представляет собой комбинацию серной кислоты и смачивающих агентов, созданных для удаления водорослей, грязи и отложений жесткой воды. Также возможна мойка под высоким давлением с мылом и водой. Мыло особенно полезно для удаления жирных отложений, однако необходимо тщательное ополаскивание, поскольку остатки мыла могут дезактивировать некоторые дезинфицирующие средства, такие как Q-соли.

Начните с вершины и двигайтесь вниз. Подметите стены и внутренние конструкции и очистите пол от почвы, органических веществ и сорняков. Организмы, вызывающие заболевания, могут поселиться на стропилах, подоконниках, верхних частях подвесных трубопроводов и складках пластика. Особый уход необходим для очистки этих участков, а также текстурированных поверхностей, таких как бетон и дерево, которые могут скрывать многие виды организмов.

Установите физические барьеры из циновок от сорняков, если полы покрыты грязью или гравием, и отремонтируйте существующие маты.Барьеры от сорняков предотвращают появление сорняков и облегчают борьбу с водорослями. Избегайте использования камня на коврике с сорняками, который будет задерживать почву и влагу, создавая идеальную среду для сорняков, болезней, насекомых и водорослей.

Системы орошения также следует очищать от грязи и отложений организмов (также называемых биопленкой) в конце вегетационного периода. Фермеры часто используют продукты с маркировкой для очистки ирригационных систем, такие как серная кислота и смачивающее средство (Strip-It) или дезинфицирующие средства, содержащие перекись водорода и пероксиуксусную кислоту (SaniDate), чтобы смыть слизь и мусор.

Преимущества дезинфекции теплицы

Со многими патогенами можно до некоторой степени бороться с помощью дезинфицирующих средств. Например, частицы пыли из упавшей питательной среды или горшков могут содержать бактерии или грибы, такие как Rhizoctonia или Pythium . Дезинфицирующие средства помогут контролировать эти патогены. Помимо патогенов растений, некоторые дезинфицирующие средства также предназначены для борьбы с водорослями, которые являются питательной средой для грибных мошек и прибрежных мух.

Управление водорослями

Водоросли — это разнообразные группы растений, которые встречаются в самых разных средах.Рост водорослей на дорожках, водопроводных трубах, оборудовании, покрытиях теплиц, на скамейках или под ними и в горшках является постоянной проблемой для производителей. Водоросли образуют непроницаемый слой на поверхности среды, который предотвращает смачивание среды и может засорить линии орошения и запотевания, а также излучатели. Это источник пищи для насекомых-вредителей, таких как прибрежные мухи, и вызывает скользкие дорожки, которые могут стать серьезным риском для рабочих и клиентов. Недавние исследования показали, что водоросли попадают в теплицу через источники воды и из торфа в среде выращивания.Попав в теплую влажную среду с удобрениями, водоросли процветают.

Правильное использование воды и удобрения могут помочь замедлить рост водорослей. Избегайте чрезмерного полива медленнорастущих растений и особенно сельскохозяйственных культур на ранних этапах производственного цикла. Дайте поверхности среды высохнуть между поливами.

Избегайте чрезмерного стекания удобрений и луж на полах, скамейках и поверхностях теплиц. Пол теплицы должен быть ровным и должен иметь надлежащий дренаж, чтобы предотвратить скапливание воды перед установкой физического барьера для защиты от сорняков.

Борьба с водорослями включает комплексный подход, включающий санитарию, изменение окружающей среды и частое использование дезинфицирующих средств.

Вода для полива также может быть источником болезнетворных микроорганизмов и водорослей. Для получения информации о технологиях очистки воды для борьбы с водорослями см. Водный образовательный альянс для садоводства: http://www.watereducationalliance.org/

Скамейки и рабочие столы для теплиц

По возможности используйте скамейки из проволоки, которые легко дезинфицируются.Деревянные скамейки могут быть источником болезней корневой гнили и заражения насекомыми. Водоросли имеют тенденцию расти на поверхности древесины, создавая идеальную среду для грибных мошек и прибрежных мух, а патогенные микроорганизмы растений могут расти в древесине. У растений, укореняющихся в древесине через контейнеры, разовьется корневая гниль, если условия благоприятны для активности патогенов. Дезинфицируйте скамейки между циклами сбора урожая одним из указанных ниже продуктов. Имейте в виду, что дезинфицирующие средства не являются защитными средствами. Они могут уничтожить определенные патогены, но будут иметь небольшую остаточную активность.

