Как удалить кутикулу и замедлить ее рост

Часто успех хорошего маникюра зависит не столько от оттенка выбранного лака, сколько от того, насколько изящно и аккуратно обработана кутикула. Как правильно удалять ее в домашних условиях, достигая эффекта безупречно ухоженных ногтей — подскажет ХОЧУ.

Все мы знаем, как выглядит кутикула. Это — разрастающийся природным путем валик кожи вокруг ногтевой пластины. Кроме того, это важный барьер, который защищает корень ногтя от попадания бактерий и появления всевозможных повреждений. У многих возникает справедливый вопрос, зачем же тогда удалять кутикулу, если она выполняет столь важную защитную функцию. Дело в том, что крепко срастаясь с ногтем, она может разрываться, что в свою очередь приводит к образованию заусениц, трещин, замедлению роста ногтя. Вторая причина, которая обязывает удалять кутикулу объясняется тем, что ногти с наросшей кожей смотрятся неопрятно.

Кутикула состоит из двух частей — живой и неживой.

В процессе удаления задействована как раз последняя. Ее легко узнать, так как при размягчении, она легко отделяется от самой ногтевой пластины. Живая часть наоборот, плотно прилегает к ногтю, и ее удалять нельзя.

В домашних условиях вы сможете применить один из двух существующих методов удаления кутикулы — механический или немеханический.

ЧИТАЙ ТАКЖЕ — Топ 10 советов, как заставить лак дольше держаться

Первый способ подразумевает использование ножниц или/и щипчиков. Тут сразу оговоримся, что поскольку этот способ является довольно грубым, не экономьте на инструментах. Все они должны быть отменного качества, желательно из медицинской стали и тщательно продезинфицированы перед самой процедурой. Приготовьте ванночку и опустите в нее кисти рук, чтобы размягчить кутикулу. Как только вы заметите, что мертвая часть кутикулы отошла от ногтевой пластины, аккуратно отодвиньте ее деревянной палочкой. Дальше можете приступать к осторожному обрезанию кутикулы.

Нижнее лезвие разместите под низ кутикулы, и медленно, по дуге начинайте удалять ее. Здесь не следует торопиться и все движения должны быть плавными и легкими.

Если же вы желаете удалить кутикулу с помощью ножничек, вам надо выбирать их модель с закругленными кончиками. Хотя и в этом способе вам сначала придется слегка надрезать кутикулу с двух сторон щипчиками, а лишь затем окончательно удалить ее с помощью ножниц.

 

Самым деликатным и щадящим вариантом признан немеханический способ удаления кутикулы. Он подразумевает нанесение специальных средств. Они представлены в виде гелей, масел, кремов, эликсиров и других текстур, которые продаются в бутылочках, по форме напоминающих лак для ногтей, баночках или тюбиках. Очень удобны как и в использовании, так и для косметички, специальные карандаши с кисточкой или удобным наконечником. Формула этих средств помогает быстро растворить ороговевший слой и смягчить кутикулу перед последующим ее удалением.

Немеханический способ удаления кутикулы очень прост. Вам следует лишь нанести выбранное вами средство на кутикулу, и проследить, когда она начнет смягчаться и слегка отслоится от ногтевой пластины. Затем окончательно отделите омертвевший кожный валик от ногтя при помощи специальной палочки.

Успешно и качественно удалить кутикулу — это 80 % успеха в стремлении к ухоженным ногтям. К остальным 20% можно отнести правильный уход за ней и проведение процедур, замедляющих ее рост. ХОЧУ подобрал для вас наиболее эффективные варианты подобных процедур.

Масляная смесь для ухода за кутикулой

Готовится на базе 1 ст.л. абрикосового масла или масла из ростков пшеницы, с добавлением 3 капель масла чайного дерева и 2 капель масла лаванды. Перемешать ингредиенты, нанести смесь на кутикулу на 10 минут, затем массажными движениями втирать в нее. Пройти курсом 10 дней. Затем продолжать поддерживающий уход — 2 раза в неделю.

Касторовое масло с йодом

20 мл масла смешать с 7-10 каплями йода, накапав их в удобный для вас пузырек с маслом. Тщательно перемешать. Втирать в саму ногтевую пластину и в кутикулу до полного впитывания. Использовать курсом 10 дней, затем — 1 раз в неделю.

Ванночка для размягчения кутикулы и замедления ее роста

Несколько капель абрикосового или персикового масла смешать с 1 ч.л. жидкого мыла и стаканом воды. Поместить пальцы в полученную смесь на 20-30 минут, в зависимости от состоянии кутикулы. Пройти курс из 10 процедур каждый день, затем повторять 1 раз в неделю. 

Источник: ХОЧУ

Как замедлить рост кутикулы

Если вам говорят, что можно избавиться от кутикулы навсегда, не верьте. Это весьма распространенный миф. Кутикула защищает ноготь от повреждений и проникновения бактерий, так что без нее никак. А вот замедлить ее рост, сделать тоньше, если она грубая и плотная, возможно. Хотите узнать как?

Как замедлить рост кутикулы

1. Не срезайте кутикулу
   Чем чаще вы срезаете кутикулу, тем плотнее она становится и быстрее растет. Поэтому в следующий раз, когда будете делать маникюр, после ванночки для рук нанесите на ногти размягчающий гель для кутикулы на минуту и отодвиньте ее специальной палочкой.

   © Depositphotos

2. Сделайте ванночку
   Для начала сделайте ванночку. В теплую воду положите фруктовую кожуру, влейте отвар цветков или трав: розы, ромашки, календулы, мяты, лаванды, розмарина. Можно добавить немного морской соли. Держите руки в ванночке 10 минут. Вытрите их бумажным полотенцем и перейдите к следующему шагу.

   © Depositphotos

3. Приготовьте масло для кутикулы самостоятельно
   Масло для кутикулы можно приготовить в домашних условиях. Смешайте 2 ст.л. масла жожоба, 10 капель эфирного масла ладана, 10 капель эфирного масла лимона, 10 капель эфирного масла мирры, жидкий витамин Е. Храните в темной стеклянной бутылочке при комнатной температуре.

   © Depositphotos

4. Проводите процедуру правильно
   Не выдерживайте масло дольше указанного, чтобы не навредить. 2-ух минут будет достаточно. Далее отодвигайте кутикулу специальной апельсиновой палочкой. Проводите процедуру 2 раза в неделю. При этом вы будете не только размягчать кутикулу, но и улучшать кровоток, помогая ногтям лучше расти.

   © Depositphotos

5. Попробуйте спиливать кутикулу
   Если вам срочно нужно сделать аккуратный маникюр, не обрезайте кутикулу, а аккуратно спиливайте ее. Делать это нужно на сухой коже пилкой с мягким, тонким абразивом. Делайте процедуру в одном направлении. После нанесите масло.

   © Depositphotos

Главное, чтобы вы не забывали о своей цели, не бросали на полпути уход, и тогда рост кутикулы замедлится. Красивые руки с аккуратным маникюром — первый признак ухоженной женщины!

Как замедлить рост кутикулы?. Статьи компании «Красуня»

Уже все знают, о том, как выглядит кутикула.

Кутикула представляет собой валик, который разрастается природным путем вокруг ногтевой пластины. Природа не просто так предусмотрела наличие этого отростка. Он выполняет защитные функции и служит барьером, который препятствует попаданию бактерий и инфекций. У многих возникает вопрос относительно удаления кутикулы. С одной стороны, она выполняет защитную функцию, а с другой стороны, после срастания с ногтем она может разрываться, что приводит к появлению заусенцев, трещин и замедлению роста ногтей. 

Кутикула состоит из живой и неживой части. Во время маникюра удаляется неживая ее часть. Во время размягчения она с легкостью отделяется от ногтя. Живая напротив, плотно прилегает к ногтю, а любые манипуляции с ней доставляют болевые ощущения.

Те, кто утверждают, что можно избавиться от кутикулы навсегда лукавят. Это не так. Но вполне реально замедлить ее рост, сделать ее тоньше.

Что нужно, чтобы кутикула росла медленнее?

1. Не нужно срезать кутикулу. Чем чаще срезается кутикула, тем быстрее и плотнее она растет. Поэтому при следующем выполнении маникюра стоит нанести размягчающий гель для кутикулы и просто отодвинуть ее при помощи апельсиновой палочки или пушера.
2. Выполните ванночку. В теплую воду стоит добавить морскую соль, отвар цветов и трав. В такой ванночке стоит держать руки в течение 10 минут. 
3. Используйте масло для кутикулы. Можно конечно приобрести такое средство в магазине или аптеке, а можно приготовить самостоятельно. Нужно смешать две столовых ложки масла жожоба, 10 капель эфирного масла лаванды, лимона, мирры, жидкий витамин Е. Средство необходимо хранить в темной стеклянной бутылочке в холодильнике.
4. Правильное выполнение маникюра. На кутикулу стоит нанести приготовленное масло, но держать не более двух минут. После этого кутикула стала мягкой и можно ее отодвинуть при помощи апельсиновой палочки. Такую манипуляцию стоит выполнять дважды в неделю. Одновременно удастся смягчить кутикулу, улучшить кровоток и стимулировать рост ногтей.

Какой маникюр лучше выполнять для замедления роста кутикулы?

Однозначно, если вы хотите замедлить рост кутикулы, а не стимулировать его, придется отказаться от обрезного маникюра.

В пору придется необрезной сухой маникюр. Во время его выполнения кутикула не обрезает, а обрабатывается при помощи специального смягчающего средства, которое очищает и дезинфицирует кожу. Для этого чаще всего используются составы с фруктовыми кислотами, растительными экстрактами, маслами.

Средство наносится на область кутикулы, и подождать пока оно впитается, после этого палочкой из апельсинового дерева или пушером стоит медленно отодвинуть кутикулу к околоногтевым валикам. Тем, кто боится повредить матрикс и травмировать ноготь, поможет палочка с резиновым наконечником.

Специалисты уверяют, что полностью остановить рост кутикулы невозможно, ведь она растет вместе с ногтевой пластиной. При помощи масел удается замедлить рост, размягчить ее. У производителей косметических продуктов есть целые линейки масел, бальзамов, специальных карандашей, которые призваны замедлить рост кутикулы. Но главное условие состоит  в регулярности их использования.

В нашем интернет-магазине «Красуня» Вы сможете приобрести все необходимое оборудование для аппаратного маникюра ,  включая  маникюрный столы и вытяжки по доступной цене!   

Ремувер для удаления кутикулы в виде карандаша

Существует огромное множество средств для удаления кутикулы в разных вариантах флакона, и поэтому часто сложно сориентироваться, какое подойдет именно вам. Одни более агрессивные нужны для удаления толстой и грубой кутикулы, но способны пережечь тонкую. Другие сушат кожу. Третьи подходят только для обрезного маникюра. И так далее.

Я надеюсь, что моему читателю не нужно рассказывать, зачем нужно средство для удаления кутикулы, ведь само название говорит о его назначении:) Оно используется в обрезном и европейском (необрезном) маникюре. Можно, конечно, использовать и метод распаривания кутикулы в ванночке вместо средства, но это намного более длительно и уже устарело (если, конечно, вместе с ванночкой вы не проводите лечебные процедуры).

Существует несколько видов упаковки ремувера:

1. С кисточкой во флаконе, который внешне очень похож на лак.
2. С пипеткой в бутыле – оригинальное и экономичное решение, но редко где найдешь.
3. В пластиковом флаконе с носиком дозатором, напоминает крем.
4. В баночке – здесь потребуется найти дополнительный инструмент для нанесения.
5. В виде карандаша (маркера) с кисточкой.

В этой статье я хочу рассказать о средстве для удаления кутикулы в виде карандаша на примере FOX Cuticle Eraser Marker и поведать о нюансах выбора ремувера по типу кутикулы и кожи.

Чем удобен карандаш?