Столешницы и рабочие столы должны быть изготовлены из непористой поверхности, например, из ламината, который можно легко дезинфицировать. Избегайте использования голой древесины для этих задач.

Очистка контейнеров

Патогены растений, такие как Pythium , Rhizoctonia и Thielaviopsis , могут выжить в остатках корней или частицах почвы на поверхностях теплиц. Если у урожая возникла проблема, связанная с заболеванием, избегайте повторного использования контейнеров. Также рекомендуется избегать посадки культур, склонных к проблемам Thielaviopsis , таких как анютины глазки, в контейнеры, которые использовались ранее.Исследования показали, что споры Thielaviopsis способны выживать на переработанных лотках для пробок и заражать новые культуры.

Емкости, предназначенные для повторного использования, перед обработкой дезинфицирующим средством следует тщательно промыть, чтобы удалить частицы почвы и растительный мусор, даже если нет признаков заболевания сельскохозяйственных культур. Мусор и органические вещества могут защитить болезнетворные микроорганизмы от контакта с дезинфицирующим раствором.

Дезинфицирующие средства для теплиц

Существует несколько различных типов дезинфицирующих средств, которые в настоящее время используются в теплицах для борьбы с патогенами растений и водорослями.Это соединения четвертичного аммония (Green-Shield®, Physan 20® и KleenGrow ™), диоксид водорода (ZeroTol® 2.0, Oxidate® 2.0), пероксид водорода и пероксиуксусная кислота (Sanidate®), пероксид водорода, пероксиуксусная кислота и октановая кислота. (X ™ -3), пероксигидрат карбоната одия (GreenClean Pro Granular Algicide) и хлорный отбеливатель. Здесь упоминается алкоголь, хотя он и не используется в качестве общего дезинфицирующего средства, потому что он используется производителями для дезинфекции инструментов для размножения. Все эти продукты обладают разными свойствами.Если возможно, дезинфицирующие средства следует использовать на регулярной основе как в рамках программы очистки перед посевом, так и во время цикла сбора урожая.

Соли хлорида четвертичного аммония (Green-Shield®, Physan 20®, KleenGrow ™ ). Продукты Q-salt, обычно используемые производителями, довольно стабильны и хорошо работают при использовании в соответствии с инструкциями на этикетке. Q-соли помечены для грибковых, бактериальных и вирусных патогенов растений и водорослей. Их можно наносить на полы, стены, скамейки, инструменты, горшки и квартиры в качестве дезинфицирующих средств.Physan 20® также предназначен для обработки семян, срезанных цветов и растений. Внимательно прочтите и следуйте инструкциям на этикетке. Рекомендации могут отличаться в зависимости от предполагаемого использования продукта. Например, этикетка Green-Shield® рекомендует замачивать предметы, подлежащие дезинфекции, на 10 минут, а пешеходные дорожки — на час и более. Инструкции рекомендуют сушить поверхности на воздухе после обработки, за исключением режущих инструментов. На этикетке рекомендуется замачивать режущие инструменты на 10 минут перед использованием, а затем использовать влажный инструмент для обработки растений.Один из способов сделать это — использовать два режущих инструмента, одну пару использовать, пока другая замачивает. KleenGrow имеет более высокие органические допуски и более длительную остаточную активность на твердых поверхностях.

Q-соли не являются защитными средствами. Они могут уничтожить определенные патогены, но будут иметь небольшую остаточную активность. Контакт с любым типом органических веществ приведет к их инактивации. Поэтому перед нанесением необходимо предварительно очистить объекты, чтобы удалить органические вещества. Поскольку трудно определить, когда они становятся неактивными, часто готовьте свежие растворы (два раза в день при постоянном использовании).В активном состоянии продукты имеют тенденцию к небольшому вспениванию. Когда пенообразование прекращается, это признак того, что они больше не эффективны. Ополаскивание водой не требуется.