• Мобильность. Им можно пользоваться даже в пути (поезде, машине и др.), а вот открытая бутылочка может в движении разлиться.
• Удобство. Держать карандаш привычно, поэтому удобнее, чем кисть.
• Дешево. Средство в карандаше обойдется дешевле, но и объем его будет меньше.

Минусы

• Не экономичный расход. Это происходит из-за слишком толстой кисти и сложности контроля количества выдавленного средства.

FOX Cuticle Eraser Marker

Теперь рассмотрим работу с карандашом для удаления кутикулы FOX Cuticle Eraser Marker. Объем средства – 5 мл.

Состав: полимерный бескислотный мономер, этилацетат, нитроцеллюлоза, ацетил трибутилцетрата, неопентил, гликоль, ангидрид сополимера, изопропиловый спирт.

Чтобы выдавить каплю средства, необходимо покрутить колпачок по часовой стрелке, при этом будут слышны характерные щелчки.

Само средство прозрачное и по консистенции напоминает гель. Это позволяет наносить его достаточно экономно. Одной капли (как на фото выше) мне хватило на 5 ногтей.

Кисточка белая, широкая, пушистая и очень мягкая. Имеет приятный запах, напоминающий кокос. Ею удобно распределять средство, но необходимо тщательно вытирать и даже промывать после использования, иначе оно может засохнуть и усложнить дальнейшее использование кистью.

Время действия для размягчения кутикулы 30-60 секунд, что сравнительно быстро!

Покажу работу средства на примере обрезного маникюра, который я всегда использую.

Шаг 1. Наношу средство в область кутикулы тонким слоем. Жду 1 минуту для размягчения.

Шаг 2. Отодвигаю кутикулы пушером (можно использовать апельсиновую палочку) и удаляю средство салфеткой (можно смыть водой и высушить).

Шаг 3. Обрезаю кусачками непрерывным срезом.

Шаг 4. Наношу масло для кутикулы. И вот так выглядит результат:

Как выбрать ремувер для кутикулы?

А теперь к вопросу, как выбрать средство для удаления кутикулы, исходя из ваших потребностей.

1. Для европейского маникюра и для тонкой кутикулы лучше всего использовать мягкие щадящие средства с фруктовыми кислотами, они не пересушивают кожу вокруг ногтей (ищите на упаковке пометку A.H.A).
2. Выбирайте ремувер для своего типа кожи: чувствительная, сухая и т.п. – это также часто указывается производителем.
3. Избегайте средств, в составе которых имеется щелочь и кислота – передержав его, можно получить ожог (покраснение кожи).
4. Некоторые ремуверы подходят и для педикюра (на ногах кутикула более толстая, но ранимая), в том числе и для размягчения ороговевшей кожи стоп.
5. Гипоаллергенные средства потребуются тем, у кого возникала реакция на коже на обычную жидкость.
6. Во многих средствах в качестве добавки используются масла, они оказывают дополнительный уход за областью у кутикулы.

Производители могут указывать и другие «способности» средства: заживление ран, предотвращение появления заусенец, защита ногтевой пластины, замедление роста кутикулы и пр. Не знаю, насколько этому можно верить, главное, чтобы оно хорошо справлялось с основной задачей.

Уверена, что вы испробуете не одно средство, прежде чем найти идеальное для себя, надеюсь лишь, что мои советы помогут сократить длинный путь поиска!

Карандаш FOX предоставлен для обзора магазином krasotkapro.ru

Масло Для Замедления Роста Кутикулы – Telegraph

🛑 👉🏻👉🏻👉🏻 ИНФОРМАЦИЯ ДОСТУПНА ЗДЕСЬ ЖМИТЕ 👈🏻👈🏻👈🏻

Ходить к мастеру можно не чаще раза в месяц.
Аппаратный и обрезной маникюр часто заканчиваются неудачно из-за кутикулы, на месте которой остаются раны. Уход за кутикулой является главным элементом поддержания ногтей в здоровом состоянии. Для замедления роста кутикулы придумано много средств. Маникюр «на миллион» будет выглядеть идеальным дольше с подходящим средством.
Ниже представлены 4 средства по уходу за кутикулой, которые надолго остановят её рост.
В составе средства экстракты алоэ вера и лотоса. Оказывает противовоспалительное действие и надолго останавливает рост кутикулы.
Профессиональный гель размягчает и увлажняет кутикулу, не повреждая кожу и ногти. Регулярное использование сильно замедлит роста кутикулы.
В составе экстракт фиалки, который увлажняет кожу вокруг ногтя и делает её мягкой и нежной. При регулярном применении этого средства рост кутикулы замедляется, а маникюр долго выглядит ухоженно.
Крем содержит антиоксиданты и стимулирует рост здоровых ногтей. Оказывает смягчающее действие на кутикулу, а также обладает антисептическими и бактерицидными свойствами. При регулярном применении рост кутикулы надолго останавливается, кутикула смягчается.
Представленные средства подходят и для домашнего ухода, и для использования в салоне. руки нуждаются в заботе, ведь ухоженный маникюр — составная часть опрятного человека.

© 2011-2021 — Покатим!

Умный портал полезной информации

© 2011-2021 — Покатим!

Умный портал полезной информации

Мы используем файлы Cookies, которые помогают обеспечить удобные и безопасные для посетителей условия пользования сайтом. Продолжив интернет-сессию или нажав кнопку «Согласен», вы даете свое согласие на использование cookie-файлов. Подробнее. Да, согласен

Категория:
Ухаживающая косметика

Тип:
Масло для ногтей и кутикулы
Эффективное масло для кутикулы Planet nails — залог здоровой и ухоженной кутикулы.
Эффектнее будет просто засунуть ногти в ананас(+фото)
Хорошее маселко для ухода за кутикулой
Вдарим лимонным маслом Maxi по свежесрезанной кутикуле!
Он всегда рядом, и всегда готов помочь! А еще у него очень приятный аромат…..(Фото) И это все ОН- Аромокарандаш!
Действенное масло для ногтей! Но о чем расскажет нам состав?
Хорошее маслице с безумно приятным ароматом (+ФОТО)
Салонный уход за кутикулой за копейки. Потрясающее масло Catrice Nail Oil, которое я рекомендую всем без исключения.
Лучшее, что было с моими ногтями. Потрясающее масло для ногтей и кутикулы с нежнейшим ароматом зелёного яблока. Ухоженные пальчики за пару секунд.
Кот-космонавт. Внимание прохожих вам обеспечено. Но так ли удобен рюкзак? Кому подойдёт, а кому лучше выбрать стандартную сумку-переноску.
Спасение для кожи после 30 лет!! Мои результаты. Дёшево, просто и без салонов.
До ультразвуковой чистки у меня было серое лицо… И я даже не подозревала об этом. Теперь у меня чистые поры, сияющая кожа и здоровый цвет лица… и гладенький лоб. Все покажу.
Отличное увлажнение по бюджетной стоимости
При всем уважении к L’anza — продукт своих денег не стоит
Превосходное масло для кутикулы и ногтей. Не понимаю, как раньше обходилась без него 🙈
Могут ли длинные ресницы стать ещё длиннее? Я в это не верила, пока не увидела результат своими глазами! Фото «До» и «После» в отзыве!
🐌Универсальный гель для красоты и здоровья кожи! Готовимся к лету. 🐌

Оплата авторам отзывов
Часто задаваемые вопросы
Служба поддержки
Правила
Партнерская программа
Представителям брендов

Копирование разрешается только с письменного разрешения администрации сайта. Пользовательское соглашение .
По вопросам работы сайта пишите на [email protected] . Реклама на сайте . Политика конфиденциальности .
☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀ Доброго времени суток! ☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀
☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀☀
Масло для кутикулы является неотъемлемым и важным средством для ухода за ногтями и поддержанию красивого маникюра. И важно найти масло, подходящие именно вашим ноготкам и кутикуле. В моем маникюрном арсенале были масла как из экономичного сегмента так и более дорогие. О масле Dadi Oil от компании Famous Names я впервые услышала больше года назад, но попробовать решила только сейчас. И так, расскажу о своих впечатлениях.
დ Место покупки: ИМ KRASOTKAPRO .
დ Срок годности: 12 месяцев с момента открытия.
Famous Names – созданный бывшими владельцами CND знаменитый американский бренд.
Средства от CND , по моему субъективному мнению, являются самыми качественными и действенными. Ни разу не разочаровывалась в их продуктах, а масло Solar Oil всегда спасало мои ноготки и ухаживало за кутикулой.
Масло Dadi Oil при ежедневном применении обладает накопительным эффектом и замедляет рост кутикулы. Уже после первой недели использования профессионалы и любители замечают, что классический маникюр можно делать реже: увлажнённая и напитанная кутикула нарастает медленней, становится тонкой и эластичной, быстро заживают ранки и порезы. Кроме того, искусственное покрытие (например лак или гель-лак) приобретает глянец и смотрится свежим, даже если нанесено давно.​
დ Упаковка: фиолетового цвета, с необходимой информацией на каждой стороне.
დ Флакон: изготовлен из прочного стекла, тяжелый. Колпачок плотно закручивается.
დ Кисточка: обычная как у большинства лаков для ногтей. Вытянутая и тонкая, излишек масла можно убрать о стенки флакона.
დ Цвет: прозрачное масло золотисто-желтого цвета, без осадка.
დ Аромат: масло состоит из большого количества эфирных масел (подробнее ниже), преимущественно цитрусовый , для меня тяжелый аромат. Если не любите цитрусовые композиции, но хотите попробовать масло, у производителя есть разные объемы этого продукта от 3,75 мл.
დ Состав: много-много полезных компонентов! Одно из лучших по составу масел, которые у меня были.
Впитывание: если нанести масло на кутикулу (тонкий слой) и оставить его, то впитываться будет долго (Solar Oil от CND впитывался очень быстро). После нанесения втираю масло в кутикулу.
დ Моя цель: перейти от обрезного маникюра к необрезному, для меня это не так просто, хочется быстрого результата.
დ Использование и результат: наношу масло на кутикулу не реже 2х раз в день.
Лучшее вложение, результат стоит потраченных средств! Для получения результата нужно пользоваться маслом ежедневно, лучше несколько раз в день, если использовать раз в неделю, а потом ждать результата, то вряд ли он будет.
❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤ СПАСИБО ЗА ВНИМАНИЕ! ❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤❤

Как остановить рост кутикулы навсегда за 21 день — мой способ
Средства, предотвращающие рост кутикулы • Форум косметика и макияж
Маникюр «на миллион». 4 средства, которые надолго замедлят рост кутикулы
Масло для ногтей и кутикулы Famous Names Dadi’ Oil — « Невероятно…»
5 советов, как уменьшить рост кутикулы — www.ellegirl.ru
Как правильно ухаживать за кутикулой в домашних условиях
Самые эффективные средства для необрезного маникюра и мега проблемной…
Как ухаживать за кутикулой : 10 советов от экспертов
3. Продукты для замедления роста кутикулы необходимо использовать регулярно
ТОП-10 лучших средств для удаления кутикулы
Уход за кутикулой в домашних условиях: 5 правил и рейтинг 3 средств…
Масло для замедления роста кутикулы с ананасом (карандаш для удаления…)
Масло для ногтей и кутикулы – польза, удовольствие, эффект
Масло для кутикулы – незаменимый помощник для ухода за ногтями
Купить Термо Гель Лак Для Ногтей
Дизайн Ногтей Стемпингом На Гель Лак Фото
Как Разводить Хну Для Бровей Irisk
Масло Для Замедления Роста Кутикулы

что это, кому рекомендовано и как выбрать

Все об уходе и восстановлении ногтевой кутикулы

     Красивые и ухоженные руки – это не только модный маникюр и гладкая кожа, но и аккуратно обработанные кутикулы ногтя.

Именно кутикулы предательски выдают привычки хозяйки, степень ухоженности рук и заботы о себе. Грубая и толстая кожица у лунки ногтя способна испортить весь wow-эффект образа! Между тем, есть специальное масло для кутикулы, которое достаточно нанести один раз день, чтобы ногти были в порядке.