Двуокись водорода и пиероксиуксусная кислота (ZeroTol® 2.0, OxiDate® 2.0, SaniDate ®12.0 ) Двуокись водорода убивает бактерии, грибки, водоросли и их споры сразу при контакте. Он отмечен как дезинфицирующее средство для использования на поверхностях теплиц, оборудовании, скамейках, горшках, лотках и инструментах, а также для использования на растениях.В рекомендациях на этикетке указано, что перед обработкой все поверхности следует тщательно смочить. Отмечены некоторые меры предосторожности. Двуокись водорода обладает сильным окислительным действием, и ее нельзя смешивать с другими пестицидами или удобрениями. При нанесении непосредственно на растения фитотоксичность может проявляться для некоторых культур, особенно при применении с дозами, превышающими указанные, или если растения находятся в состоянии стресса. Двуокись водорода можно применять через систему орошения. В виде концентрата он вызывает коррозию и вызывает повреждение или раздражение глаз и кожи.Внимательно прочтите и соблюдайте меры предосторожности на этикетке. Обратите внимание, что OxiDate® и SaniDate являются органическими продуктами.

Перекись водорода, пероксиуксусная кислота и октановая кислота (X ™ -3) — это сильный окислитель, используемый в качестве альгецида в тепличных конструкциях и полах, и предназначен для использования в химии. Соблюдайте указанные на этикетке нормы и меры предосторожности.

Пероксигидрат карбоната натрия (GreenClean Pro Granular Algaecide®) — гранулированный продукт, активируемый водой. При активации пероксидрат карбоната натрия распадается на карбонат натрия и пероксид водорода.GreenClean предназначен для борьбы с водорослями в любой непищевой воде или поверхностях. Нецелевые растения получают контактный ожог, если на них случайно проливаются неразбавленные гранулы.

Хлорный отбеливатель. Существуют более стабильные продукты, чем отбеливатель, для дезинфекции поверхностей теплиц. Хлорный отбеливатель можно использовать для горшков или квартир, но его не рекомендуется наносить на стены, скамейки или пол. При правильном использовании хлор является эффективным дезинфицирующим средством и уже много лет используется фермерами.Раствор хлорного отбеливателя и воды недолговечен, а период полураспада (время, необходимое для 50-процентного снижения прочности) раствора хлора составляет всего два часа. По прошествии двух часов количество хлора составляет лишь половину от того количества хлора, которое было вначале. Через четыре часа остается только четверть и так далее. Чтобы обеспечить эффективность хлорных растворов, их следует готовить свежими непосредственно перед каждым использованием. Обычно используется концентрация: одна часть бытового отбеливателя (5,25 процента гипохлорита натрия) на девять частей воды, что дает конечную концентрацию 0.5 процентов. Хлор вызывает коррозию. Повторное использование растворов хлора может быть вредным для пластмасс или металлов. Предметы, которые нужно продезинфицировать хлором, необходимо замачивать в течение 30 минут, а затем промыть водой. Кто-то скажет, что полоскание не требуется. Отбеливатель следует использовать в хорошо проветриваемом помещении. Также следует отметить, что отбеливатель фитотоксичен для некоторых растений, например для пуансеттии.

Спирт (70 процентов) — очень эффективное дезинфицирующее средство, которое действует почти сразу при контакте.Это непрактичный материал для замачивания из-за его горючести. Тем не менее, его можно использовать для обработки ножей или режущих инструментов погружением или смахиванием. Ополаскивание водой не требуется.

Дезинфицирующие средства следует использовать на регулярной основе как в рамках программы очистки перед посевом, так и во время цикла сбора урожая.