Масло для кутикулы ногтей – что это

         Масло для кутикулы ногтей – это косметическое средство, в составе которого масла натурального или химического происхождения, витамины, смолы, полезные вытяжки и ароматические компоненты.

Чаще всего используют смесь нескольких масел с явной доминантой какого-то благородного природного с хорошим стойким запахом, например, жасмин, роза, сандал.

Обогащенная смесь используется при маникюре и ежедневном домашнем уходе для питания, смягчения, ускорения заживления и замедления роста кутикулы.

Кстати! Кутикула – защитный кожный ободок у лунки ногтя, который предохраняет матрицу и подложку ногтя от попадания воды, воздуха, бактерий!

         Человек не может полностью избавится от кутикулы – она выполняет важную защитную функцию, но с помощью правильного ухода и масла может сделать ее мягкой, менее заметной, чтобы она легко сдвигалась или максимально обрезалась ради красоты ногтя.

Кому рекомендовано

         Масло для ногтей такая же обязательная вещь для красивых и ухоженных рук, как и крем. Должно быть в косметичке каждого, невзирая на пол и возраст.

Показания к применению:

• плотно прилегающая кутикула, склонная к врастанию в ногтевую пластину;
• неэластичная кутикула, которая часто травмируется и рвется, такое часто бывает при очень сухой и нежной коже рук;
• грубая и заметная полоска кожи;
• быстро растущая кутикула, которая настолько плотно прилегает к пластине, что ее невозможно сдвинуть к основанию ногтя;
• слишком тонкая кутикула, которую не рекомендуют обрезать.

Маслом всегда пользуются во время маникюра (до и после процедуры), чтобы смягчить кутикулу и как можно больше открыть ногтевую пластину. Также наносят перед длительными работами с водой или мелкими деталями и после, когда кутикула наиболее подвержена травме.

И даже если с кутикулой все в порядке, все равно рекомендовано пользоваться маслом. Оно смягчает, питает, защищает нежную кожицу вокруг ногтя, восстанавливает после микротравм, избытка влаги, перепадов температур. Придает ухоженный вид ногтям.

Как правильно пользоваться

         Масло для кутикул – это средство для наружного применения, наносится кисточкой или пипеткой в область чуть выше лунки ногтя на кожу пальца.

         Наносить минимум один раз в день, можно несколько, нет никаких ограничений. Лучше всего на ночь, чтобы масло хорошо впиталось.

         Пошаговая инструкция:

• на чистые и сухие руки нанести одну каплю масла в район лунки ногтя;
• втирать около 30 секунд или минуты легкими массажными движениями по направлению от свободного края ногтя к лунке и коже пальца и боковым валикам;

Важно! Ни в коем случае не «задирать» кутикулу, не допускать ее сильного натяжения и разрыва!        

• промокнуть излишки масла салфеткой и оставить до полного впитывания.

Масло для кутикул хорошо и быстро впитывается, не оставляет ощущения жирных пальцев, лишь приятный аромат натуральных ингредиентов.

Для усиления эффекта масло можно чуть подогреть (на водяной бане до температуры чуть выше комнатной), наносить на распаренные руки.

Совет! После нанесения, когда масло впиталось и кутикула стала мягкой и податливой, ее можно аккуратно сдвинуть палочкой апельсинного дерева, чтобы она неплотно прилегала к ногтевой пластине!

Как выбрать масло для ногтей

         При выборе масла для ногтей важно знать, какие виды бывают и чем одно отличается от другого.

Действие   

         Масло может быть как широкого спектра действия для ежедневного применения, так и с узко направленным – увлажнение, защита, смягчение, питание, укрепление.

         Масло для кутикул нередко называют маслом для ногтей, потому что его полезно наносить на всю ногтевую пластину и кожу вокруг.

Форма выпуска

         Масло для ногтей можно подобрать в любой форме выпуска, главное, чтобы удобно было пользоваться:

18. жидкость во флаконе, напоминающим лак, с пипеткой или кисточкой;
18. масло-карандаш с экономным дозатором, позволяет наносить точечно, только на кутикулу;
18. в составе крема для рук.

Масла можно комбинировать, например, в офисе пользоваться карандашом или кремом, а на ночь наносить капельку пипеткой.

Состав

         Во флаконе может быть одно масло или смесь, которая действует эффективнее и решает множество задач — такие составы называются двухфазными. Дополнительно масло обогащается витаминами, смолами, вытяжками из полезных растений.

         Также в масло часто добавляются шиммеры для визуального эффекта.

Производитель

         Лучше ориентироваться на проверенных и известных производителей, которые отвечают за качество продукции, используют новые технологии, применяют инновационные формулы.

         Хорошо зарекомендовали себя RuNail , YOKO , BLOOM , MILV.

         Ухоженные кутикулы — маленький штрих безупречного образа! Всего пара капель масла для ногтей в день и регулярный аккуратный маникюр гарантируют, что руки всегда будут в порядке!

gelopt » Правила ухода за нарощенными ногтями

Все новые и новые технологии, постоянно появляющиеся и развивающиеся, дают возможность прекрасной половине человечества стать еще более неотразимой. Стать обладательницей превосходного маникюра за короткое время — что может быть проще. Но нарощенные ногти тоже нуждаются в уходе, пусть и не таком трудоемком, как натуральные. Особенностям ухода за искусственными ногтями, которые позволят им выглядеть привлекательными еще дольше, и посвящена эта статья.

Подготовка перед процедурой

Перед наращиванием ногтей, за несколько дней, рекомендуется провести процедуры по укреплению и лечению ногтей, а также сделать маникюр, поскольку неаккуратная разросшаяся кутикула значительно затруднит процесс наращивания ногтей. Длина наращиваемого ногтя зависит исключительно от вашего личного желания, однако следует помнить о том, что края ногтя, выходящие за пределы ногтевого ложа, должны быть короче самого ложа.

Оптимальным является соотношение, при котором кончик вдвое короче самого ногтя, поскольку оно является гарантией того, что ноготь не сломается в ближайшем будущем.

Первые дни после процедуры

Первые несколько дней после наращивания следует особенно осторожно обращаться с нарощенными ногтями, несмотря на всю их прочность. Для снятия лака с нарощенных ногтей можно использовать только средства, не содержащие ацетона, оказывающего негативное воздействие на искусственные ногти. Об этом нужно помнить и при использовании бытовой химии, которая во многих случаях может содержать ацетон.

Повседневный уход

Откажитесь от использования ножниц и кусачек, иначе рискуете повредить ноготь. Для ухода следует использовать специальные пилки и полировщики для искусственных ногтей. Подпиливание же гелевых ногтей можно доверить только мастеру. Несмотря на прочность и способность выдержать нагрузку большую, нежели натуральный ноготь, не стоит рисковать и без опаски поднимать тяжелые предметы, могущие упасть и повредить ногтевую пластину. Ведь повреждение искусственного ногтя приведет и к повреждению натурального, к которому он и крепится, а это не самое приятное происшествие.

Став счастливой обладательницей прекрасных ноготков нельзя забывать об уходе за кутикулой. Применяйте смягчающие витаминизированные крема и масла, а также при необходимости средства для замедления роста кутикулы.

Резкие перепады температур могут повредить структуру ногтей, сделать их ломкими и хрупкими, поэтому нарощенные ногти нуждаются в бережном и внимательном отношении.

Обработка ногтей

Если вы являетесь активной пользовательницей лаков для ногтей, обязательно обратите внимание, чтобы в выбранном лаке содержались акрил или гель, причем вовсе не обязательно покупать самый дорогой, встречаются качественные лаки и с невысокой стоимостью. Перед применением не забудьте проверить срок годности и консистенцию лака, а также соблюсти меру при накладывании лака на поверхность ногтя, так как его избыток не даст ногтю «дышать», что неблагоприятно скажется на внешнем виде. Искусственные ногти значительно дольше, чем натуральные держат лак.

Было бы неправильным считать, что нарощенные ногти можно носить всю жизнь, ведь при наращивании ваш натуральный ноготь не останавливает свой рост, а продолжает функционировать. Это ведет к появлению так называемой стрессовой зоны, не покрытой никаким моделирующим материалом и способной вызвать отламывание ногтя. Коррекцию искусственных ногтей необходимо проводить примерно раз в три недели, тогда ногти надолго сохранят ухоженный и презентабельный внешний вид. Срок в три недели обусловлен скоростью отрастания родного ногтя. Процедура коррекции занимает около часа в зависимости от состояния ногтей и вида наращивания. Нарощенным ногтям категорически противопоказан аппаратный маникюр, поскольку он ведет к их ослаблению и ломкости.

Попытка самостоятельного снятия нарощенного ногтя может грозить вашим ноготкам тем, что они станут сухими, тонкими и непрочными, поэтому процедуру снятия необходимо проводить в салоне, у профессионала, который занимался наращиванием ваших ногтей.

Натуральные ногти под моделирующим покрытием могут пожелтеть. Для возвращения первоначального цвета достаточно на несколько минут опустить их в лимонный сок.

Соблюдая несложные правила ухода за искусственными ногтями, вы надолго сохраните ваш руки в идеальном состоянии, нужно лишь беречь ногти от попадания вредных веществ и неблагоприятного воздействия окружающей среды. Красивые и ухоженные ногти — это неотъемлемая часть женской красоты и привлекательности, ведь они являются общим показателем здоровья организма, а с нарощенными ногтями у вас появится еще больше возможностей проявить фантазию в дизайне ваших ноготков.

Ингибирование пищевого эндосимбионта глифосатом отменяет взаимное влияние на синтез кутикулы у Oryzaephilus surinamensis

1.

Sikorski, J. A. & Gruys, K. J. Понимание молекулярного механизма действия глифосата с EPSP-синтазой: доказательства в пользу модели аллостерического ингибитора. В соотв. Chem. Res. 30 , 2–8 (1997).

CAS Google ученый

2.

Duke, S.O. & Powles, S.Б. Глифосат: гербицид, применяемый один раз в столетие. Pest Manag. Sci. 64 , 319–325 (2008).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

3.

Siehl, D. L. Ингибиторы EPSP-синтазы, глутаминсинтетазы и синтеза гистидина. В «Активность гербицидов: токсикология, биохимия и молекулярная биология», тома. 1 (ред. Майкл Роу, Р., Бертон, Дж. Д. и Кур, Р. Дж.) 37 (IOS Press, 1997).

4.

Шило Т., Зигьер Л., Рубин Б., Вольф С. и Эйзенберг Х. Механизм контроля глифосатом Phelipanche aegyptiaca . Planta 244 , 1095–1107 (2016).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

5.

Цин В. и Галили Г. Новые сведения о путях биосинтеза шикимата и ароматических аминокислот в растениях. Мол. Завод 3 , 956–972 (2010).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

6.

McFall-Ngai, M. et al. Животные в бактериальном мире — новый императив для наук о жизни. Proc. Natl. Акад. Sci. США 110 , 3229–3236 (2013).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

7.

Хакер, С. Д. и Гейнс, С. Д. Некоторые последствия прямого положительного взаимодействия для видового разнообразия сообщества. Экология 78 , 1990–2003 (1997).

Google ученый

8.

ван ден Бош, Т. Дж. М. и Велте, К. У. Детоксикация симбионтов у сельскохозяйственных насекомых-вредителей. Microb. Biotechnol. 10 , 531–540 (2017).

PubMed PubMed Central Google ученый

9.

Lemoine, M. M., Engl, T. & Kaltenpoth, M.Микробные симбионты, расширяющие или ограничивающие пространство абиотических ниш у насекомых. Curr. Opin. Insect Sci. 39 , 14–20 (2020).

PubMed PubMed Central Google ученый

10.

Фельдхаар, Х. Бактериальные симбионты как медиаторы экологически важных свойств насекомых-хозяев. Ecol. Энтомол. 36 , 533–543 (2011).

Google ученый

11.

Моран, Н. А. Симбиоз. Curr. Биол. 16 , R866 – R871 (2006).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

12.

Моран Н. А. и Теланг А. Симбионты насекомых, ассоциированные с бактериоцитами. Bioscience 48 , 295–304 (1998).

Google ученый

13.

Оливер К. М. и Мартинес А. Дж. Как местные микробы изменяют экологически важные черты насекомых. Curr. Opin. Insect Sci. 4 , 1–7 (2014).

PubMed PubMed Central Google ученый

14.

Дуглас, А. Э. Микробное измерение в экологии питания насекомых. Функц. Ecol. 23 , 38–47 (2009).

Google ученый

15.

Дуглас А. Е. Питание насекомых витамином B: вклад диеты, микробиома и горизонтально приобретенных генов. Curr. Opin. Insect Sci. 23 , 65–69 (2017).

PubMed PubMed Central Google ученый

16.

Vigneron, A. et al. Насекомые перерабатывают эндосимбионтов, когда польза заканчивается. Curr. Биол. 24 , 2267–2273 (2014).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

17.

Андерсен С.О. Склеротизация кутикулы и дубление.В Молекулярная биология и биохимия насекомых (ред. Гилберт, Л. И.) 167–192 (Elsevier, 2012).

18.

Анбуцу, Х. и Фукацу, Т. Симбиоз для образования кутикулы насекомых. В Cellular Dialogues in the Holobiont (ред. Бош, Т. К. Г. и Хадфилд, М. Г.) 201–216 (CRC Press, 2020).

19.

Anbutsu, H. et al. В основе твердости кутикулы жуков лежит мелкогеномный симбионт. Proc. Natl. Акад. Sci. США 114 , E8382 – E8391 (2017).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

20.

Ли, А. П. и Лонг, Т. Дж. Оценка генотоксического потенциала глифосата. Фундамент. Прил. Toxicol. 10 , 537–546 (1988).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

21.

Смит, Э. А. и Оем, Ф. В. Биологическая активность глифосата для растений и животных: обзор литературы. Вет. Гм. Toxicol. 34 , 531–543 (1992).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

22.

Smith, D. F. Q. et al. Глифосат подавляет меланизацию и увеличивает восприимчивость насекомых к инфекции. bioRxiv (2020).

23.

Торретта В., Кацояннис И., Виотти П. и Рада Э. Критический обзор воздействия глифосата на окружающую среду и людей через цепочку поставок пищевых продуктов. Устойчивое развитие 10 , 950 (2018).

Google ученый

24.

Снайдер, А. К. и Рио, Р. В. М. Биосинтез фолиевой кислоты (витамина B 9) « Wigglesworthia morsitans » способствует приспособленности хозяина мухи цеце. заявл. Environ. Microbiol. 81 , 5375–5386 (2015).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

25.

Мотта, Э. В. С., Райманн, К. и Моран, Н. А. Глифосат нарушает микробиоту кишечника медоносных пчел. Proc. Natl. Акад. Sci. США 115 , 10305–10310 (2018).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

26.

Motta, E. V. S. et al. Пероральное или местное воздействие глифосата в составе гербицида влияет на микробиоту кишечника и выживаемость медоносных пчел. заявл. Environ. Микробиол . 86 , e01150–20 (2020).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

27.

Klein, A. et al. Новая внутриклеточная мутуалистическая бактерия в инвазивном муравье Cardiocondyla obscurior . ISME J 10 , 376–388 (2016).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

28.

Wu, D. et al.Метаболическая комплементарность и геномика двойного бактериального симбиоза снайперов. PLoS Biol. 4 , e188 (2006).

PubMed PubMed Central Google ученый

29.

Данн, Дж. А. и Уильямс, Р. Дж. Каскадные вымирания и коллапс сообществ в модельных пищевых сетях. Philos. Пер. R. Soc. B Biol. Sci 364 , 1711–1723 (2009).

Google ученый

30.

Данн, Дж. А., Уильямс, Р. Дж. И Мартинес, Н. Д. Сетевая структура и потеря биоразнообразия в пищевых сетях: надежность увеличивается с подключением. Ecol. Lett. 5 , 558–567 (2002).

Google ученый

31.

Memmott, J. et al. Утрата биоразнообразия и структура экологической сети. В Экологические сети: связь структуры с динамикой пищевых сетей (ред. Паскуаль, М. и Данн, Дж. А.) 325–347 (Oxford University Press, 2005).

32.

Liao, C., Upadhyay, A., Liang, J., Han, Q. & Li, J. 3,4-дигидроксифенилацетальдегидсинтаза и образование кутикулы у насекомых. Dev. Комп. Иммунол. 83 , 44–50 (2018).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

33.

Мутукришнан, С., Мерцендорфер, Х., Аракане, Ю. и Крамер, К. Дж. Метаболизм хитина у насекомых. В Молекулярная биология и биохимия насекомых (изд.Гилберт, Л. И.) 193–235 (Elsevier, 2012).

34.

Виртц, Р. А. и Хопкинс, Т. Л. Концентрации тирозина и фенилаланина в гемолимфе и тканях американского таракана, Periplaneta americana , во время метаморфоза. J. Insect Physiol. 20 , 1143–1154 (1974).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

35.

Гиббс, А. Г. и Раджпурохит, С.Кутикулярные липиды и водный баланс. В Insect Hydrocarbons (ред. Бломквист, Дж. Дж. И Багнерес, А.-Дж.) 100–120 (Cambridge University Press, 2010).

36.

Хакман Р. Х. Химия кутикулы насекомых. in Физиология Insecta (изд. Родштейн, М.) 215–270 (Academic Press, 1974).

37.

Mattson, W. J. Herbivory в отношении содержания азота в растениях. Annu. Rev. Ecol. Syst. 11 , 119–161 (1980).

Google ученый

38.

Kumar, V. et al. Распределение аминокислот в хозяйственно важных растениях: обзор. Biotechnol. Res. Innov 3 , 197–207 (2019).

Google ученый

39.

Но, М. Ю., Мутукришнан, С., Крамер, К. Дж. И Аракан, Ю. Формирование кутикулы и пигментация у жуков. Curr. Opin. Insect Sci. 17 , 1–9 (2016).

Google ученый

40.

Sterkel, M. et al. Детоксикация тирозином — важная черта в истории жизни членистоногих, питающихся кровью. Curr. Биол. 26 , 2188–2193 (2016).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

41.

Херрманн, К. М. и Уивер, Л. М. Путь шикимата. Annu. Rev. Plant Biol. 50 , 473–503 (1999).

CAS Google ученый

42.

Engl, T. et al. Древний симбиоз придает устойчивость к высыханию хранящимся зерновым жукам-вредителям. Мол. Ecol. 27 , 2095–2108 (2018).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

43.

Hirota, B. et al. Новый чрезвычайно удлиненный внутриклеточный бактериальный симбионт поддерживает образование кутикулы у жука-вредителя. MBio 8 , 1–16 (2017).

Google ученый

44.

Boyer, S., Zhang, H. & Lempérière, G. Обзор методов контроля и механизмов устойчивости у насекомых, хранящихся в продуктах. Бык. Энтомол. Res. 102 , 213 (2012).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

45.

Паркс, Д. Х., Имелфорт, М., Скеннертон, К.T., Hugenholtz, P. & Tyson, G. W. CheckM: оценка качества микробных геномов, полученных из изолятов, отдельных клеток и метагеномов. Genome Res. 25 , 1043–1055 (2015).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

46.

Моран, Н. А., Маккатчеон, Дж. П. и Накабачи, А. Геномика и эволюция наследственных бактериальных симбионтов. Annu. Преподобный Жене. 42 , 165–190 (2008).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

47.

Маккатчеон, Дж. П. и Моран, Н. А. Чрезвычайное сокращение генома у симбиотических бактерий. Nat. Rev. Microbiol. 10 , 13–26 (2012).

CAS Google ученый

48.

Ван Левен, Дж. Т., Мейстер, Р. К., Саймон, К. и Маккатчеон, Дж. П. Симпатрическое видообразование в бактериальном эндосимбионте приводит к образованию двух геномов с функциональностью одного. Cell 158 , 1270–1280 (2014).

PubMed PubMed Central Google ученый

49.

Кэмпбелл М. А., Лукасик П., Саймон К. и Маккатчеон Дж. П. Идиосинкратическая деградация генома бактериального эндосимбионта периодических цикад. Curr. Биол. 27 , 3568–3575.e3 (2017).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

50.

Кэмпбелл, М.А. и др. Расширение генома посредством расщепления клонов и редукции генома эндосимбионта цикады Hodgkinia . Proc. Natl. Акад. Sci. США 112 , 10192–10199 (2015).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

51.

Chen, Y.C., Liu, T., Yu, C.H., Chiang, T.Y. & Hwang, C.C. Влияние смещения GC в данных секвенирования следующего поколения на сборку генома de novo . PLoS ONE 8 , e62856 (2013).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

52.

Козарева И. и др. Подготовка библиотеки секвенирования Illumina без амплификации способствует улучшенному картированию и сборке (G + C) -смещенных геномов. Nat. Методы 6 , 291–295 (2009).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

53.

Quail, M.A. et al. Рассказ о трех платформах секвенирования следующего поколения: сравнение секвенсоров Ion Torrent, Pacific Biosciences и Illumina MiSeq. BMC Genomics 13 , 1–13 (2012).

PubMed PubMed Central Google ученый

54.

Treangen, T. J. & Salzberg, S. L. Повторяющаяся ДНК и секвенирование следующего поколения: вычислительные проблемы и решения. Nat. Преподобный Жене. 13 , 36–46 (2012).

CAS Google ученый

55.

Sloan, D. B. et al. Параллельные истории горизонтального переноса генов способствовали значительному сокращению геномов эндосимбионтов у насекомых, питающихся соком. Мол. Биол. Evol. 31 , 857–871 (2014).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

56.

Zucko, J. et al. Глобальный анализ генома пути шикимовой кислоты показывает большую потерю генов у связанных с хозяином, чем у свободноживущих бактерий. BMC Genomics 11 , 628 (2010).

PubMed PubMed Central Google ученый

57.

Tokuda, G. et al. Поддержание путей синтеза незаменимых аминокислот в симбионте Blattabacterium cuenoti древесного таракана. Biol. Lett. 9 , 20121153 (2013).

PubMed PubMed Central Google ученый

58.

Kinjo, Y. et al. Параллельная и постепенная эрозия генома эндосимбионтов Blattabacterium из Mastotermes darwiniensis и Cryptocercus Wood Roaches. Genome Biol. Evol. 10 , 1622–1630 (2018).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

59.

Menzel, R. & Roth, J. Очистка продукта гена putA. Бифункциональный мембраносвязанный белок из Salmonella typhimurium, ответственный за двухступенчатое окисление пролина до глутамата. J. Biol. Chem. 256 , 9755–9761 (1981).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

60.

Zhou, Y., Zhu, W., Bellur, P. S., Rewinkel, D. & Becker, D. F. Прямая связь метаболизма и экспрессии генов в использовании пролина белка из Escherichia coli . Аминокислоты 35 , 711–718 (2008).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

61.

Сабри, З. Л., Камбхампати, С. и Моран, Н. А. Рециркуляция азота и обеспечение питательными веществами Blattabacterium , эндосимбионта тараканов. Proc. Natl. Акад. Sci. США 106 , 19521–19526 (2009).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

62.

Маккатчеон, Дж. П., Макдональд, Б. Р. и Моран, Н. А. Конвергентная эволюция метаболических ролей у бактериальных со-симбионтов насекомых. Proc. Natl. Акад. Sci. США 106 , 15394–15399 (2009).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

63.

Сабри, З. Л., Хуанг, К. Ю., Окусу, А., Моран, Н. А. и Нормарк, Б. Б. Возможности снабжения питательными веществами Узинура , эндосимбионта панцирных щитовок. Environ. Microbiol. 15 , 1988–1999 (2013).

CAS Google ученый

64.