Органические дезинфицирующие средства , внесенные в список Organic Material Review Institute, включают OxiDate 2.0, SaniDate 12.0 и PERpose Plus. Этиловый или изопропиловый спирт используется для дезинфекции инструментов. Органические производители должны всегда уточнять у своей сертифицирующей организации, прежде чем использовать какой-либо новый материал в своей практике выращивания. Список продуктов см .: Институты по изучению органических материалов (OMRI), www.omri.org.

Эта информация предоставлена ​​с пониманием того, что не предполагается никакой дискриминации и не подразумевается одобрение. В связи с постоянно меняющимися правилами мы не несем ответственности за предложения. Если какая-либо информация в этой статье не соответствует этикетке, следуйте этикетке.

Меры по предотвращению заражения болезнями

• Продезинфицируйте скамейки, желательно проволочные. Кастрюли, плошки и подносы должны быть новыми или продезинфицированными. Деревянные скамейки могут быть источником болезней корневой гнили и заражения насекомыми. Водоросли, растущие на деревянных поверхностях, создают идеальную среду для грибных мошек и прибрежных мух. Патогены растений, такие как Pythium , могут расти в древесине, и растения, укоренившиеся в древесине, могут инфицироваться.
• Дезинфицируйте горшечные столы, предпочтительно с непористой поверхностью, например ламинатом.
• Установите станции для мытья рук и ванночки для ног на входе в каждую теплицу, особенно в птичники.
• Содержание в чистоте рук и ногтей помогает снизить распространение болезней. Если вы носите латексные или другие защитные перчатки, очищайте их так же, как и руки, и периодически меняйте их. Ежедневно меняйте дезинфицирующее средство в ванночках для ног и еженедельно стирайте коврики.
• Не подпускайте домашних животных к скамейкам и горшкам.
• Обеспечьте опоры по всей теплице для подвешивания насадок для шлангов.Держите все контейнеры и шланговые насадки подальше от пола, чтобы предотвратить заражение патогенами.
• Храните питательные среды в чистом и закрытом месте.
• Избегайте переноса растительного материала.
• Избегайте скопления грязных горшков, старой питательной среды или растительных остатков в зоне смешивания сред.
• Убедитесь, что урны для мусора в теплице закрыты, чтобы споры болезней не попали на урожай.
• Используйте садовое масло на растительности / сорняках снаружи, по периметру теплицы, чтобы задушить зимующих вредителей.

Ссылки и ресурсы

• Camberato D.M. и Р.Г. Лопес. Борьба с водорослями в ирригационных прудах. Информационный бюллетень Perdue Extension.
• Фургюсон Г. Напоминания о уборке. Министерство сельского хозяйства, продовольствия и сельских районов Онтарио
  http://www.omafra.gov.on.ca/english/crops/hort/news/grower/2009/10gn09a1.htm
• Левандовски Д. Последняя информация об исследованиях дезинфицирующих средств теплиц в ОГУ. FloriBytes V (2), июнь 2010 г.
  https://u.osu.edu/joneslab/
• Институт обзора органических материалов http: // www.omri.org/
• Пауэлл, C. 1993. Дезинфицирующие или дезинфицирующие средства и их использование в теплицах. Советы по использованию пестицидов на культурах цветоводства. Ассоциация флористов Огайо, Колумбус, Огайо, стр 78,79.
• Пауэлл, К. 2000. Доктор болезней — Как можно удалить водоросли, накапливающиеся на пористых поверхностях в теплицах? Тепличный бизнес. Август 2000. С. 41
.
• Пундт Л. Редактор раздела. Управление водорослями. Руководство по тепличному цветоводству Новой Англии, Руководство по управлению насекомыми, болезнями, сорняками и регуляторами роста.
• Warfield, C. and K. Konczal. Выживаемость спор Thielaviopsis на повторно используемых лотках для пробок и эффективность дезинфектантов в отношении жизнеспособности спор. 2004. Конференция по исследованиям СНС. pp 545-547.
  http://www.sna.org/Resources/Documents/03resprocsec13.pdf
• Альянс водного образования для садоводства: http://www.watereducationalliance.org/
• Корнельское руководство по комплексному управлению цветочными культурами в теплицах

Этикетки для пестицидов

Обновлено 2015