Rosas-Pérez, T., Rosenblueth, M., Rincón-Rosales, R., Mora, J. & Martínez-Romero, E. Последовательность генома « Candidatus Walczuchella monophlebidarum» флавобактериального эндосимбионта LINLAVEIA (Hemiptera: Coccoidea: Monophlebidae). Genome Biol. Evol. 6 , 714–726 (2014).

PubMed PubMed Central Google ученый

65.

Kuriwada, T. et al. Биологическая роль эндосимбионта Nardonella в его долгоносике-хозяине. PLoS ONE 5 , e13101 (2010).

PubMed PubMed Central Google ученый

66.

Okude, G. et al. Новый ассоциированный с бактериоцитами плеоморфный симбионт зернового вредителя Rhyzopertha dominica (Coleoptera: Bostrichidae). Zool. Lett. 3 , 13 (2017).

Google ученый

67.

Хирота, Б., Мэн, X.-Y. & Fukatsu, T. Связанные с бактериомами rndosymbiotic бактерии Nosodendron древесных сокоедов (Coleoptera: Nosodendridae). Фронт. Microbiol. 11 , 2556 (2020).

Google ученый

68.

Хопкинс, Т. Л., Крамер, К. Дж. Склеротизация кутикулы насекомых. Annu. Преподобный Энтомол. 37 , 273–302 (1992).

CAS Google ученый

69.

Андерсен, С. О. Склеротизация кутикулы насекомых: обзор. Insect Biochem. Мол. Биол. 40 , 166–178 (2010).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

70.

Cao, G. et al. Новая 5-енолпирувилшикимат-3-фосфатсинтаза демонстрирует высокую толерантность к глифосату у Escherichia coli и растений табака. PLoS ONE 7 , e38718 (2012).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

71.

Моран, Н. А. и Беннет, Г. М. Мельчайшие крошечные геномы. Annu. Rev. Microbiol. 68 , 195–215 (2014).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

72.

Маккатчен, Дж. П., Бойд, Б. М. и Дейл, К. Жизнь эндосимбионта насекомого от колыбели до могилы. Curr. Биол. 29 , R485 – R495 (2019).

CAS Google ученый

73.

Salem, H. et al. Резкое сокращение генома пектинолитического симбионта травоядных. Cell 171 , 1520–1531 (2017).

CAS Google ученый

74.

Reis, F. et al. Бактериальные симбионты поддерживают соковое питание личинок и взрослую фоливию (полу) водных камышовых жуков. Nat. Commun. 11 , 1–15 (2020).

Google ученый

75.

Салем, Х., Флорез, Л., Херардо, Н. и Кальтенпот, М. Опыт вне тела: внеклеточное измерение передачи мутуалистических бактерий у насекомых. Proc. R. Soc. B Biol. Sci. 282 , 20142957 (2015).

Google ученый

76.

Salem, H. et al. Пищеварительный диапазон симбионта отражает широту растений-хозяев у травоядных жуков. Curr. Биол. 30 , 2875–2886 (2020).

CAS Google ученый

77.

Хансен, А. К., Перс, Д. и Рассел, Дж. А. Симбиотические растворы для ограничения азота и дисбаланса аминокислот в рационах насекомых. В Механизмы, лежащие в основе микробного симбиоза , т. 58 (под ред. Керри М. Оливер, Дж. А. Р.) 161–205 (Academic Press, 2020).

78.

Таннер Дж. Дж. Структурная биология катаболизма пролина. Аминокислоты 35 , 719–730 (2008).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

79.

Адамс, Э. и Франк, Л. Метаболизм пролина и гидроксипролинов. Annu. Rev. Biochem. 49 , 1005–61 (1980).

CAS Google ученый

80.

Bursell, E. Роль пролина в энергетическом метаболизме. В книге Energy Metabolism in Insects (ред. Downer R.G.H.) 135–154 (Springer, Бостон, 1981).

81.

Энгл, Т., Шмидт, Т. Х. П., Каниил, С. Н. и Клебш, Д. Метаболические затраты на питательный симбионт проявляются в задержке размножения у жуков-вредителей зерновых. Насекомые 11 , 717 (2020).

Google ученый

82.

Хосе де Соуза, Д., Деверс, С. и Ленуар, А. Эндосимбионты Blochmannia и их хозяин, муравей Camponotus Fellah : кутикулярные углеводороды и меланизация. C. R. Biol. 334 , 737–741 (2011).

PubMed PubMed Central Google ученый

83.

Zientz, E., Beyaert, I., Gross, R. & Feldhaar, H. Актуальность эндосимбиоза Blochmannia floridanus и муравьев-плотников на разных стадиях жизненного цикла хозяина. заявл. Environ. Microbiol. 72 , 6027–6033 (2006).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

84.

Oakeson, K. F. et al. Дегенерация генома и адаптация на начальной стадии симбиоза. Genome Biol. Evol. 6 , 76–93 (2013).

Google ученый

85.

Чонг, Р. А. и Моран, Н. А. Эволюционная потеря и замена Buchnera, облигатного эндосимбионта тлей. ISME J 12 , 898–908 (2018).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

86.

Маккатчеон, Дж. П. и Моран, Н. А. Функциональная конвергенция в сокращенных геномах бактериальных симбионтов, охватывающих 200 млн лет эволюции. Genome Biol. Evol. 2 , 708–718 (2010).

PubMed PubMed Central Google ученый

87.

Gerth, M., Gansauge, M. T., Weigert, A. & Bleidorn, C. Филогеномный анализ раскрывает происхождение и распространение пандемии Wolbachia . Nat. Commun. 5 , 1–7 (2014).

Google ученый

88.

Santos-Garcia, D., Silva, FJ, Morin, S., Dettner, K. & Kuechler, SM Универсальный Sodalis : новый ассоциированный с бактериомами эндосимбионт вируса Lygaeoid Henestaris halophilus (Heteroptera: Henestarinae) и критическое рассмотрение его эволюции. Genome Biol. Evol. 9 , 2893–2910 (2017).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

89.

Мотта, Э. В. и Моран, Н. А. Влияние глифосата на микробиоту кишечника медоносных пчел: влияние интенсивности, продолжительности и времени воздействия. Msystems 5 , e00268–20 (2020).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

90.

Хеландер, М., Пауна, А., Saikkonen, K. & Saloniemi, I. Остатки глифосата в почве влияют на прорастание и рост сельскохозяйственных культур. Sci. Отчетность 9 , 19653 (2019).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

91.

Кирс, Э. Т., Руссо, Р. А., Уэст, С. А. и Денлсон, Р. Ф. Санкции против хозяев и мутуализм в отношении бобовых и ризобий. Nature 425 , 78–81 (2003).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

92.

Whiteside, M. D., Digman, M. A., Gratton, E. & Treseder, K. K. Поглощение органического азота арбускулярными микоризными грибами в бореальных лесах. Soil Biol. Biochem. 55 , 7–13 (2012).

CAS Google ученый

93.

Файта М. Р., Кардозо М. М., Амандио Д. Т. Т., Орт А. И. и Нодари Р. О. Гербициды на основе глифосата и Nosema sp . микроспоридии редуцируют медоносную пчелу ( Apis mellifera L.) живучесть в лабораторных условиях. J. Apic. Res . 59 , 1–11 (2020).

Google ученый

94.

Wilson, A.C.C et al. Геномное понимание аминокислотных отношений гороховой тли Acyrthosiphon pisum и ее симбиотической бактерии Buchnera aphidicola . Insect Mol. Биол. 19 , 249–258 (2010).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

95.

Санчес-Байо, Ф. и Викхейс, К. А. Г. Глобальное сокращение энтомофауны: обзор его движущих сил. Biol. Консерв. 232 , 8–27 (2019).

Google ученый

96.

Вагнер, Д. Л. Насекомое вымирает в антропоцене. Annu. Преподобный Энтомол. 65 , 457–480 (2020).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

97.

Desneux, N., Decourtye, A. & Delpuech, J.-M. Сублетальное воздействие пестицидов на полезных членистоногих. Annu. Преподобный Энтомол. 52 , 81–106 (2007).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

98.

Гоулсон Д. Апокалипсис насекомых и почему это важно. Curr. Биол. 29 , R967 – R971 (2019).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

99.

Hallmann, C.A. et al. За 27 лет общая биомасса летающих насекомых на охраняемых территориях сократилась более чем на 75 процентов. PLoS ONE 12 , e0185809 (2017).

PubMed PubMed Central Google ученый

100.

Хейс, Т. Б. и Хансен, М. От тихой весны к тихой ночи: агрохимикаты и антропоцен. Элем. Sci. Антрополь . 5 , (2017).

101.

Боулер, Д.E., Heldbjerg, H., Fox, A. D., Jong, M. & Böhning-Gaese, K. Долгосрочное сокращение популяций европейских насекомоядных птиц и возможные причины. Консерв. Биол. 33 , 1120–1130 (2019).

PubMed PubMed Central Google ученый

102.

Bolger, A. M., Lohse, M. и Usadel, B. Trimmomatic: гибкий триммер для данных последовательности Illumina. Биоинформатика 30 , 2114–2120 (2014).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

103.

Вуд, Д. Э. и Зальцберг, С. Л. Кракен: сверхбыстрая классификация метагеномных последовательностей с использованием точного выравнивания. Genome Biol. 15 , 1–12 (2014).

Google ученый

104.

Вуд Д. Э., Лу Дж. И Лэнгмид Б. Улучшенный метагеномный анализ с помощью Kraken 2. Genome Biol. 20 , 257 (2019).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

105.

Банкевич А. и др. SPAdes: новый алгоритм сборки генома и его приложения для секвенирования отдельных клеток. J. Comput. Биол. 19 , 455–477 (2015).

Google ученый

106.

Laczny, C.C. et al. BusyBee Web: метагеномный анализ данных с помощью начального контролируемого биннинга и аннотации. Nucleic Acids Res. 45 , W171 – W179 (2017).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

107.

Азиз Р. К. и др. Сервер RAST: быстрые аннотации с использованием технологии подсистем. BMC Genomics 9 , 1–15 (2008).

Google ученый

108.

Аркин А. П. и др. KBase: База знаний по биологии энергетических систем США. Nat. Biotechnol. 36 , 566 (2018).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

109.

Krzywinski, M. et al. Circos: эстетика информации для сравнительной геномики. Genome Res. 19 , 1639–1645 (2009).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

110.

Прайс, М. Н., Дехал, П.С. и Аркин, А. П. FastTree 2 — деревья приблизительно максимального правдоподобия для больших выравниваний. PLoS ONE 5 , e9490 (2010).

PubMed PubMed Central Google ученый

111.

Татусов, Р. Л., Гальперин, М. Ю., Натале, Д. А., Кунин, Е. В. База данных COG: инструмент для анализа функций и эволюции белков в масштабе генома. Nucleic Acids Res. 28 , 33–36 (2000).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

112.

Edgar, R.C. MUSCLE: множественное выравнивание последовательностей с высокой точностью и высокой пропускной способностью. Nucleic Acids Res. 32 , 1792–1797 (2004).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

113.

Guindon, S. et al. Новые алгоритмы и методы для оценки филогении максимального правдоподобия: оценка производительности PhyML 3.0. Syst. Биол. 59 , 307–321 (2010).

CAS Google ученый

114.

Brettin, T. et al. RASTtk: модульная и расширяемая реализация алгоритма RAST для создания пользовательских конвейеров аннотации и аннотирования пакетов геномов. Sci. Отчет 5 , 8365 (2015).

PubMed PubMed Central Google ученый

115.

Li, L., Stoeckert, C. J. & Roos, D. S. OrthoMCL: идентификация групп ортологов для геномов эукариот. Genome Res. 13 , 2178–2189 (2003).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

116.

Канехиса, М., Сато, Ю. и Моришима, К. BlastKOALA и GhostKOALA: инструменты KEGG для функциональной характеристики последовательностей генома и метагенома. J. Mol. Биол. 428 , 726–731 (2016).

CAS Google ученый

117.

Overbeek, R. et al. SEED и быстрое аннотирование микробных геномов с использованием технологии подсистем (RAST). Nucleic Acids Res. 42 , D206–14 (2014).

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

118.

Вайс Б. и Кальтенпот М. Внутриклеточные симбионты, локализованные в бактериомах, у жуков, питающихся пыльцой, из рода Dasytes (Coleoptera, Dasytidae). Фронт. Microbiol. 7 , 1486 (2016).

PubMed PubMed Central Google ученый

119.

Данн, О. Дж. Множественные сравнения с использованием ранговых сумм. Technometrics 6 , 241–252 (1964).

Google ученый

120.

Танахаши, М. Нацумуши: Программное обеспечение для измерения изображений для энтомологических исследований. Энтомол. Sci. 21 , 347–360 (2018).

Google ученый

121.

Перес-Паласиос, Т., Баррозу, М.А., Руис, Дж. И Антекера, Т.Быстрая и точная процедура экстракции для анализа свободных аминокислот в образцах мяса с помощью ГХ – МС. Внутр. J. Anal. Chem . 2015 , 209214 (2015).

PubMed PubMed Central Google ученый

122.

Миллер Р. Одновременный Статистический Вывод (Springer, 1981).

123.

Engl, T., Kiefer, J.S.T. Данные из: Ингибирование пищевого эндосимбионта глифосатом отменяет взаимное влияние на синтез кутикулы у Oryzaephilus surinamenis . Макс Планк Soc. https://doi.org/10.17617/3.5l (2021 г.).

Нанокомпозиты на основе оксида графена и акарицида повышают акарицидную активность акарицидов против Tetranychus cinnabarinus путем прямого ингибирования транскрипции гена белка кутикулы

Оксид графена (GO), как многообещающий синергетический агент пестицидов против вредителей, имеет широкие перспективы применения в сельскохозяйственной сфере. Однако синергетический режим ГО с акарицидами остается неясным.Здесь впервые была сконструирована и охарактеризована наносистема доставки акарицидов с использованием нанолистов GO в качестве наноносителей для доставки четырех самых продаваемых в мире акарицидов (авермектин, бифеназат, этоксазол и спиродиклофен) для борьбы с Tetranychus cinnabarinus (паук, угрожающий урожаю). клещ-вредитель). Результаты показали, что ГО адсорбируется на кутикуле клещей и нарушает ее за счет связывания с белком кутикулы (CPR) и ингибирования экспрессии гена CPR, тем самым увеличивая проницаемость кутикулы клещей, что значительно повышает эффективность акарицидов.Кроме того, подавление гена CPR с помощью РНКи приводит к обезвоживанию, нарушению конструкции слоя кутикулы и увеличению проницаемости кутикулы и чувствительности клещей к ГО-акарицидам, что согласуется с синергетическим фенотипом ГО на акарицидах, демонстрируя, что молекулярный Механизм синергического действия ГО на акарициды против T. cinnabarinus опосредован низкоэкспрессируемым геном CPR. Использование GO-акарицидов в сельском хозяйстве сократит применение химических акарицидов и их неблагоприятное воздействие на здоровье населения и окружающую среду.

У вас есть доступ к этой статье

Подождите, пока мы загрузим ваш контент… Что-то пошло не так. Попробуйте снова?

гистохимических исследований эстераз в кутикуле и нервных тяжах четырех циклофиллидовых цестод на JSTOR

Абстрактный

Гистохимическая локализация неспецифической (простой) эстеразы и холинэстеразы и влияние ингибиторов эстеразы на эти ферменты были изучены на Hymenolepis diminuta, H.nana, Dipylidium caninum и Hydatigera taeniaeformis. Ферменты в основном локализованы в кутикуле и нервной системе, но их количественные и качественные различия от вида к виду. Исследования ингибирования показывают, что фермент, гидролизующий как ацетатные, так и тиохолиновые субстраты, является холинэстеразой, чувствительной к эсерину, фториду и органическому фосфату. Частичное ингибирование сильным основанием аммония и гидролиз двух различных эфиров холина указывает на то, что участвуют как ацетилхолинэстераза, так и псевдохолинэстераза.

Информация о журнале

Журнал паразитологии — официальное издание Американского общества паразитологов (ASP). Он издается непрерывно с 1914 года, когда он был основан Генри Болдуином Уордом. Журнал специализируется на общей паразитологии, а также на паразитах, имеющих медицинское, ветеринарное и экономическое значение. Основное внимание уделяется эукариотическим паразитам, хотя векторы для прокариотических организмов и вирусы также включены.Журнал печатается в издательстве Allen Press в Лоуренсе, штат Канзас, шесть раз в год. Доступны институциональные подписки. Членство в ASP включает получение журнала Parasitology, ежеквартального информационного бюллетеня и выдержек из ежегодных собраний; студенты могут присоединиться по значительно сниженной ставке. Журнал находится в сети через BioOne. Редактор журнала — д-р Майкл В.К. Сухдео. За дополнительной информацией о публикации в журнале обращайтесь в редакцию журнала journalofparasitology @ gmail.com. Для получения информации о членстве в ASP свяжитесь с обществом: http://amsocparasit.org/. Для получения информации о подписке обращайтесь на [email protected].

Информация об издателе

Allen Press играет жизненно важную роль в распространении знаний и информации. путем партнерства с организациями в научном, техническом и медицинском сообществе продвигать свои интересы и добиваться поставленных целей. Штаб-квартира в Лоуренсе, KS, Allen Press предоставляет полный спектр интегрированных услуг в широкие области управления контентом, онлайн-доставка и печать, ассоциация управление и издательские услуги.Allen Press — надежный партнер научных общества, профессиональные ассоциации и корпорации по всей стране.

Подавление Laccase 2 серьезно ухудшает загар кутикулы и устойчивость к патогенам во время метаморфоза куколки Anopheles sinensis (Diptera: Culicidae) | Паразиты и переносчики

1.

Сугумаран М. Единый механизм склеротизации кутикулы насекомых. Adv Insect Physiol. 1998. 27: 229–334.

2.

Сугумаран М.Химия склеротизации кутикулы. Adv Insect Physiol. 2010; 39: 151.

3.

Андерсен SO. Склеротизация кутикулы насекомых: обзор. Насекомое Biochem Mol Biol. 2010. 40 (3): 166–78.

CAS PubMed Статья Google ученый

4.

Хопкинс Т.Л., Крамер К.Дж. Склеротизация кутикулы насекомых. Анну Рев Энтомол. 1992. 37 (1): 273–302.

CAS Статья Google ученый

5.

Сугумаран М., Барек Х. Критический анализ пути меланогенеза у насекомых и высших животных. Int J Mol Sci. 2016; 17 (10): 1753.

PubMed Central Статья Google ученый

6.

Винсент Дж., Хиллертон Дж. Дубление кутикулы насекомых — критический обзор и пересмотренный механизм. J. Insect Physiol. 1979. 25 (8): 653–8.

7.

Халтмарк Д. Иммунные реакции у Drosophila и других насекомых: модель врожденного иммунитета.Тенденции Genet. 1993. 9 (5): 178–83.

CAS PubMed Статья Google ученый

8.

Сугумаран М. Сравнительная биохимия эумеланогенеза и защитная роль фенолоксидазы и меланина у насекомых. Pigment Cell Res. 2002; 15 (1): 2–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

9.

Шмид-Хемпель П. Эволюционная экология иммунной защиты насекомых.Анну Рев Энтомол. 2005; 50: 529–51.

CAS PubMed Статья Google ученый

10.

Карабалло Х., Кинг К. Ведение отделения неотложной помощи в связи с болезнями, передаваемыми комарами: малярией, лихорадкой денге и вирусом Западного Нила. Emerg Med Pract. 2014; 16 (5): 1–23. викторина 23-24.

PubMed Google ученый

11.

Толле М.А. Болезни, передаваемые комарами. Курр Пробл Педиатр Здравоохранение подростков.2009. 39 (4): 97–140.

PubMed Статья Google ученый

12.

Qiao L, Du M, Liang X, Hao Y, He X, Si F, et al. Тирозингидроксилаза имеет решающее значение для поддержания загара куколки и иммунитета у Anopheles sinensis . Научный доклад 2016; 6: 29835.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

13.

Johnson JK, Rocheleau TA, Hillyer JF, Chen CC, Li J, Christensen BM.Потенциальная роль фенилаланингидроксилазы в иммунном ответе комаров. Насекомое Biochem Mol Biol. 2003. 33 (3): 345–54.

CAS PubMed Статья Google ученый

14.

Кристенсен Б.М., Ли Дж., Чен С.К., Наппи А.Дж. Иммунные ответы на меланизацию у комаров-переносчиков. Trends Parasitol. 2005. 21 (4): 192–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

15.

Уилсон К., Коттер СК, Рисон А.Ф., Пелл Дж. Меланизм и устойчивость к болезням у насекомых. Ecol Lett. 2001. 4 (6): 637–49.

Артикул Google ученый

16.

Оста MA, Christophides GK, Vlachou D, Kafatos FC. Врожденный иммунитет в переносчике малярии Anopheles gambiae : сравнительная и функциональная геномика. J Exp Biol. 2004. 207 (Pt 15): 2551–63.

CAS PubMed Статья Google ученый

17.

Крамер KJ, Хопкинс TL. Метаболизм тирозина для дубления кутикулы насекомых. Arch Insect Biochem Physiol. 1987. 6 (4): 279–301.

CAS Статья Google ученый

18.

True JR. Меланизм насекомых: вещества имеют значение. Trends Ecol Evol. 2003. 18 (12): 640–7.

Артикул Google ученый

19.

Kanost MR, Jiang H, Yu XQ. Врожденные иммунные ответы чешуекрылого насекомого, Manduca sexta .Immunol Rev.2004; 198: 97–105.

20.

Прота Г. Меланины и меланогенез. 1-е изд. Сан-Диего: академический; 1992.

Google ученый

21.

Ито С. Взгляд химика на меланогенез. Pigment Cell Res. 2003. 16 (3): 230–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

22.

Сугумаран М., Дуггараджу Р., Генерозова Ф. Меланогенез насекомых. II.Неспособность фенолоксидазы Manduca действовать на 5,6-дигидроксииндол-2-карбоновую кислоту 1. Pigment Cell Res. 1999. 12 (2): 118–25.

23.

Шао Ц., Ян Б., Сюй Ц., Ли Х, Лу З., Ван С. и др. Врожденный иммунитет кишечника и регуляция фекальной микробиоты через меланизацию у насекомых. J Biol Chem. 2012. 287 (17): 14270–9.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

24.

Содерхалл К., Серениус Л.Роль системы, активирующей пропенолоксидазу, в иммунитете беспозвоночных. Curr Opin Immunol. 1998. 10 (1): 23–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

25.

Cerenius L, Lee BL, Soderhall K. ProPO-система: плюсы и минусы ее роли в иммунитете беспозвоночных. Trends Immunol. 2008. 29 (6): 263–71.

CAS PubMed Статья Google ученый

26.

Жухлистова Н., Жукова Ю. Н., Ляшенко А., Зайцев В., Михайлов А. Трехмерная организация трехдоменных оксидаз меди: обзор. Кристаллография, 2008; 53 (1): 92–109.

CAS Статья Google ученый

27.

Mayer AM, Staples RC. Лакказа: новые функции старого фермента. Фитохимия. 2002. 60 (6): 551–65.

CAS PubMed Статья Google ученый

28.

Сакураи Т., Катаока К. Основные и прикладные свойства мультикоппероксидаз, CueO, билирубиноксидазы и лакказы. Chem Rec. 2007. 7 (4): 220–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

29.

Dittmer NT, Gorman MJ, Kanost MR. Характеристика эндогенных и рекомбинантных форм лакказы-2, мульти-медной оксидазы табачного рогатого червя, Manduca sexta . Насекомое Biochem Mol Biol. 2009. 39 (9): 596–606.

30.

Dittmer NT, Kanost MR. Мультиоксидазы меди насекомых: разнообразие, свойства и физиологические роли. Насекомое Biochem Mol Biol. 2010. 40 (3): 179–88.

CAS PubMed Статья Google ученый

31.

Dittmer NT, Suderman RJ, Jiang H, Zhu YC, Gorman MJ, Kramer KJ, et al. Характеристика кДНК, кодирующих предполагаемые лакказеподобные оксидазы с множеством медей, и экспрессию онтогенеза у табачного рогатого червя Manduca sexta и малярийного комара Anopheles gambiae .Насекомое Biochem Mol Biol. 2004. 34 (1): 29–41.

32.

Хаттори М., Цучихара К., Нода Х., Кониси Х., Тамура Й., Шинода Т. и др. Молекулярная характеристика и экспрессия генов лакказы в слюнных железах зеленой цикадки риса, Nephotettix cincticeps (Hemiptera: Cicadellidae). Насекомое Biochem Mol Biol. 2010. 40 (4): 331–8.

CAS PubMed Статья Google ученый

33.

Яцу Дж., Асано Т.Лакказа кутикулы тутового шелкопряда, Bombyx mori : очистка, идентификация гена и присутствие его неактивного предшественника в кутикуле. Насекомое Biochem Mol Biol. 2009. 39 (4): 254–62.

CAS PubMed Статья Google ученый

34.

Горман М.Дж., Диттмер Н.Т., Маршалл Д.Л., Каност MR. Характеристика семейства генов мультикоппероксидазы у Anopheles gambiae . Насекомое Biochem Mol Biol. 2008. 38 (9): 817–24.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

35.

Асано Т., Таока М., Ямаути Ю., Эверроуд Р.К., Сето Ю., Исобе Т. и др. Повторное исследование лакказы, солюбилизированной α-химотрипсином, в кутикуле куколки тутового шелкопряда, Bombyx mori : понимание системы регуляции активации лакказы во время процесса шелушения. Насекомое Biochem Mol Biol. 2014; 55: 61–9.

CAS PubMed Статья Google ученый

36.

Lang M, Kanost MR, Gorman MJ. Мультикоппероксидаза-3 — это лакказа, связанная с перитрофическим матриксом Anopheles gambiae . PLoS One. 2012; 7 (3): e33985.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

37.

Томас Б., Йонекура М., Морган Т., Чапла Т., Хопкинс Т., Крамер К. Солюбилизированная трипсином лакказа из фаратных куколочных покровов табачного рогатого червя, Manduca sexta. Насекомое Biochem.1989. 19 (7): 611–22.

CAS Статья Google ученый

38.

Аракан Ю., Мутукришнан С., Биман Р.В., Каност М.Р., Крамер К.Дж. Лакказа 2 — ген фенолоксидазы, необходимый для дубления кутикулы жуков. Proc Natl Acad Sci USA. 2005. 102 (32): 11337–42.

39.

Wu X, Zhan X, Gan M, Zhang D, Zhang M, Zheng X и др. Laccase2 требуется для склеротизации и пигментации яичной скорлупы Aedes albopictus .Parasitol Res. 2013; 112 (5): 1929–34.

PubMed Статья Google ученый

40.

Элиас-Нето М., Соарес М.П., ​​Симоэс З.Л., Хартфельдер К., Битонди М.М. Характеристика развития, функция и регуляция гена, кодирующего Laccase2, у медоносной пчелы, Apis mellifera (Hymenoptera, Apinae). Насекомое Biochem Mol Biol. 2010. 40 (3): 241–51.

CAS PubMed Статья Google ученый

41.

Niu BL, Shen WF, Liu Y, Weng HB, He LH, Mu JJ и др. Клонирование и РНКи-опосредованная функциональная характеристика MaLac2 пилорама сосны Monochamus alternatus. Насекомое Mol Biol. 2008. 17 (3): 303–12.

CAS PubMed Статья Google ученый

42.

Futahashi R, Tanaka K, Matsuura Y, Tanahashi M, Kikuchi Y, Fukatsu T. Laccase2 требуется для пигментации кутикулы у насекомых-вонючек. Насекомое Biochem Mol Biol. 2011. 41 (3): 191–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

43.

Футахаши Р., Банно Й., Фудзивара Х. Цветовые узоры гусеницы определяются с помощью двухфазного процесса предварительной паттернированности гена меланина: новые данные, полученные с помощью tan и laccase2. Evol Dev. 2010. 12 (2): 157–67.

CAS PubMed Статья Google ученый

44.

Масуока Ю., Миядзаки С., Сайки Р., Цучида Т., Маекава К.Высокая экспрессия Laccase2, вероятно, участвует в формировании специфических кутикулярных структур во время дифференцировки термитов Reticulitermes speratus солдатами. Arthropod Struct Dev. 2013; 42 (6): 469–75.

PubMed Статья Google ученый

45.

Chen B, Zhang YJ, He Z, Li W, Si F, Tang Y, et al. De novo Секвенирование транскриптома и анализ последовательности вектора малярии Anopheles sinensis (Diptera: Culicidae).Векторы паразитов. 2014; 7 (1): 314.

PubMed PubMed Central Статья Google ученый

46.

Тамура К., Петерсон Д., Петерсон Н., Стечер Г., Ней М., Кумар С. MEGA5: анализ молекулярной эволюционной генетики с использованием методов максимального правдоподобия, эволюционного расстояния и максимальной экономии. Mol Biol Evol. 2011; 28 (10): 2731–9.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

47.

Маргам ВМ, Гельман ДБ, Палли СР. Титры экдистероидов и онтогенетическая экспрессия регулируемых экдистероидом генов во время метаморфоза комара желтой лихорадки, Aedes aegypti (Diptera: Culicidae). J. Insect Physiol. 2006. 52 (6): 558–68.

CAS PubMed Статья Google ученый

48.

Thummel CS. Молекулярные механизмы времени развития у C. elegans и Drosophila .Dev Cell. 2001. 1 (4): 453–65.

CAS PubMed Статья Google ученый

49.

Дубровский Е.Б. Гормональный перекрестный разговор в развитии насекомых. Trends Endocrinol Metab. 2005; 16 (1): 6–11.

CAS PubMed Статья Google ученый

50.

Mun S, Noh MY, Dittmer NT, Muthukrishnan S, Kramer KJ, Kanost MR, et al. Кутикулярный белок с последовательностью низкой сложности становится поперечно-сшитым во время склеротизации кутикулы насекомых и необходим для линьки взрослых особей.Научный доклад 2015; 5: 10484.

PubMed PubMed Central Статья Google ученый

51.

Ито К., Йошикава М., Фуджи Т., Табуноки Х., Йокояма Т. Пигментация меланина приводит к появлению черных пятен на крыльях тутового шелкопряда Bombyx mori . J. Insect Physiol. 2016; 91-92: 100–6.

CAS PubMed Статья Google ученый

52.

Лю С., Ямамото К., Ченг Т.С., Кадоно-Окуда К., Нарукава Дж., Лю С.П. и др.Репрессия тирозингидроксилазы ответственна за сцепленную с полом шоколадную мутацию тутового шелкопряда, Bombyx mori . Proc Natl Acad Sci USA. 2010. 107 (29): 12980–5.

53.

Футахаши Р., Сато Дж., Мэн Й., Окамото С., Даймон Т., Ямамото К. и др. Желтый и черный — это гены, ответственные за личиночные мутанты шелкопряда Bombyx mori . Генетика. 2008; 180 (4): 1995–2005.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

54.

Горман М.Дж., Салливан Л.И., Нгуен Т.Д., Дай Х., Аракан Й., Диттмер Н.Т. и др. Кинетические свойства альтернативно сплайсированных изоформ лакказы-2 из Tribolium castaneum и Anopheles gambiae . Насекомое Biochem Mol Biol. 2012. 42 (3): 193–202.

CAS PubMed Статья Google ученый

55.

Дубовский И.М., Уиттен М.М., Крюков В.Ю., Ярославцева О.Н., Гризанова Е.В., Грейг С.и др. Больше, чем изменение цвета: меланизм насекомых, устойчивость к болезням и плодовитость.Proc Biol Sci. 2013; 280 (1763): 20130584.

56.

Элефтерианос И., Ревенис С. Роль и значение фенолоксидазы в гемостазе насекомых. J. Врожденный иммунитет. 2011; 3 (1): 28–33.

CAS PubMed Статья Google ученый

57.

Хуанг С.Ю., Чжоу С.Ю., Бартоломей Л., Кристенсен Б., Чен С.К. Использование сайленсинга генов для изучения роли допа декарбоксилазы в реакциях меланизации комаров. Насекомое Mol Biol. 2005. 14 (3): 237–44.

CAS PubMed Статья Google ученый

58.

Сидери М., Цакас С., Маркуца Е., Лампропулу М., Мармарас В.Дж. Врожденный иммунитет у насекомых: зависимые от допа декарбоксилазы пути, связанные с поверхностью, регулируют фагоцитоз, клубенькообразование и меланизацию в гемоцитах средиземноморской мухи. Иммунология. 2008. 123 (4): 528–37.

CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

Роль протеаз, разрушающих кутикулу, в грибковом патогенезе насекомых

Цитируется по

1. Молекулярная филогения и патогенность аборигенной Beauveria bassiana в отношении томатного минера, Tuta absoluta Meyrick 1917 (Lepidoptera: Gelechiidae), в Эфиопии

2. Взаимодействие насекомых-грибов с патогенными насекомыми: подробный обзор по борьбе с энтомопатогенными грибами 9000

3. Сравнительный ответ Metarhizium brunneum к кутикулам восприимчивых и устойчивых хозяев

4. Цветочные транскриптомы выявляют генные сети в росте цветков и развитии плодов ананаса

5. Нарушение гена цистеин-дипептидазы семейства C69 усиливает устойчивость к тепловому шоку и УФ-В у Metarhizium acridum

6. Биоконтроль овец. есть ли роль биопестицидов на основе патогенов?

7. Последовательность генома Isaria javanica и сравнительный анализ геномного анализа эволюции пептидазы семейства S53 у грибковых энтомопатогенов

8. Биология и применение эндофитных насекомых-патогенных грибов

9. Beauveria bassiana является потенциально эффективным биологическим агентом против Psoroptes ovis var. cuniculi

10. Факторы устойчивости к грибам BmSPI38 и BmSPI39 в основном существуют в виде тетрамеров, а не мономеров. Bombyx mori

11. Сравнение воздушных конидий и бластоспор двух энтомопатогенных грибов против Diaphorina citri (Hemiptera: Liviidae) в лабораторных и тепличных условиях

12. Ультраструктурные наблюдения Боверия бассиана инфекция в Ксилотрехус деревенский larvae

13. Обзоры филогеномной эволюции генов суперсемейства субтилаз у грибов

14. Внеклеточные пептидазы как возможные маркеры экологии грибов

15. Beauveria bassiana Бластоспоры, продуцируемые в селективной среде, сокращают время выживания Epilachna varivestis Личинки Mulsant

17. Потеря второго и шестого консервативных остатков цистеина из-за ингибиторов трипсина, подобных ингибиторам протеазы цистеин-богатого домена, у Bombyx mori может индуцировать активность против микробных протеаз Боверия бассиана , на луковой личинке (Diptera: Anthomyiidae) Взрослые

19. Ингибиторы протеазы в Bombyx mori шелк может участвовать в защите окукливающейся личинки от микробной инфекции

20. Выявление влияния оплодотворения и развития яичников на углеводородный профиль кутикулы у шмеля Bombus terrestris (Hymenoptera: Apidae)

21. Энтомопатогенный потенциал Trichoderma longibrachiatum и его сравнительная оценка с малатионом или

против вредителя Leathionis 22. Патогенные грибы насекомых как эндофиты

23. Некоторые свойства и возможная биологическая роль ингибиторов пептидазы энтомопатогенного гриба Tolypocladium cylindrosporum

24. Управление западными цветочными трипсами в системах выращивания теплиц в 21 ул столетие: необходимо рассмотреть альтернативные стратегии

25. Патогенность Isaria fumosorosea по отношению к Bemisia tabaci, с некоторыми наблюдениями за процессом грибковой инфекции и иммунным ответом хозяина

26. Ингибиторы протеазы типа TIL могут использоваться в качестве мишеней Факторы устойчивости для усиления защиты тутового шелкопряда против инвазивных грибов

27. Экспрессия и биохимическая характеристика рекомбинантного белка придатка яичка человека 4

28. Секвенирование и функциональный анализ генома нематодного яичного паразитического гриба Pochonia chlamydosporia

29. Оптимизация питания нативного изолята Beauveria HQassiana b. ) патогенен для домашней мухи Musca domestica L.

30. Молекулярное клонирование нового гена субтилизинподобной протеазы (Pr1A) из гриба биоконтроля Isaria farinosa

31. Эндопептидаза, разрушающая кутикулу

32. Белок придатка яичка человека-4 (HE-4): новый ингибитор межклассовой протеазы

33. Новый ингибитор протеазы Bombyx mori участвует в защите от Beauveria bassiana

34. Патогены короедов (Curculionidae: Scolytinae) и других видов жуков в Болгарии

35. Биохимическая и молекулярная характеристика протопластов дикого типа и слитых протопластов Beauveria bassiana и Metarhizium anisopliae

. Оценка изолятов Beauveria bassiana (Hyphomycetes) как потенциальных агентов для контроля Dendroctonus valens

37. Новое понимание эволюции генов субтилизинподобных сериновых протеаз в Pezizomycotina

38. Сравнительный анализ метопротеинов. в ответ на воздействие личинок тростника и кутикулы личинок серого тростника

39. Образование капель экссудата путем Metarhizium anisopliae и наличие деструксинов

40. Член пакифастина чешуекрылых: клонирование, структура гена, рекомбинантная продукция, профилирование транскриптов и активность in vitro

41. Стратегии заражения нитчатыми микробами, описанные в Онтологии генов

42. Альтернативная стратегия патогенности насекомых в аспергиллезе flavus auxotroph

43. Клонирование гена субтилизина Pr1A из штамма саранчового гриба Metarhizium anisopliae и функциональная экспрессия белка в Pichia pastoris

44. Клонирование, экспрессия и характеристика двух новых сериновых протеаз энтомопатогенного гриба Cordyceps sinensis, разрушающих кутикулу

46. Производство и регулирование деградирующих кутикулу протеаз из Beauveria bassiana в присутствии кутикулы Rhammatocerus schistocercoides

47. Взаимодействие в процессе развития между Clavicipitaleans и их растениями-хозяевами

48. Регулирование разрушающих кутикулу субтилизиновых протеаз энтомопатогенных грибов, Lecanicillium spp: влияние на специфичность хозяина

49. Протеазы из Bacillus: новый механизм действия для подавления ризобактерий популяций нематод

50. Гидратированные конидии Metarhizium anisopliae высвобождают семейство металлопротеаз

51. Функциональная идентификация гена bace16 из нематофаговой бактерии Bacillus nematocida

52. Pruebas de virulencia и определитель активности внеклеточных протеас, типо субтилизина (Pr1) и типо трипсина (Pr2) duórante de la produoscci. mosquita blanca (Homoptera: Aleyrodidae)

53. Внеклеточные протеиназы мицелиальных грибов как потенциальные маркеры фитопатогенеза

54. Хозяин действует как генетическое узкое место во время серийных инфекций: модельная система насекомое-грибок

55. Клонирование, экспрессия и делеция разрушающей кутикулу протеазы BLG4 из нематофаговой бактерии Brevibacillus Laterosporus G4

56. Cloning a Ген сериновой протеазы, разрушающий кутикулу, с функцией биологического контроля из Beauveria brongniartii и его экспрессия в Escherichia coli

57. Нейтральная протеаза из Bacillus nematocida, еще один потенциальный фактор вирулентности при инфекции против нематод

58. Трансформация энтомопатогенного гриба Paecilomyces fumosoroseus с помощью Agrobacterium tumefaciens

59. Внеклеточные трипсиноподобные протеазы, продуцируемые Cordyceps militaris

60. Внеклеточные кристаллы G-паразита, вызываемые паразитами гриппа, позже служат в качестве внеклеточного паразитопротеина 4, вызываемого паразитами бактерий. нематод

61. Leptosphaeria maculans, грибковый патоген Brassica napus, секретирует субтилизин-подобную сериновую протеазу

62. Boophilus microplus Инфекция, вызванная Beauveria amorpha и Beauveria bassiana: SEM-анализ и регуляция субтилизин-подобных протеаз и хитиназ

63. Эффекты двухцепочечной РНК на Metarhizium anisopliae var. acridum и Paecilomyces fumosoroseus на активность протеаз, продукцию конидий и вирулентность

64. Характеристика нейтральной сериновой протеазы и ее полноразмерной кДНК из грибка, улавливающего нематоды Arthrobotrys oligospora

65. Дифференциальное выражение сосны и Cronartium quercuum f. sp. Гены fusiforme в галлах веретенообразной ржавчины

66. Грибковые патогены насекомых: ферменты и токсины, разрушающие кутикулу

67. Клонирование и генетическая изменчивость протеазы VCP1 из нематофагового гриба Pochortica 0008000. Endophortica Экспрессия β-1,6-глюканазы в зараженной траве-хозяине

69. Разрушающие кутикулу протеазы энтомопатогена Metarhizium flavoviride и их распределение в секретируемых и внутриклеточных фракциях

70. Биологический контроль Bemisia tabaci с помощью грибов

71. Кислые фосфатазы в гемолимфе пустынной саранчи Schistocerca gregaria, инфицированные энтомопатогенным грибом Metarhizium anisopliae

72. Утилизация легких растений, слизь. клеточные стенки и кутикула насекомых, вызываемые Aspergillus fumigatus, Metarhizium anisopliae и Haematonectria haematococca

73. Клонирование, экспрессия и субстратная специфичность грибкового химотрипсина

74. Очистка и характеристика новой внеклеточной протеазы из Beauveria bassiana

75. Ингибиторы протеиназ из линьки фарата взрослого табачного рогатого червя, Manduca sexta

76. Экспрессия грибковой протеиназы во взаимодействии с патогеном растения Magnaport poae со своим хозяином

77. Клонирование, экспрессия и субстратная специфичность MeCPA, карбоксипептидазы цинка, которая секретируется в инфицированные ткани грибковым энтомопатогеном Metarhizium anisopliae

79. Выделение гена регулятора азотного ответа (nrr1) из Metarhizium anisopliae

80. Ингибирование внеклеточных протеиназ из Aphanomyces spp. тремя различными ингибиторами протеиназ из крови раков

81. Роль протеаз, разрушающих кутикулу, в вирулентности Metarhiziumspp. для пустынной саранчи Schistocerca gregaria

82. pH окружающей среды является основным определяющим фактором экспрессии ферментов, разрушающих кутикулу, и гидрофобина Metarhizium anisopliae

83. Энтомопатогенные грибы: Fungi Imperfecti

84. Выделение кДНК, кодирующей новую субтилизин-подобную протеазу (Pr1B), от энтомопатогенного гриба Metarhizium anisopliae с использованием дифференциальной дисплей-RT-протеазы

-протеаз

. карбогидразы сапрофитных, фитопатогенных и энтомопатогенных грибов к требованиям их экологических ниш

86. Инженерные улучшенные микоинсектициды

87. Характеристика и функциональный анализ 12 вариантов естественных реактивных сайтов Серпина-1 из Manduca sexta

88. Экология наземных грибных энтомопатогенов

90. Новое понимание механизмов грибкового патогенеза у насекомых

Понимание биоинформатики и протеомики

Яйца обладают физическими и химическими свойствами. барьеры для защиты эмбриона от болезнетворных микроорганизмов.Кутикула птичьей яичной скорлупы — это самый внешний слой яичной скорлупы, белковые компоненты которого остаются в значительной степени неизвестными. Поскольку яйца с неполной или отсутствующей кутикулой более восприимчивы к бактериальному заражению, мы предполагаем, что белковые компоненты кутикулы играют важную роль в устойчивости микробов. В нашем исследовании не менее 47 белков были идентифицированы с помощью ЖХ / МС / МС в некальцинированном слое кутикулы. Подобно Kunitz-подобному ингибитору протеазы (также обозначенному как овокаликсин-25, OCX-25) и овокаликсин-32 (OCX-32) были двумя наиболее распространенными белками кутикулы.Некоторые белки, обладающие антимикробной активностью, также были обнаружены в протеомных результатах, такие как лизоцим C, овотрансферрин, овокаликсин-32, цистатин, овоингибитор. Это исследование представляет собой первый подробный отчет о протеоме кутикулы. Поскольку сходство последовательности мотива Кунитца в OCX-25 аналогично таковому у BPTI, предполагается, что он будет иметь такую ​​же ингибирующую трипсин и антимикробную активность против грамположительных и / или грамотрицательных бактерий. Чтобы проверить антимикробные свойства и активность ингибитора трипсина OCX-25, белки кутикулы экстрагировали 1 н. HCl.Антимикробную активность контролировали с помощью прибора Bioscreen C; и антимикробная активность была выявлена ​​в первую очередь против золотистого стафилококка. Активность ингибитора трипсина изучали с помощью специального анализа трипсина, и анализ показал, что белки кутикулы могут ингибировать реакцию трипсина и субстрата. Таким образом, текущее исследование дало некоторое представление об антимикробных и ферментативных аспектах белков кутикулы и их функции для защиты яиц. Оболочки яичной скорлупы — еще один важный компонент куриной яичной скорлупы.Из-за его нерастворимых и стабильных свойств остается много вопросов относительно образования и состава мембран яичной скорлупы. Цель нашего исследования состояла в том, чтобы идентифицировать белки мембран яичной скорлупы, в частности те, которые отвечают за ее структурные особенности, путем изучения транскриптома белого перешейка во время его образования. Инструменты биоинформатики применялись для анализа дифференциально экспрессируемых генов, а также кодируемых ими белков. Некоторые интересные белки кодируются сверхэкспрессируемыми генами в белом перешейке во время образования мембран яичной скорлупы, такие как коллаген X, и подобные белку оболочки споры SP75.Эти белки могут иметь потенциальное применение. Наше исследование предоставляет подробное описание транскриптома белого перешейка куриного во время образования мембран яичной скорлупы; это может привести к разработке стратегий по повышению пищевой безопасности столовых яиц.

Биосинтез и энзимология кутикулы Caenorhabditis elegans: идентификация и характеристика нового ингибитора сериновой протеазы.

Пейдж, А. П., Маккормак, Г. и Бирни, А. Дж. (2006) Биосинтез и энзимология кутикулы Caenorhabditis elegans: идентификация и характеристика нового ингибитора сериновой протеазы. Международный журнал паразитологии , 36 (6), С. 681-689. (DOI: 10.1016 / j.ijpara.2006.01.004)

Текст стр .IJPARA-pagebli.pdf 459kB

URL издателя: http://dx.doi.org/10.1016/j.ijpara.2006.01.004

Abstract

Нематода Caenorhabditis elegans представляет собой отличную модель для изучения экспрессии и функции гена нематод. .Завершенный геном, простой трансгенез, доступные мутанты и практические подходы к РНКи на уровне всего генома предоставляют неоценимый инструментарий для характеристики гены нематод. Мы выполнили целевой скрининг РНКи в попытке идентифицировать компоненты пути биосинтеза коллагена кутикулы. Биосинтез коллагена и сборка кутикулы — это многоступенчатые процессы, в которых задействованы многочисленные ключевые ферменты, участвующие в посттрансляционной модификации, фолдинге тримеров, процессинге проколлагена и последующих стадиях перекрестного сшивания.